Psittacosis / Avian Chlamydiosis, Ornithosis, Parrot Fever

 Pentingnya Psittacosis atau Avian Chlamydiosis:

Psittacosis, yang juga disebut avian chlamydiosis pada beberapa inang, adalah penyakit bakteri pada burung yang disebabkan oleh anggota genus Chlamydia. Chlamydia psittaci telah diidentifikasi sebagai organisme utama dalam kasus klinis hingga saat ini, tetapi setidaknya dua spesies tambahan, C. avium dan C. gallinacea, kini telah diakui. C. psittaci diketahui menginfeksi lebih dari 400 spesies burung. Inang penting di antara burung domestik termasuk burung psittacine, unggas, dan merpati, namun wabah juga telah didokumentasikan pada banyak spesies lain seperti ratites, merak, dan burung buruan. Beberapa burung membawa C. psittaci tanpa menunjukkan gejala. Burung lainnya menjadi sakit ringan hingga parah, baik segera atau setelah mereka mengalami stres. Kerugian ekonomi yang signifikan dapat terjadi pada kawanan kalkun komersial bahkan ketika angka kematiannya tidak tinggi. Wabah juga kadang-kadang dilaporkan pada burung liar, dan beberapa di antaranya telah dikaitkan dengan penularan zoonosis.

 

C. psittaci dapat mempengaruhi mamalia, termasuk manusia, yang telah terpapar burung atau lingkungan yang terkontaminasi. Beberapa infeksi pada manusia bersifat subklinis; infeksi lainnya menyebabkan penyakit ringan hingga parah yang dapat mengancam nyawa. Kasus klinis pada wanita hamil bisa sangat parah dan dapat mengakibatkan kematian janin. Studi terbaru menunjukkan bahwa infeksi dengan C. psittaci mungkin kurang terdiagnosis pada beberapa populasi, seperti pekerja unggas. Ada juga laporan yang menunjukkan bahwa C. psittaci kadang-kadang dapat menyebabkan kerugian reproduksi, penyakit mata, atau penyakit pernapasan pada ruminansia, kuda, dan hewan peliharaan.

 

C. avium dan C. gallinacea masih belum dipahami dengan baik. C. avium telah ditemukan pada merpati yang tidak menunjukkan gejala, yang tampaknya menjadi inang utamanya, dan pada merpati dan burung psittacine yang sakit. C. gallinacea pertama kali diidentifikasi pada kawanan unggas yang telah dikaitkan dengan chlamydiosis pada manusia, dan diduga menjadi patogen manusia. Virulensinya pada burung masih belum jelas, meskipun hingga saat ini tidak dikaitkan dengan penyakit apa pun.

 

ETIOLOGI

 

Avian chlamydiosis dapat disebabkan oleh infeksi Chlamydia psittaci atau spesies yang baru diakui, yaitu C. avium dan C. gallinacea. Mungkin ada juga spesies Chlamydia lain yang terkait dengan burung, terutama pada burung liar. Sebagai contoh, spesies kandidat C. ibidis terdeteksi pada ibis suci Afrika (Threskiornis aethiopicus) yang hidup bebas dan sehat di Prancis barat, dan kemungkinan ada jenis Chlamydia baru yang ditemukan pada beberapa burung pemangsa dan burung laut. Avian chlamydiosis umumnya disebut psittacosis (atau ornithosis) pada manusia. Hal ini membantu membedakannya dari chlamydiosis yang disebabkan oleh C. trachomatis, organisme yang beredar di antara manusia.

 

Anggota genus Chlamydia adalah bakteri berbentuk kokus yang obligat intraseluler dalam keluarga Chlamydiaceae dan ordo Chlamydiales. Mereka dianggap Gram negatif karena hubungan evolusioner mereka dengan bakteri Gram negatif lainnya, tetapi mereka sulit diwarnai dengan pewarnaan Gram. Chlamydia memiliki siklus hidup unik, bergantian antara dua bentuk yang berbeda yang disebut badan elementer dan badan retikulat (lihat “Penularan dan Siklus Hidup” untuk detail lebih lanjut). C. psittaci sebelumnya merupakan satu-satunya spesies Chlamydia yang diketahui bertahan hidup pada burung hingga beberapa tahun terakhir, dan hampir semua kasus avian chlamydiosis diakibatkan oleh organisme ini. Setidaknya ada 16 genotipe C. psittaci yang diidentifikasi berdasarkan gen ompA bakteri, yang ditemukan pada burung atau mamalia. Genotipe A hingga F dan EB tampaknya paling umum, namun genotipe lain (I, J, 1V, 6N, MatI16, R54, YP84, dan CPX0308) juga ditemukan pada burung. Genotipe WC diisolasi dari satu wabah pada sapi, dan M56 dari wabah pada berang-berang. Beberapa genotipe C. psittaci cenderung dikaitkan dengan inang burung tertentu, tetapi hal ini tidak mutlak, dan infeksi pada spesies lain semakin banyak dikenali. Manusia dapat terinfeksi oleh genotipe apa pun, tetapi beberapa (misalnya genotipe A) tampaknya lebih sering dikaitkan dengan penyakit serius dibandingkan yang lain. Genotipe ompA dapat salah mengidentifikasi beberapa isolat, dan pengetikan sekuens multi-lokus (MLST), yang didasarkan pada panel gen, juga digunakan untuk studi epidemiologi.

 

Nomenklatur Chlamydia/Chlamydophila psittaci

Genus Chlamydia telah mengalami sejumlah perubahan nama selama bertahun-tahun. Pada suatu waktu, semua organisme Chlamydia yang ditemukan pada burung, manusia, dan hewan lainnya disebut C. psittaci. Sebagian besar C. psittaci yang terkait dengan mamalia kemudian diganti namanya, menjadi C. pecorum, C. abortus, C. felis, C. caviae, dan C. pneumoniae. Pada tahun 1999, anggota genus Chlamydia juga dipisahkan menjadi dua genus, yaitu Chlamydia dan Chlamydophila. Semua strain Chlamydia psittaci pada burung dan dua isolat mamalia (WC dan M56) menjadi Chlamydophila psittaci. Namun, baru-baru ini Chlamydophila dan Chlamydia disatukan kembali, dan Chlamydophila psittaci sekali lagi disebut Chlamydia psittaci.

 

SPESIES YANG TERPENGARUH

Chlamydia psittaci

C. psittaci telah dilaporkan pada lebih dari 450 spesies burung yang termasuk dalam setidaknya 30 ordo. Di antara burung peliharaan dan burung domestik, organisme ini terkenal menginfeksi burung psittacine (burung beo dan kerabatnya) dan merpati, tetapi juga ditemukan pada spesies lain termasuk kalkun, bebek, ayam, angsa, burung buruan (misalnya puyuh, partridge), ratites (rhea, burung unta), burung passerines peliharaan (kenari dan pipit), serta merak. Selain itu, infeksi telah ditemukan pada berbagai spesies liar yang hidup bebas atau di penangkaran, mulai dari unggas air, burung laut, dan penguin hingga burung passerines dan burung pemangsa. Kasus klinis dan wabah telah dilaporkan pada banyak spesies burung, meskipun tampaknya lebih umum terjadi pada beberapa inang dibandingkan yang lain.

 

C. psittaci kadang-kadang ditemukan pada berbagai mamalia, termasuk anjing, kucing, kuda, sapi, kambing, domba, kerbau air (Bubalus bubalis), babi, berang-berang, hewan ungulata liar termasuk rusa roe (Capreolus capreolus), dan beberapa spesies kebun binatang. Dalam beberapa kasus, organisme ini terdeteksi pada hewan yang menunjukkan tanda-tanda klinis; dalam kasus lain, ditemukan pada hewan yang asimtomatik, atau pada anggota spesies yang sehat dan sakit. Uji polymerase chain reaction (PCR) menemukan DNA C. psittaci pada beberapa reptil sehat di kebun binatang Jepang. Satu laporan menggambarkan isolasi C. psittaci dari katak cakar Afrika yang sakit (Xenopus laevis), namun laporan ini diterbitkan ketika istilah "Chlamydia psittaci" masih mencakup Chlamydia yang berhubungan dengan mamalia, sehingga identitas sebenarnya organisme ini masih belum pasti.

 

Masih ada ketidakpastian tentang rentang inang yang tepat untuk C. psittaci, terutama di antara inang yang tidak umum seperti mamalia. Salah satu masalahnya adalah banyak studi yang mengandalkan PCR dan/atau serologi. Uji serologi mungkin mendeteksi antibodi silang terhadap spesies Chlamydia lainnya, dan asam nukleat tidak selalu menunjukkan adanya organisme hidup. Sensitivitas PCR juga meningkatkan risiko hasil positif yang berasal dari kontaminasi lingkungan. Masalah lain adalah beberapa tes PCR yang didasarkan pada gen ompA mungkin salah mengidentifikasi spesies Chlamydia tertentu. Secara khusus, rekombinasi dapat terjadi antara C. psittaci dan spesies C. abortus yang berhubungan dengan ruminansia, dan homologi dalam urutan gen ompA dari kedua organisme ini bisa tinggi. Uji PCR yang lebih baik untuk membedakan C. psittaci dan C. abortus baru-baru ini telah dipublikasikan. Tampaknya sedikit percobaan yang mencoba mereproduksi chlamydiosis pada mamalia; namun, anak sapi yang diinokulasi langsung ke bronkus dengan C. psittaci (melewati beberapa pertahanan inang) menjadi sakit. Anak-anak sapi ini mampu menularkan organisme tersebut ke anak sapi lainnya, meskipun kontak tersebut hanya menunjukkan sedikit atau tidak ada tanda klinis.

Chlamydia avium dan Chlamydia gallinacea

Rentang inang C. avium dan C. gallinacea masih belum jelas. C. avium telah dilaporkan ditemukan pada merpati, yang mungkin menjadi inang reservoir utama, serta merpati yang sakit dan burung psittacine. C. gallinacea telah dijelaskan pada unggas termasuk ayam, kalkun, guinea fowl, bebek, angsa, dan burung grosbeak ultramarine yang ditangkap (Cyanocompsa brissonii). Hingga 2017, C. gallinacea belum dikaitkan dengan tanda-tanda klinis pada unggas. Saat ini, belum ada laporan C. avium atau C. gallinacea pada hewan selain burung.

 

Potensi Zoonosis

C. psittaci bersifat zoonotik

Sebagian besar infeksi pada manusia dikaitkan dengan kontak dengan burung atau lingkungan mereka, namun penularan zoonotik yang dicurigai juga dilaporkan setelah kontak dengan plasenta kuda yang terinfeksi. C. gallinacea juga kemungkinan dapat menginfeksi manusia. Organisme ini terdeteksi pada kawanan unggas yang terkait dengan tiga kasus pneumonia atipikal pada pekerja rumah potong hewan. Kasus-kasus ini didiagnosis sebagai chlamydiosis avian, tetapi C. psittaci tidak ditemukan pada burung-burung tersebut. Hingga saat ini, C. avium belum dilaporkan menginfeksi manusia.

 

Distribusi Geografis

C. psittaci dapat ditemukan di seluruh dunia. Hingga 2017, C. gallinacea telah dilaporkan di Eropa, China, dan Australia, sedangkan C. avium dilaporkan di Eropa.

 

Transmisi dan Siklus Hidup

Siklus hidup: Chlamydiae memiliki siklus hidup unik yang melibatkan dua bentuk, yaitu elementary body yang infeksius, lebih kecil, dan relatif inert, serta reticulate body yang tidak infeksius. Reticulate body hanya ditemukan di dalam sel. Elementary body yang diambil oleh sel inang tetap berada dalam inclusion body yang terikat membran di sitoplasma sel, di mana ia berubah menjadi reticulate body. Reticulate bodies membelah untuk beberapa waktu, kemudian berubah kembali menjadi elementary bodies, yang dilepaskan ketika sel terdisintegrasi atau inclusion body berfusi dengan membran sel. Proses terakhir ini meninggalkan sel tetap utuh. Chlamydiae terkadang dapat bertahan lama di lokasi yang tidak diketahui dalam tubuh.

 

Transmisi: C. psittaci dapat diperoleh oleh burung ketika mereka menghirup debu infeksius atau partikel-partikel udara seperti bulu, atau menelan bahan infeksius termasuk bangkai. Organisme ini diekskresikan dalam jumlah besar melalui feses, dan dapat menjadi aerosol ketika bahan feses mengering. C. psittaci juga dilepaskan dalam sekresi pernapasan dan oral. Lalat penggigit, tungau, dan kutu dapat terlibat dalam transmisi mekanis. Beberapa burung membawa C. psittaci secara asimtomatik, dan dapat mengeluarkannya secara intermittent dalam jangka waktu lama. Pengeluaran ini dapat dipicu oleh infeksi bersamaan atau stresor seperti kekurangan gizi, penanganan, kepadatan, atau proses bertelur.

 

Transmisi vertikal telah dilaporkan pada berbagai spesies burung, tetapi tampaknya jarang terjadi. C. psittaci juga ditemukan di permukaan telur dalam kawanan yang terinfeksi, dan penetrasi organisme ke dalam cangkang telur telah dibuktikan dalam kondisi eksperimental. Sebagian besar telur yang terinfeksi tidak menetas. Lebih sering, burung muda dapat terinfeksi di sarang melalui makanan yang dimuntahkan dari induknya, terpapar kontaminasi lingkungan, atau dari ektoparasit. Anak burung yang bertahan hidup dapat menjadi pembawa.

 

C. psittaci dapat ditularkan melalui fomit, termasuk pakan atau air yang terkontaminasi. Elementary body dari organisme ini dapat bertahan hidup lebih dari sebulan di lingkungan jika terlindungi oleh sisa-sisa organik. Diketahui bahwa organisme ini dapat bertahan hidup di pakan burung hingga dua bulan, di kaca selama 15 hari, dan di jerami selama 20 hari. Meskipun ketahanan lebih lama pada suhu rendah, satu penelitian menemukan bahwa C. psittaci tetap bertahan hidup setidaknya selama 72 jam pada suhu antara 4°C dan 56°C, dalam suspensi kasar dari telur yang terinfeksi.

 

Manusia biasanya terinfeksi melalui kontak langsung dengan burung yang terinfeksi, atau dari lingkungan ketika mereka menghirup debu yang terkontaminasi, bulu, serta sekresi atau ekskresi yang menjadi aerosol. Anjing telah terinfeksi setelah memakan bangkai atau kotoran burung. Penularan dari orang ke orang tampaknya jarang terjadi, tetapi beberapa pasien yang sangat sakit telah menularkan organisme ini kepada orang lain. Orang-orang yang terinfeksi termasuk anggota keluarga, perawat rumah sakit, dan teman sekamar di rumah sakit. Dalam beberapa kasus, organisme ini diduga menyebar melalui aerosol yang dihasilkan saat batuk paroksismal. Anak sapi yang terinfeksi secara eksperimental mampu menularkan infeksi ke anak sapi lain yang kontak dengannya.

 

Disinfeksi

Beberapa disinfektan yang diperkirakan efektif melawan C. psittaci termasuk senyawa amonium kuartener, aldehida (misalnya formaldehida, glutaraldehida), alkohol isopropil 70%, natrium hidroksida (termasuk larutan 1:32 dari pemutih rumah tangga), dan klorofenol. Organisme ini dilaporkan tahan terhadap asam atau alkali. Seperti kebanyakan bakteri lainnya, C. psittaci diperkirakan rentan terhadap panas lembap pada suhu 121°C (250°F) selama minimal 15 menit, dan panas kering pada suhu 160-170°C (320-338°F) selama satu jam atau lebih. Satu penelitian menemukan bahwa organisme terkait, C. trachomatis, dinonaktifkan dengan pemanasan pada suhu 55°C (131°F) selama 10 menit, meskipun hal ini belum dikonfirmasi untuk C. psittaci.

 

INFEKSI PADA HEWAN

Masa Inkubasi

Masa inkubasi untuk penyakit yang disebabkan oleh C. psittaci biasanya berkisar antara 3 hari hingga beberapa minggu pada burung peliharaan dan unggas. Pembawa (carrier) dapat menjadi sakit kapan saja; dalam beberapa kasus, hal ini terjadi bertahun-tahun setelah mereka terinfeksi. Masa inkubasi untuk chlamydiae burung lainnya saat ini belum diketahui.

 

TANDA-TANDA KLINIS

Chlamydia psittaci pada burung

Infeksi dengan C. psittaci dapat tidak menunjukkan gejala atau menyebabkan tanda klinis mulai dari ringan hingga berat pada burung. Organisme ini umumnya menyebabkan penyakit sistemik, namun sindrom lokal (misalnya konjungtivitis) juga dilaporkan.

 

Burung psittacine yang terinfeksi sering kali tetap asimptomatik sampai mereka mengalami stres. Kasus klinis pada burung ini bisa akut atau kronis. Gejalanya umumnya tidak spesifik, dan dapat mencakup anoreksia, lesu, bulu kusut, keluarnya cairan oculonasal serosa atau mukopurulen, hepatomegali, dan penurunan berat badan. Burung yang terkena parah bisa menjadi sangat kurus dan dehidrasi. Beberapa burung mengembangkan gejala pernapasan mulai dari bersin, peningkatan suara pernapasan, hingga dispnea. Sinus yang bengkak, diare, dan poliuria dengan kotoran berwarna hijau hingga kekuningan juga mungkin terlihat. Tanda-tanda neurologis (torticollis, opisthotonos, tremor, gerakan kejang, kelumpuhan flaksid atau paresis pada kaki) telah dijelaskan pada beberapa spesies burung psittacine, terutama pada kasus subakut hingga kronis. Konjungtivitis dapat menjadi bagian dari klamidiosis sistemik, namun juga dapat terjadi tanpa tanda-tanda umum penyakit. Sindrom keratokonjungtivitis berulang telah dilaporkan pada parkit Australia kecil, terutama pada anggota genus Neophema. Gangguan pada bulu yang tersisa mungkin tampak pada burung yang sembuh dari klamidiosis.

 

Tanda-tanda klinis umumnya serupa pada spesies burung lainnya. Konjungtivitis, blefaritis, dan rinitis dilaporkan sebagai tanda umum pada merpati, dan beberapa burung mungkin mengalami ataksia sementara. Kalkun dapat sakit ringan hingga parah, dengan tanda klinis yang mungkin termasuk konjungtivitis, tanda-tanda penyakit yang tidak spesifik, tanda-tanda pernapasan, dan diare. Angka kematian tinggi pada beberapa wabah di antara kalkun, tetapi dapat diabaikan pada wabah lainnya. Produksi telur menurun. Sindrom lokal dengan peradangan pada kelenjar hidung, serta pembengkakan unilateral atau bilateral di atas mata (tetapi tanpa tanda-tanda pernapasan atau kematian) telah dilaporkan secara jarang pada kawanan kalkun. Bebek dapat menunjukkan tanda klinis, termasuk gemetar atau gangguan gaya berjalan; namun, beberapa kawanan yang terinfeksi hanya menunjukkan sedikit atau tidak ada tanda-tanda penyakit.

 

Diare dan tanda-tanda pernapasan yang parah menjadi tanda utama selama wabah pada merak, dan kematian mendadak (terkadang didahului oleh penurunan berat badan) terjadi pada beberapa burung rhea dan raptor. Kasus klinis jarang dilaporkan pada ayam. Beberapa ayam yang terinfeksi secara eksperimental mengembangkan tanda-tanda pernapasan, konjungtivitis, diare, dan anoreksia, sementara yang lain tidak menunjukkan tanda-tanda klinis yang jelas, tetapi mengalami penambahan berat badan lebih lambat dibandingkan dengan burung yang tidak terinfeksi.

 

Chlamydia psittaci pada Mamalia

Penyakit yang dikaitkan dengan C. psittaci kadang-kadang dilaporkan pada mamalia yang terpapar burung. Bukti definitif untuk peran penyebab tidak tersedia dalam banyak kasus; namun, sindrom-sindrom tersebut umumnya mirip dengan yang disebabkan oleh klamidia lainnya.

 

C. psittaci diduga terlibat dalam beberapa kasus aborsi dan/atau plasentitis pada kuda dan sapi, termasuk satu kasus di mana anak kuda lahir hidup tetapi lemah. Ada beberapa laporan yang menunjukkan bahwa organisme ini mungkin terlibat dalam sindrom sapi yang ditandai oleh demam, tanda-tanda pernapasan (misalnya, keluarnya cairan serosa dari hidung, batuk, takipnea), dan penurunan produksi susu secara tiba-tiba. Organisme ini juga diisolasi dari seekor domba dengan pneumonia. Anak sapi yang diinokulasi langsung ke dalam bronkus dengan C. psittaci mengembangkan penyakit demam dengan tanda-tanda pernapasan sedang hingga parah (takipnea, batuk kering) pada dosis yang lebih tinggi, dan infeksi subklinis atau tanda-tanda pernapasan ringan pada dosis yang lebih rendah. Anak sapi penjaga yang bersentuhan dengan hewan ini tetap asimptomatik atau hanya mengalami beberapa tanda-tanda pernapasan ringan seperti batuk ringan atau keluarnya cairan mata. C. psittaci juga diduga menyebabkan keratokonjungtivitis pada ruminansia, meskipun ditemukan juga pada mata hewan yang asimptomatik. Satu studi melaporkan penemuan DNA C. psittaci dalam sampel klinis yang tidak disebutkan dari sapi, kambing, kucing, dan babi.

 

Beberapa penyakit telah dikaitkan dengan C. psittaci pada anjing. Sebuah organisme genotipe C, kemungkinan didapat dari burung peliharaan, diisolasi dari sekelompok anjing dengan masalah pernapasan dan reproduksi berulang, termasuk episode dispnea berat dan keratokonjungtivitis. Anjing-anjing ini menghasilkan anak-anak yang lebih sedikit dari biasanya, dengan jumlah anak anjing mati yang sangat banyak. Dalam wabah lainnya, pengenalan seekor burung cockatiel yang terinfeksi ke dalam sebuah rumah tangga dikaitkan dengan penyakit pada dua dari tiga anjing. Salah satu anjing menjadi sakit akut, dengan demam, menggigil, batuk, muntah-muntah, dispnea, dan sedikit keluarnya cairan oculonasal.

 

Anjing lainnya mengalami demam ringan, lesu, anoreksia, kongesti selaput lendir, dan tanda-tanda endokarditis bakterial, yang sembuh setelah perawatan antibiotik. Anjing ketiga secara klinis tidak terdampak tetapi positif serologis. C. psittaci juga diduga terlibat dalam kasus pada anak anjing berusia 5 bulan dengan demam, efusi pleura, dan pincang kaki yang berpindah-pindah, serta pada anjing dengan batuk spasmodik yang dipicu oleh latihan dan penurunan kondisi tubuh.

 

Strain C. psittaci avian diisolasi dari anjing berusia 5 bulan tersebut, sementara kasus lainnya terkait dengan konsumsi bangkai burung budgerigar yang terinfeksi dan kotoran yang menular. Satu kasus konjungtivitis pada kucing tampaknya didapat dari burung macaw yang baru-baru ini ditambahkan ke rumah tangga tersebut, tetapi infeksi dengan C. felis, yang lebih umum menyebabkan konjungtivitis pada kucing, tidak dapat dikesampingkan.

 

C. avium dan C. gallinacea

C. avium telah diisolasi dari burung psittacine dan merpati yang menderita enteritis, penyakit pernapasan, hepatosplenomegali saat pemeriksaan postmortem, serta tanda-tanda lain yang konsisten dengan klamidiosis pada burung. Organisme ini juga ditemukan dalam isi usus merpati liar yang asimptomatik. C. gallinacea sejauh ini hanya ditemukan pada burung yang asimptomatik. Saat ini tidak ada laporan mamalia yang terinfeksi organisme ini.

 

Lesi Postmortem

Lesi pada burung yang terinfeksi C. psittaci bervariasi, dan dapat mencakup adenitis nasal, kongesti paru-paru, pneumonia fibrinosa, airsakulitis fibrinosa, splenomegali (sering dengan limpa yang bercorak atau berubah warna), dan pembesaran hati dengan nekrosis hati multifokal. Perihepatitis fibrinosa, perikarditis, peritonitis, dan kongesti vaskular, serta enteritis dan konjungtivitis, juga dapat terlihat. Burung yang terinfeksi secara asimptomatik sering kali tidak menunjukkan lesi kasar.

 

Tes Diagnostik

Metode untuk mendiagnosis infeksi klamidia meliputi deteksi asam nukleat dan/atau antigen, tes serologis, dan kultur. Kombinasi teknik, termasuk histologi, mungkin diperlukan, terutama ketika hanya melibatkan satu burung. C. psittaci dapat ditemukan dalam berbagai sekresi dan ekskresi, termasuk usapan konjungtiva dan choana, feses/usapan kloaka/isi kolon, serta jaringan seperti hati, limpa, paru-paru, ginjal, dan perikardium. Lebih mudah mendeteksi organisme ini pada burung yang sedang sakit akut dibandingkan pada pembawa asimptomatik, di mana beberapa sampel (misalnya, pengambilan sampel feses berulang) mungkin diperlukan. C. avium ditemukan dalam sampel kloaka/feses dari burung asimptomatik, dan dalam sampel jaringan dari burung sakit. Lebih dari satu spesies Chlamydia avian dapat ditemukan pada satu burung.

 

PCR semakin sering digunakan untuk mendeteksi C. psittaci secara langsung dalam sampel klinis. Tes PCR untuk mengidentifikasi C. avium dan C. gallinacea juga telah dipublikasikan. Tes hibridisasi mikroarray DNA dapat membedakan spesies Chlamydia yang berbeda. Antigen klamidia dapat dideteksi dengan metode imunostaining (imunohistokimia, imunofluoresensi) dan ELISA penangkapan antigen. Tes ini biasanya tidak dapat mengidentifikasi spesies Chlamydia. Pada masa lalu, organisme klamidia yang ditemukan pada burung umumnya diasumsikan sebagai C. psittaci; namun, asumsi ini tidak lagi dapat dibuat. Beberapa tes deteksi antigen, khususnya ELISA yang dikembangkan untuk digunakan pada klamidiosis manusia, mungkin memiliki sensitivitas rendah pada burung.

 

Histologi dapat memberikan diagnosis sementara atau digunakan untuk mendukung metode diagnostik lainnya. Klamidia adalah organisme kecil berbentuk kokus yang dapat diwarnai dengan pewarnaan Giemsa, Gimenez, Ziehl-Neelsen, dan Macchiavello. Mereka bisa menyerupai beberapa organisme lain seperti Coxiella burnetii, penyebab demam Q.

 

C. psittaci dapat diisolasi dalam berbagai jenis sel termasuk sel monyet hijau kerbau, McCoy, HeLa, Vero, dan L-929, atau (lebih jarang) dalam telur yang dibuahi. Kedua sistem kultur ini juga dapat digunakan untuk mengisolasi C. avium. Keberadaan klamidia dalam kultur sel dapat dikonfirmasi dengan tes seperti imunofluoresensi atau pewarnaan imunoperoksidase, dan spesies klamidia dapat diidentifikasi dengan PCR atau tes genetik lainnya. Isolasi mungkin tidak berhasil pada burung yang telah diobati dengan antibiotik dalam 2-3 minggu sebelumnya. Karena fasilitas biosafety level 3 diperlukan untuk kultur, layanan ini hanya tersedia di sejumlah laboratorium terbatas. Berbagai tes (misalnya, MLST, PCR-RFLP, mikroarray DNA, atau sekuensing DNA) dapat digunakan untuk genotipe isolat C. psittaci untuk tujuan epidemiologis, seperti pelacakan wabah.

 

Tes serologis untuk mendeteksi C. psittaci pada berbagai spesies burung meliputi fiksasi komplemen, ELISA, aglutinasi lateks, aglutinasi badan elementer (EBA), dan mikroimunofluoresensi. Fiksasi komplemen dilaporkan memiliki tingkat positif palsu yang tinggi pada beberapa spesies psittacine. Kenaikan titer empat kali lipat seharusnya terlihat pada sampel berpasangan. Tes untuk mendeteksi IgM, seperti tes EBA, juga membantu dalam mengidentifikasi infeksi baru-baru ini. Burung yang terinfeksi secara asimptomatik mungkin memiliki titer antibodi yang rendah.

 

Pengobatan

Hanya sejumlah antibiotik terbatas, seperti tetrasiklin, makrolida (misalnya, eritromisin, azitromisin), dan fluorokuinolon yang memiliki efektivitas baik terhadap klamidia. Tetrasiklin paling sering digunakan pada hewan. Pengobatan umumnya harus dilakukan dalam waktu yang lama untuk menghilangkan organisme tersebut. Doksisiklin selama 45 hari biasanya digunakan pada burung psittacine, tetapi saat ini sedang dicari protokol antibiotik yang lebih singkat. Sulfonamida dapat berguna melawan beberapa spesies Chlamydia, tetapi tidak efektif terhadap C. psittaci.

 

PENGENDALIAN

Pelaporan Penyakit

Dokter hewan yang menemukan atau mencurigai adanya klamidiosis pada burung harus mengikuti pedoman nasional dan/atau lokal untuk pelaporan penyakit. Penyakit ini harus dilaporkan ke otoritas kesehatan masyarakat di banyak negara karena potensi penyebarannya pada manusia. Di AS, klamidiosis pada burung juga termasuk dalam daftar penyakit yang wajib dilaporkan oleh dokter hewan di banyak negara bagian.

 

Pencegahan

Tidak ada vaksin untuk klamidiosis pada burung, dan pemberantasan total tampaknya tidak praktis karena banyaknya jumlah inang potensial. Namun, langkah-langkah dapat diambil untuk mengurangi risiko infeksi. Untuk mencegah masuknya klamidiosis burung ke dalam suatu fasilitas, burung baru harus diperiksa untuk tanda-tanda penyakit, dikarantina setidaknya selama 30 hari, dan diuji. Burung yang kembali dari acara seperti pameran atau bazar juga diisolasi. Burung liar harus dicegah masuk, dan tikus liar yang dapat bertindak sebagai vektor mekanis harus dikendalikan. Pembersihan dan desinfeksi rutin pada tempat dan peralatan juga membantu pengendalian. Penggunaan antibiotik profilaksis secara rutin tidak dianjurkan karena dapat mendorong berkembangnya strain C. psittaci yang resisten terhadap antibiotik serta bakteri lainnya. Program sertifikasi untuk burung peliharaan mungkin tersedia di beberapa wilayah. Rekomendasi lebih rinci dapat ditemukan di sumber-sumber seperti Compendium of Measures to Control Chlamydophila psittaci dari National Association of State Public Health Veterinarians (NASPHV) (lihat Sumber Daya Internet).

 

Jika suatu lokasi telah terinfeksi C. psittaci, karantina dapat membantu mencegah penyebaran infeksi. Burung harus diisolasi selama pengobatan. Langkah-langkah seperti mengepel lantai dengan desinfektan secara berkala dapat mengurangi peredaran debu dan bulu selama masa ini. Kawanan unggas mungkin perlu dimusnahkan. Tempat yang terinfeksi harus dibersihkan dan didesinfeksi secara menyeluruh sebelum mengisi kembali kawanan unggas atau melepas burung yang telah diobati dari karantina.

 

Orang yang sakit setelah kontak dengan burung sebaiknya menghindari burung lain sampai penyakit mereka didiagnosis. Dalam satu kasus, manusia diduga menginfeksi kawanan burung puyuh bobwhite (Colinus virginianus) dan burung pegar chukar (Alectoris chukar) setelah terinfeksi oleh burung beo.

 

MORBIDITAS DAN MORTALITAS

Chlamydia psittaci

Tingkat morbiditas dan mortalitas untuk infeksi dengan C. psittaci bervariasi tergantung pada spesies inang, kesehatan burung, dan virulensi isolat. Infeksi bersamaan, imunosupresi, atau faktor stres (misalnya, bertelur, kekurangan makanan, migrasi) dapat memicu munculnya tanda klinis atau meningkatkan keparahan penyakit. Usia juga bisa menjadi faktor; burung muda cenderung lebih rentan. Pada kawanan di mana C. psittaci beredar, burung sering kali terinfeksi setelah kehilangan perlindungan dari antibodi maternal. Epizootik cenderung terjadi ketika sejumlah besar burung rentan berada dalam kontak dekat.

 

C. psittaci relatif sering ditemukan pada burung psittacine dan merpati, tetapi dalam banyak kasus, dibawa secara subklinis. Pada burung psittacine yang jatuh sakit, tingkat mortalitas bisa mencapai 50% atau lebih. Tanda klinis cenderung kurang parah pada merpati, yang biasanya terinfeksi genotipe yang lebih ringan, dan kematian sering disebabkan oleh infeksi sekunder.

 

Pada unggas, C. psittaci paling sering dilaporkan pada kawanan kalkun dan bebek. Organisme ini cukup umum pada kawanan kalkun di beberapa bagian Eropa, di mana ia secara signifikan dapat berkontribusi pada sindrom penyakit pernapasan. Tingkat mortalitas untuk infeksi yang tidak diobati pada spesies ini umumnya berkisar antara 5% hingga 40%, tetapi kadang-kadang bisa lebih tinggi.

 

Genotipe D tampaknya terkait dengan wabah yang sangat parah. Namun, di daerah endemik, infeksi cenderung muncul sebagai penyakit pernapasan dengan tingkat mortalitas yang rendah atau tidak ada sama sekali. Klamidiosis simtomatik tampaknya jarang terjadi pada ayam, meskipun beberapa isolat dapat menyebabkan penyakit dan kematian pada burung yang diinfeksi secara eksperimental. Sejumlah besar kawanan ayam yang terinfeksi secara subklinis ditemukan dalam beberapa studi Eropa baru-baru ini. Klamidiosis klinis jarang dilaporkan pada unggas di AS, meskipun kasus klamidiosis pada manusia pernah ditelusuri ke unggas yang diproses dari kawanan yang terinfeksi.

 

Informasi tentang klamidiosis pada burung liar masih belum lengkap. Survei melaporkan tingkat prevalensi berkisar antara 1% hingga 74% pada berbagai inang liar. Infeksi tampaknya sangat umum pada burung air. Secara khusus, infeksi C. psittaci mungkin sering terjadi di antara burung laut yang diselamatkan (yaitu burung yang berada di bawah tekanan) di beberapa daerah. Hal ini telah mendorong beberapa penulis untuk memperingatkan bahwa operasi penyelamatan satwa liar harus mengambil tindakan pencegahan untuk mencegah penyakit pada manusia, terutama selama bencana seperti tumpahan minyak di mana banyak burung diterima. Wabah yang terlihat secara klinis kadang-kadang terjadi pada burung liar, termasuk burung pantai, burung air, dan burung migrasi. Laporan langka tentang peningkatan transmisi lingkungan ke manusia mungkin juga terkait dengan wabah burung liar.

 

Chlamydia avium dan Chlamydia gallinacea

Informasi tentang C. avium atau C. gallinacea masih terbatas. Dalam laporan awal, C. avium tampaknya umum ditemukan pada merpati asimptomatik. Sebuah studi di Jerman menemukan organisme ini dalam 15% kawanan pembiak merpati domestik, dan studi di Prancis mendeteksinya pada 8% merpati perkotaan. Meskipun C. avium telah dikaitkan dengan kasus klinis, peran C. gallinacea dalam penyakit avian masih perlu ditentukan.

 

INFEKSI PADA MANUSIA

Periode Inkubasi

Periode inkubasi pada manusia dapat berlangsung hingga satu bulan, tetapi sebagian besar infeksi menjadi simtomatik dalam waktu 5-14 hari.

 

Tanda Klinis

C. psittaci dapat menginfeksi manusia secara asimptomatik, menyebabkan keratoconjunctivitis, atau mengakibatkan penyakit sistemik. Tanda sistemik dapat muncul secara akut atau insidius, dan berkisar dari penyakit mirip flu ringan dengan gejala demam, menggigil, sakit kepala, mialgia, anoreksia, malaise, sakit tenggorokan, dan/atau fotofobia, dengan atau tanpa tanda pernapasan, hingga pneumonia atipikal berat dengan sesak napas. Beberapa pasien mengembangkan batuk kering, yang mungkin menjadi mukopurulen. Gejala gastrointestinal, nyeri sendi, pembengkakan sendi, dan ruam tidak spesifik juga telah dilaporkan. Beberapa kasus tidak rumit dapat sembuh tanpa pengobatan dalam waktu sekitar seminggu. Pada pasien lain, tanda klinis dapat bertahan selama berbulan-bulan sebelum diagnosis. Wanita hamil dapat menjadi sangat sakit dan juga dapat melahirkan prematur atau mengalami abortus. Komplikasi klamidiosis dapat mencakup endokarditis, miokarditis, penyakit ginjal, hepatitis, anemia, gagal organ ganda, dan tanda neurologis seperti ensefalitis, meningitis, dan mielitis. Kematian mungkin terjadi.

 

Bentuk atipikal dari psittacosis juga telah dilaporkan. Satu orang yang terinfeksi mengalami nyeri perut parah, muntah, sembelit, sakit kepala, dan penurunan berat badan selama enam bulan, tanpa riwayat penyakit pernapasan. Sebuah studi terbaru dari Mesir menemukan DNA C. psittaci pada beberapa wanita yang mengalami berbagai keluhan ginekologi termasuk keluarnya cairan vagina mukopurulen, nyeri perut bagian bawah, abortus berulang, dan/atau infertilitas. C. psittaci juga telah diusulkan terlibat dalam limfoma MALT (mucosa-associated lymphoid tissue) adnexa okular, meskipun ini masih belum terbukti.

 

Tes Diagnostik

Infeksi C. psittaci pada manusia dapat didiagnosis dengan metode yang mirip dengan yang digunakan pada burung. Reaktivitas silang dengan klamidia yang beredar di populasi manusia (Chlamydia pneumoniae dan Chlamydia trachomatis) dapat menjadi masalah dalam beberapa tes, seperti pengujian deteksi antigen. Kombinasi tanda klinis, serologi, dan asosiasi epidemiologis dengan burung telah digunakan untuk mendiagnosis psittacosis dalam banyak kasus, tetapi penggunaan PCR semakin meningkat. Pada manusia, C. psittaci dapat ditemukan dalam sputum, cairan pleura, atau darah selama tahap akut penyakit. Mikroskopi imunofluoresensi (MIF) dan ELISA adalah tes serologis yang umum digunakan. Pengobatan dengan antibiotik dapat menunda atau mengurangi respons antibodi. Seperti pada hewan, kultur tidak tersedia secara luas di laboratorium diagnostik.

 

Pengobatan

Psittacosis diobati dengan antibiotik yang efektif untuk C. psittaci, dikombinasikan, jika perlu, dengan perawatan suportif. Intervensi bedah mungkin diperlukan dalam kasus endokarditis. Beberapa bayi selamat dalam kasus wanita hamil yang diobati dengan eritromisin yang terinfeksi klamidia zoonotik (C. psittaci atau C. abortus) ketika kehamilan diakhiri lebih awal; namun, eritromisin tampaknya tidak dapat menyembuhkan kasus-kasus ini dengan sendirinya.

 

Pencegahan

Program pencegahan dan pengujian pada burung membantu melindungi manusia. Burung peliharaan harus dibeli dari pemasok yang tepercaya dan diperiksa oleh dokter hewan ketika pertama kali diperoleh. Burung dan kandangnya harus ditempatkan di area yang memiliki ventilasi baik untuk mencegah akumulasi debu infeksius, dan kandang harus dibersihkan secara teratur. Membasahi kandang dan area terkontaminasi lainnya dengan larutan pembersih atau disinfektan mengurangi aerosol. Kebersihan yang baik, termasuk mencuci tangan secara teratur, harus diterapkan saat menangani burung, kotoran mereka, dan lingkungan mereka. Makan dan minum harus dihindari dalam situasi ini. Setiap burung yang memiliki kontak rutin dengan publik (misalnya, burung di sekolah dan fasilitas perawatan jangka panjang) harus secara rutin disaring untuk C. psittaci.

 

Chlamydia avium dan Chlamydia gallinacea

Informasi mengenai C. avium atau C. gallinacea masih sangat sedikit. Dalam laporan awal, C. avium tampaknya umum ditemukan pada merpati yang tidak menunjukkan gejala. Sebuah studi di Jerman menemukan organisme ini pada 15% populasi breeder merpati domestik, dan studi di Prancis mendeteksinya pada 8% merpati kota. Meskipun C. avium telah dikaitkan dengan kasus klinis, peran C. gallinacea dalam penyakit unggas masih perlu ditentukan.

 

INFEKSI PADA MANUSIA

Masa Inkubasi

Masa inkubasi pada manusia dapat berlangsung hingga satu bulan, tetapi sebagian besar infeksi menjadi simptomatik dalam 5-14 hari.

 

Tanda Klinis

C. psittaci dapat menginfeksi orang tanpa gejala, menyebabkan keratoconjunctivitis, atau menghasilkan penyakit sistemik. Tanda sistemik dapat muncul secara akut atau insidens, dan berkisar dari penyakit mirip flu ringan dengan demam, menggigil, sakit kepala, nyeri otot, anoreksia, malaise, sakit tenggorokan, dan/atau fotofobia, dengan atau tanpa tanda pernapasan, hingga pneumonia atipikal yang parah dengan sesak napas. Beberapa pasien mengembangkan batuk kering yang dapat menjadi mukopurulen. Tanda gastrointestinal, artralgia, pembengkakan sendi, dan ruam tidak spesifik juga telah dilaporkan. Beberapa kasus yang tidak rumit dapat sembuh tanpa pengobatan dalam waktu sekitar seminggu. Pada pasien lain, tanda klinis dapat bertahan selama berbulan-bulan sebelum diagnosis. Wanita hamil dapat mengalami sakit parah dan juga dapat melahirkan prematur atau mengalami keguguran. Komplikasi dari klamidioisis dapat mencakup endokarditis, miokarditis, penyakit ginjal, hepatitis, anemia, kegagalan multi-organ, dan tanda neurologis seperti ensefalitis, meningitis, dan mielitis. Kematian mungkin terjadi.

 

Bentuk atipikal dari psittacosis juga telah dilaporkan. Satu orang yang terinfeksi mengalami nyeri perut yang parah, muntah, konstipasi, sakit kepala, dan penurunan berat badan selama enam bulan, tanpa riwayat penyakit pernapasan. Sebuah studi terbaru dari Mesir menemukan DNA C. psittaci pada beberapa wanita yang mengalami berbagai keluhan ginekologi termasuk keluarnya cairan vagina mukopurulen, nyeri perut bagian bawah, keguguran berulang, dan/atau infertilitas. C. psittaci juga telah diusulkan terlibat dalam limfoma MALT (mucosa-associated lymphoid tissue) adnexa okular, meskipun ini masih belum terbukti.

 

Tes Diagnostik

Infeksi C. psittaci pada manusia dapat didiagnosis dengan metode yang mirip dengan yang digunakan pada burung. Reaktivitas silang dengan klamidia yang beredar di populasi manusia (Chlamydia pneumoniae dan Chlamydia trachomatis) dapat menjadi masalah dalam beberapa tes, seperti uji deteksi antigen. Kombinasi tanda klinis, serologi, dan asosiasi epidemiologis dengan burung telah digunakan untuk mendiagnosis psittacosis dalam banyak kasus, tetapi penggunaan PCR semakin meningkat. Pada manusia, C. psittaci dapat ditemukan dalam dahak, cairan pleura, atau darah selama tahap akut penyakit. Mikroskopi imunofluoresensi (MIF) dan ELISA adalah tes serologis yang umum digunakan. Pengobatan dengan antibiotik dapat menunda atau mengurangi respons antibodi. Seperti pada hewan, kultur tidak tersedia secara luas di laboratorium diagnostik.

 

Pengobatan

Psittacosis diobati dengan antibiotik yang efektif untuk C. psittaci, digabungkan, jika perlu, dengan perawatan suportif. Intervensi bedah mungkin diperlukan pada kasus endokarditis. Beberapa bayi bertahan hidup pada wanita hamil yang diobati dengan eritromisin yang terinfeksi klamidia zoonosis (C. psittaci atau C. abortus) ketika kehamilan dihentikan lebih awal; namun, eritromisin tampaknya tidak mampu menyembuhkan kasus ini dengan sendirinya.

 

Pencegahan

Program pencegahan dan pengujian pada burung membantu melindungi manusia. Burung peliharaan harus dibeli dari pemasok yang terpercaya dan diperiksa oleh dokter hewan saat pertama kali diperoleh. Burung dan kandangnya harus disimpan di area yang berventilasi baik untuk mencegah penumpukan debu infeksius, dan kandang harus dibersihkan secara teratur. Mengembunkan kotoran sebelum menghapusnya mengurangi aerosol. Karena C. psittaci mungkin umum pada burung laut, perhatian harus diberikan untuk melindungi manusia di pusat penyelamatan, terutama ketika sejumlah besar burung yang stres (misalnya, setelah tumpahan minyak) sedang ditangani. Ini juga mungkin berlaku untuk spesies unggas lainnya. Anak-anak harus diperingatkan untuk tidak menyentuh burung yang sakit atau mati. Burung yang tidak menunjukkan gejala dapat mengeluarkan C. psittaci, dan siapa pun yang telah berhubungan dengan burung dan mengembangkan gejala yang konsisten dengan psittacosis harus berkonsultasi dengan dokter. Manusia dapat terinfeksi bahkan setelah terpapar secara sementara.

 

Langkah-langkah ketat harus diambil selama setiap kontak dengan burung yang diketahui terinfeksi C. psittaci. Peralatan pelindung pribadi (PPE) harus digunakan saat menangani burung atau membersihkan kandangnya. Respirator (N95 atau peringkat lebih tinggi) melindungi pemakainya dari organisme yang terhirup. Sarung tangan dan pakaian pelindung juga harus dipakai. Bangkai, jaringan, dan fomites terkontaminasi harus ditangani dengan hati-hati. Burung mati harus dicelupkan dalam larutan disinfektan untuk mengurangi risiko aerosol. Bangkai harus dibasahi dengan disinfektan, atau deterjen dan air, selama nekropsi. Nekropsi harus dilakukan di bawah hood aliran laminar. Jika hood tidak tersedia, PPE harus dikenakan.

 

Praktik pengendalian infeksi standar dan langkah-langkah pencegahan transmisi tetesan telah direkomendasikan untuk pasien manusia yang dirawat di rumah sakit, dan isolasi umumnya tidak dianggap perlu. Namun, transmisi antar manusia yang signifikan telah dilaporkan dari beberapa orang yang sangat sakit. Ini menunjukkan bahwa langkah-langkah tambahan seperti isolasi mungkin terkadang dianjurkan.

 

Morbitas dan Mortalitas

Risiko psittacosis paling tinggi di antara orang-orang yang terpapar burung atau jaringan mereka. Di antara lainnya, kelompok ini mencakup pemilik burung, dokter hewan, pekerja laboratorium, karyawan toko hewan peliharaan, dan pekerja unggas (termasuk pekerja di peternakan, di tempat penetasan, dan di pabrik pengolahan unggas). Meskipun sebagian besar kasus manusia telah dikaitkan dengan burung psittacine, merpati, dan unggas (terutama kalkun dan bebek), kasus klinis juga terjadi setelah kontak dengan burung lain. Pada tahun 1930-an, wabah besar di Islandia dan Kepulauan Faroe dikaitkan dengan perburuan fulmar (Fulmarus glacialis) untuk makanan. Burung-burung ini dianggap terinfeksi dari burung beo yang diangkut dari Amerika Selatan ke Eropa. Wabah di Australia mungkin disebabkan oleh organisme yang dibawa oleh burung liar, dan menyebar ketika organisme dalam kotoran burung menjadi aerosol selama aktivitas seperti memotong rumput. Peningkatan kasus psittacosis di Swedia pada musim dingin 2013 juga terkait dengan burung liar, tampaknya melalui paparan kotoran burung liar. Sebagian besar kasus terkait dengan pemeliharaan tempat pemberian makan burung.

 

Seberapa sering infeksi menjadi simptomatik pada manusia tidaklah jelas. Beberapa laporan menunjukkan bahwa infeksi manusia mungkin relatif umum setelah terpapar burung terinfeksi. Dalam satu wabah, 31% dari rumah tangga yang menerima burung peliharaan dari kawanan yang terinfeksi baik menjadi sakit atau mengembangkan antibodi terhadap C. psittaci. Sejak tahun 1996, negara-negara di seluruh dunia telah melaporkan kasus psittacosis yang berkisar dari kurang dari 10 hingga lebih dari 200 per tahun. Namun, penyakit ini mirip dengan penyakit lain, dan mungkin terdiagnosis rendah. Sebuah studi terbaru dari Jerman menemukan bahwa C. psittaci bertanggung jawab untuk 2,1% dari kasus pneumonia yang didapat di komunitas, sementara patogen manusia umum C. pneumoniae menyumbang 1,4%. Beberapa studi menunjukkan bahwa infeksi yang tidak tampak (atau kontaminasi) oleh C. psittaci mungkin cukup sering terjadi pada orang yang bekerja di peternakan unggas dan di tempat penetasan serta rumah potong hewan di Eropa. Kasus klinis sporadis mungkin terlihat bersamaan dalam situasi ini, terutama di antara karyawan baru. Orang yang bekerja dengan kalkun dan bebek dianggap memiliki risiko tertinggi. Satu studi dari Belgia melaporkan bahwa C. psittaci juga umum di kalangan pekerja di peternakan ayam.

 

Kasus psittacosis pada manusia bisa ringan atau berat, tergantung pada usia dan kondisi kesehatan individu, serta faktor-faktor lainnya. Kasus yang lebih serius umumnya terjadi pada lansia dan mereka yang lemah atau memiliki gangguan sistem kekebalan tubuh. Sebelum penggunaan antibiotik, tingkat kematian kasus secara umum berkisar antara 15-20% di populasi umum. Angka ini dilaporkan mencapai 80% pada wanita hamil dalam satu wabah. Kasus yang ditangani dengan benar dan tanpa komplikasi jarang berakibat fatal, tetapi orang yang sakit parah mungkin meninggal meskipun telah mendapatkan pengobatan. Tingkat kematian kasus dilaporkan tinggi pada kasus dengan endokarditis. Pemulihan bisa berlangsung lambat setelah penyakit yang parah.

 

REFERENSI

1.        Aaziz R, Gourlay P, Vorimore F, Sachse K, Siarkou VI, Laroucau K. Chlamydiaceae in North Atlantic seabirds admitted to a wildlife rescue center in western France. Appl Environ Microbiol. 2015;81(14):4581-90.

2.        Aaziz R, Vorimore F, Verheyden H, Picot D, Bertin C, Ruettger A, Sachse K, Laroucau K. Detection of atypical Chlamydiaceae in roe deer (Capreolus capreolus). Vet Microbiol. 2015;181(3- 4):318-22.

3.        Acha PN, Szyfres B (Pan American Health Organization [PAHO]). Zoonoses and communicable diseases common to man and animals. Volume 2. Chlamydiosis, rickettsioses and viroses. 3rd ed. Washington DC: PAHO; 2003. Scientific and Technical Publication No. 580. Zoonotic chlamydiosis; p. 42-51.

4.        Agunos A, Pierson FW, Lungu B, Dunn PA, Tablante N. Review of nonfoodborne zoonotic and potentially zoonotic poultry diseases. Avian Dis. 2016;60(3):553-75.

5.        Ahmed B , De Boeck C, Dumont A, Cox E, De Reu K, Vanrompay D. First experimental evidence for the transmission of Chlamydia psittaci in poultry through eggshell penetration. Transbound Emerg Dis. 2017;64(1):167-70.

6.        Arizmendi F, Grimes JE, Relford RL. Isolation of Chlamydia psittaci from pleural effusion in a dog. J Vet Diagn Invest. 1992;4(4):460-3.

7.        Becker Y. Chlamydia. In Baron S, editor. Medical microbiology. 4th ed. New York: Churchill Livingstone; 1996. Available at: http://www.gsbs.utmb.edu/microbook/ch039.htm.* Accessed 14 Nov 2002. Beckmann KM, Borel N, Pocknell AM, Dagleish MP, Sachse K, John SK, Pospischil A, Cunningham AA, Lawson B. Chlamydiosis in British garden birds (2005-2011): retrospective diagnosis and Chlamydia psittaci genotype determination. Ecohealth. 2014;11(4):544-63.

8.        Beeckman DS, Vanrompay DC. Zoonotic Chlamydophila psittaci infections from a clinical perspective. Clin Microbiol Infect. 2009;15(1):11-7.

9.        Bevan R. Chlamydiosis. In: Jordan FTW, Pattison M, editors. Poultry diseases. 4th ed. London: W.B. Saunders; 1996. p. 94-9. Bourne D, Beck N, Summerton CB. Chlamydia psittaci pneumonia presenting as acute generalised peritonism. Emerg Med J. 2003;20(4):386-7.

10.    Broholm KA, Böttiger M, Jernelius H, Johansson M, Grandien M, Sölver K. Ornithosis as a nosocomial infection. Scand J Infect Dis. 1977;9(4):263-7.

11.    Burnard D, Polkinghorne A. Chlamydial infections in wildlifeconservation threats and/or reservoirs of 'spill-over' infections? Vet Microbiol. 2016;196:78-84.

12.    Camus AC, Cho D-Y, Poston RP, Paulsen DP, Oliver JL, Law JM, Tully TN. Chlamydiosis in commercial rheas (Rhea americana). Avian Dis. 1994;38(3):666-71.

13.    Centers for Disease Control and Prevention [CDC]. Psittacosis [online]. CDC; 2009 Jan. Available at: http://www.cdc.gov/ ncidod/dbmd/diseaseinfo/psittacosis_t.htm. * Accessed 29 Apr 2009.

14.    Charlton BR, Bemudez AJ, Boulianne M, Halvorson DA, Schrader JS, Newman LJ, Sande JE, Wakenell PS. Avian Disease manual, 6th ed. Athens, GA: American Association of Avian Pathologists; 2006. Avian chlamydiosis; p. 68-71.

15.    Dean D, Rothschild J, Ruettger A, Kandel RP, Sachse K. Zoonotic Chlamydiaceae species associated with trachoma, Nepal. Emerg Infect Dis. 2013;19(12):1948-55.

16.    Deschuyffeleer TP, Tyberghien LF, Dickx VL, Geens T, Saelen JM, Vanrompay DC, Braeckman LA. Risk assessment and management of Chlamydia psittaci in poultry processing plants. Ann Occup Hyg. 2012;56(3):340-9.

17.    Dickx V, Beeckman DS, Dossche L, Tavernier P, Vanrompay D. Chlamydophila psittaci in homing and feral pigeons and zoonotic transmission. J Med Microbiol. 2010;59(Pt 11): 1348-53.

18.    Dickx V, Geens T, Deschuyffeleer T, Tyberghien L, Harkinezhad T, Beeckman DS, Braeckman L, Vanrompay D. Chlamydophila psittaci zoonotic risk assessment in a chicken and turkey slaughterhouse. J Clin Microbiol. 2010;48(9): 3244-50.

19.    Dickx V, Vanrompay D. Zoonotic transmission of Chlamydia psittaci in a chicken and turkey hatchery. J Med Microbiol. 2011;60(Pt 6):775-9.

20.    Docherty DE, Franson JC, Brannian RE, Long RR, Radi CA, Krueger D, Johnson RF Jr. Avian botulism and avian chlamydiosis in wild water birds, Benton Lake National Wildlife Refuge, Montana, USA. J Zoo Wildl Med. 2012;43(4):885-8.

21.    Dumke R, Schnee C, Pletz MW, Rupp J, Jacobs E, Sachse K, Rohde G; Capnetz Study Group. Mycoplasma pneumoniae and Chlamydia spp. infection in community-acquired pneumonia, Germany, 2011-2012. Emerg Infect Dis. 2015;21(3):426-34.

22.    Eidson M. Psittacosis/avian chlamydiosis. J Am Vet Med Assoc. 2002;221(12):1710-2. Erbeck DH, Nunn SA. Chlamydiosis in pen-raised bobwhite quail (Colinus virginianus) and chukar partridge (Alectoris chukar) with high mortality. Avian Dis. 1999;43(4):798-803.

23.    Evans EE. Zoonotic diseases of common pet birds: psittacine, passerine, and columbiform species. Vet Clin North Am Exot Anim Pract. 2011;14(3):457-76, vi.

24.    Fowler ME, Schulz T, Ardans A, Reynolds B, Behymer D. Chlamydiosis in captive raptors. Avian Dis. 1990;34(3): 657-62

25.    Fraser G, Norval J, Withers AR, Gregor WW. A case history of psittacosis in the dog. Vet Rec. 1969;85(3):54-8.

26.    Frutos MC, Monetti MS, Vaulet LG, Cadario ME, Fermepin MR, Ré VE, Cuffini CG. Genetic diversity of Chlamydia among captive birds from central Argentina. Avian Pathol. 2015;44(1):50-6.

27.    Fudge AM. Update on chlamydiosis. Vet Clin North Am Small Anim Pract. 1984;14(2):201-21.

28.    Gerlach H. Chlamydia. In: Harrison GJ, Harrison L, editors. Clinical avian medicine and surgery. Philadelphia: W.B. Saunders; 1986. p. 457-63.

29.    Gresham AC, Dixon CE, Bevan BJ. Domiciliary outbreak of psittacosis in dogs: potential for zoonotic infection.Vet Rec. 1996;138(25):622-3.

30.    Guo W, Li J, Kaltenboeck B, Gong J, Fan W, Wang C. Chlamydia gallinacea, not C. psittaci, is the endemic chlamydial species in chicken (Gallus gallus). Sci Rep. 2016;6:19638.

31.    Harkinezhad T, Geens T, Vanrompay D. Chlamydophila psittaci infections in birds: A review with emphasis on zoonotic consequences. Vet Microbiol. 2009;135(1-2):68-77.

32.    Harkinezhad T, Verminnen K, De Buyzere M, Rietzschel E, Bekaert S, Vanrompay D. Prevalence of Chlamydophila psittaci infections in a human population in contact with domestic and companion birds. Med Microbiol. 2009;58(Pt 9):1207-12.

33.    Harkinezhad T, Verminnen K, Van Droogenbroeck C, Vanrompay D. Chlamydophila psittaci genotype E/B transmission from African grey parrots to humans. J Med Microbiol. 2007;56(Pt 8):1097-100. Herrmann B, Persson H, Jensen J-K, Debes Joensen H, Klint M, Olsen B. Chlamydophila psittaci in fulmars, the Faroe Islands. Emerg Infect Dis. 2006;12(2):330–2.

34.    Hoppes SM. Bacterial diseases of pet birds. Chlamydiosis. In: Kahn CM, Line S, Aiello SE, editors. The Merck veterinary manual [online]. Whitehouse Station, NJ: Merck and Co; 2016. Available at: http://www.merckvetmanual.com/exoticand-laboratory-animals/pet-birds/bacterial-diseases-of-petbirds. Accessed 20 Apr 2017.

35.    Hulin V, Bernard P, Vorimore F, Aaziz R, Cléva D, Robineau J, Durand B, Angelis L, Siarkou VI, Laroucau K. Assessment of Chlamydia psittaci shedding and environmental contamination as potential sources of worker exposure throughout the mule duck breeding process. Appl Environ Microbiol. 2015;82(5):1504-18.

36.    Hulin V, Oger S, Vorimore F, Aaziz R, de Barbeyrac B, Berruchon J, Sachse K, Laroucau K. Host preference and zoonotic potential of Chlamydia psittaci and C. gallinacea in poultry. Pathog Dis. 2015;73(1):1-11.

37.    Hyde SR, Benirschke K. Gestational psittacosis: case report and literature review. Mod Pathol. 1997;10(6):602-7.

38.    Ito I, Ishida T, Mishima M, Osawa M, Arita M, Hashimoto T, Kishimoto T. Familial cases of psittacosis: possible person-toperson transmission. Intern Med. 2002;41(7):580-3.

39.    Jelocnik M, Branley J, Heller J, Raidal S, Alderson S, Galea F, Gabor M, Polkinghorne A. Multilocus sequence typing identifies an avian-like Chlamydia psittaci strain involved in equine placentitis and associated with subsequent human psittacosis. Emerg Microbes Infect. 2017;6(2):e7.

40.    Jencek JE, Beaufrère H, Tully TN Jr, Garner MM, Dunker FH, Baszler TV. An outbreak of Chlamydophila psittaci in an outdoor colony of Magellanic penguins (Spheniscus magellanicus). J Avian Med Surg. 2012;26(4):225-31.

41.    Joseph SJ, Marti H, Didelot X, Castillo-Ramirez S, Read TD, Dean D. Chlamydiaceae genomics reveals interspecies admixture and the recent evolution of Chlamydia abortus infecting lower mammalian species and humans. Genome Biol Evol. 2015;7(11):3070-84.

42.    Kabeya H, Sato S, Maruyama S. Prevalence and characterization of Chlamydia DNA in zoo animals in Japan. Microbiol Immunol. 2015;59(9):507-15.

43.    Knittler MR, Sachse K. Chlamydia psittaci: update on an underestimated zoonotic agent. Pathog Dis. 2015;73(1):1-15.

44.    Korman TM, Turnidge JD, Grayson ML. Neurological complications of chlamydial infections: Case report and review. Clin Infect Dis.1997;25(4:847-51.

45.    Krawiec M, Piasecki T, Wieliczko A. Prevalence of Chlamydia psittaci and other Chlamydia species in wild birds in Poland. Vector Borne Zoonotic Dis. 2015;15(11):652-5.

46.    Lagae S, Kalmar I, Laroucau K, Vorimore F, Vanrompay D. Emerging Chlamydia psittaci infections in chickens and examination of transmission to humans. J Med Microbiol. 2014;63(Pt 3):399-407.

47.    Laroucau K, Aaziz R, Meurice L, Servas V, Chossat I, Royer H, de Barbeyrac B, Vaillant V, Moyen JL, Meziani F, Sachse K, Rolland P. Outbreak of psittacosis in a group of women exposed to Chlamydia psittaci-infected chickens. Euro Surveill. 2015;20(24). pii: 21155.

48.    Laroucau K, de Barbeyrac B, Vorimore F, Clerc M, Bertin C, Harkinezhad T, Verminnen K, Obeniche F, Capek I, Bébéar C, Durand B, Zanella G, Vanrompay D, Garin-Bastuji B, Sachse K. Chlamydial infections in duck farms associated with human cases of psittacosis in France. Vet Microbiol. 2009;135(1-2):82-9.

49.    Laroucau K, Vorimore F, Aaziz R, Berndt A, Schubert E, Sachse K. Isolation of a new chlamydial agent from infected domestic poultry coincided with cases of atypical pneumonia among slaughterhouse workers in France. Infect Genet Evol. 2009;9(6):1240-7.

50.    Lenzko H, Moog U, Henning K, Lederbach R, Diller R, Menge C, Sachse K, Sprague LD. High frequency of chlamydial coinfections in clinically healthy sheep flocks. BMC Vet Res. 2011;7:29.

51.    Li J, Guo W, Kaltenboeck B, Sachse K, Yang Y, Lu G, Zhang J, Luan L, You J, Huang K, Qiu H, Wang Y, Li M, Yang Z, Wang. Chlamydia pecorum is the endemic intestinal species in cattle while C. gallinacea, C. psittaci and C. pneumoniae associate with sporadic systemic infection. Vet Microbiol. 2016;193:93-9.

52.    Lipman NS1, Yan LL, Murphy JC. Probable transmission of Chlamydia psittaci from a macaw to a cat. J Am Vet Med Assoc. 1994 May 1;204(9):1479-80.

53.    Madani SA, Peighambari SM. PCR-based diagnosis, molecular characterization and detection of atypical strains of avian Chlamydia psittaci in companion and wild birds. Avian Pathol. 2013;42(1):38-44.

54.    Magnino S, Haag-Wackernagel D, Geigenfeind I, Helmecke S, Dovc A, Prukner-Radovcić E, Residbegović E, Ilieski V, Laroucau K, Donati M, Martinov S, Kaleta EF. Chlamydial infections in feral pigeons in Europe: Review of data and focus on public health implications.Vet Microbiol. 2009;135(1-2):54-67.

55.    Newcomer CE, Anver MR, Simmons JL, Wilcke BW Jr, Nace GW. Spontaneous and experimental infections of Xenopus laevis with Chlamydia psittaci. Lab Anim Sci. 1982;32(6):680-6.

56.    Opota O, Jaton K, Branley J, Vanrompay D, Erard V, Borel N, Longbottom D, Greub G. Improving the molecular diagnosis of Chlamydia psittaci and Chlamydia abortus infection with a species-specific duplex real-time PCR. J Med Microbiol. 2015;64(10):1174-85.

57.    Osman KM, Ali HA, Eljakee JA, Gaafar MM, Galal HM. Antimicrobial susceptibility and molecular typing of multiple Chlamydiaceae species isolated from genital infection of women in Egypt. Microb Drug Resist. 2012;18(4):440-5.

58.    Osman KM, Ali HA, Eljakee JA, Galal HM. Chlamydiaceae in riverine buffalo (Bubalus bubalis) and cows (Bos taurus) in Egypt with and without signs of reproductive disease. N Z Vet J. 2012;60(4):228-33.

59.    Osman KM, Ali HA, ElJakee JA, Galal HM. Chlamydophila psittaci and Chlamydophila pecorum infections in goats and sheep in Egypt. Rev Sci Tech. 2011;30(3):939-48.

60.    Osman KM, Ali HA, ElJakee JA, Galal HM. Prevalence of Chlamydophila psittaci infections in the eyes of cattle, buffaloes, sheep and goats in contact with a human population. Transbound Emerg Dis. 2013;60(3):245-51

61.    Ostermann C, Rüttger A, Schubert E, Schrödl W, Sachse K, Reinhold P. Infection, disease, and transmission dynamics in calves after experimental and natural challenge with a bovine Chlamydia psittaci isolate. PLoS One. 2013;8(5):e64066.

62.    Pantchev A, Sting R, Bauerfeind R, Tyczka J, Sachse K. Detection of all Chlamydophila and Chlamydia spp. of veterinary interest using species-specific real-time PCR assays. Comp Immunol Microbiol Infect Dis. 2010;33(6):473-84.

63.    Public Health Agency of Canada (PHAC). Pathogen safety data sheet: Chlamydia trachomatis [online]. Pathogen Regulation Directorate, PHAC; 2011 Dec. Available at: http://www.phacaspc.gc.ca/lab-bio/res/psds-ftss/chlamydia-trachomatis-eng.ph. Accessed 30 Mar 2017.

64.    Public Health Agency of Canada (PHAC). Pathogen safety data sheet: Chlamydia psittaci [online]. Pathogen Regulation Directorate, PHAC; 2011 Dec. Available at: http://www.phacaspc.gc.ca/lab-bio/res/psds-ftss/chlamydophila-psittacieng.php. Accessed 30 Mar 2017.

65.    Radomski N, Einenkel R, Müller A, Knittler MR. Chlamydia-host cell interaction not only from a bird's eye view: some lessons from Chlamydia psittaci. FEBS Lett. 2016;590(21):3920-3940.

66.    Raso TF, Carrasco AO, Silva JC, Marvulo MF, Pinto AA. Seroprevalence of antibodies to Chlamydophila psittaci in zoo workers in Brazil. Zoonoses Public Health. 2010;57(6):411-6.

67.    Rehn M, Ringberg H, Runehagen A, Herrmann B, Olsen B, Petersson AC, Hjertqvist M, Kühlmann-Berenzon S, Wallensten A.Unusual increase of psittacosis in southern Sweden linked to wild bird exposure, January to April 2013. Euro Surveill. 2013;18(19):20478.

68.    Reinhold P, Ostermann C, Liebler-Tenorio E, Berndt A, Vogel A, Lambertz J, Rothe M, Rüttger A, Schubert E, Sachse K. A bovine model of respiratory Chlamydia psittaci infection: challenge dose titration. PLoS One. 2012;7(1):e30125.

69.    Reinhold P, Sachse K, Kaltenboeck B. Chlamydiaceae in cattle: commensals, trigger organisms, or pathogens? Vet J. 2011;189(3):257-67.

70.    Robertson T, Bibby S, O’Rourke D, Belfiore T, Agnew-Crumpton R, Noormohammadi A. Identification of chlamydial species in crocodiles and chickens by PCR-HRM curve analysis. Vet. Microbiol. 2010;145:373-9.

71.    Rodolakis A, Laroucau K. Chlamydiaceae and chlamydial infections in sheep or goats. Vet Microbiol. 2015;181(1- 2):107-18. Rodolakis A, Yousef Mohamad K. Zoonotic potential of Chlamydophila. Vet Microbiol. 2010;140(3-4):382-91.

72.    Sachse K, Bavoil PM, Kaltenboeck B, Stephens RS, Kuo CC, Rosselló-Móra R, Horn M. Emendation of the family Chlamydiaceae: proposal of a single genus, Chlamydia, to include all currently recognized species. Syst Appl Microbiol. 2015;38(2):99-103.

73.    Sachse K, Laroucau K. Two more species of Chlamydia-does it make a difference? Pathog Dis. 2015;73(1):1-3.

74.    Sachse K, Laroucau K, Riege K, Wehner S, Dilcher M, et al . Evidence for the existence of two new members of the family Chlamydiaceae and proposal of Chlamydia avium sp. nov. and Chlamydia gallinacea sp. nov. Syst Appl Microbiol. 2014;37(2):79-88.

75.    Sachse K, Vretou E, Livingstone M, Borel N, Pospischil A, Longbottom D. Recent developments in the laboratory diagnosis of chlamydial infections. Vet Microbiol. 2009;135(1-2):2-21.

76.    Sareyyupoglu B, Cantekin Z, Bas B. Chlamydophila psittaci DNA detection in the faeces of cage birds. Zoonoses Public Health. 2007;54(6-7):237-42.

77.    Schautteet K, Vanrompay D. Chlamydiaceae infections in pig. Vet Res. 2011;42:29.

78.    Shivaprasad HL, Carnaccini S, Bland M, Aaziz R, Moeller R, Laroucau K. An unusual outbreak of chlamydiosis in commercial turkeys involving the nasal glands. Avian Dis. 2015;59(2):315-22.

79.    Smith KA, Campbell CT, Murphy J, Stobierski MG, Tengelsen LA; National Association of State Public Health Veterinarians (NASPHV). Compendium of measures to control Chlamydophila psittaci infection among humans (psittacosis) and pet birds (avian chlamydiosis), 2010. NASPHV; 2010. Available at: www.nasphv.org/Documents/Psittacosis.pdf. Accessed 20 Apr 2017.

80.    Song L, Li Y, Liu G, He J, Zhu H, Duan Q. Genotyping of Chlamydophila psittaci strains derived from avian and mammalian species. Vet Res Commun. 2009;33(6):577-80.

81.    Sprague LD, Schubert E, Hotzel H, Scharf S, Sachse K. The detection of Chlamydophila psittaci genotype C infection in dogs. Vet J. 2009 Sep;181(3):274-9.

82.    Szeredi L, Hotzel H, Sachse K. High prevalence of chlamydial (Chlamydophila psittaci) infection in fetal membranes of aborted equine fetuses. Vet Res Commun. 2005;29 Suppl 1:37-49.

83.    Szymańska-Czerwińska M, Mitura A, Niemczuk K, Zaręba K, Jodełko A, Pluta A, Scharf S, Vitek B, Aaziz R, Vorimore F, Laroucau K, Schnee C. Dissemination and genetic diversity of chlamydial agents in Polish wildfowl: Isolation and molecular characterisation of avian Chlamydia abortus strains. PLoS One. 2017;12(3):e0174599.

84.    Telfer BL, Moberley SA, Hort KP, Branley JM, Dwyer DE, Muscatello DJ, Correll PK, England J, McAnulty JM. Probable psittacosis outbreak linked to wild birds. Emerg Infect Dis. 2005;11(3):391-7.

85.    Van Loo H, Pardon B, De Schutter P, De Bleecker K, Vanrompay D, Deprez P, Maris J. Detection of Chlamydia psittaci in Belgian cattle with signs of respiratory disease and milk drop syndrome. Vet Rec. 2014;175(22):562.

86.    Vanrompay D, Ducatelle R, Haesebrouck F. Chlamydia psittaci infections: a review with emphasis on avian chlamydiosis. Vet Microbiol. 1995;45(2–3): 93-119.

87.    Verminnen K, Vanrompay D. Chlamydophila psittaci infections in turkeys: overview of economic and zoonotic importance and vaccine development. Drugs Today (Barc). 2009;45 Suppl B:147-50.

88.    Vorimore F, Thébault A, Poisson S, Cléva D, Robineau J, de Barbeyrac B, Durand B, Laroucau K. Chlamydia psittaci in ducks: a hidden health risk for poultry workers. Pathog Dis. 2015;73(1):1-9.

89.    Wallensten A, Fredlund H, Runehagen A. Multiple human-tohuman transmission from a severe case of psittacosis, Sweden, January-February 2013. Euro Surveill. 2014;19(42). pii: 20937.

90.    World Organization for Animal Health (OIE). Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals [online]. Paris: OIE; 2015. Avian chlamydiosis. Available at: http://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tah m/2.03.01_AVIAN_CHLAMYD.pdf. Accessed 10 Apr 2017.

91.    Yang J, Ling Y, Yuan J, Pang W, He C. Isolation and characterization of peacock Chlamydophila psittaci infection in China. Avian Dis. 2011;55(1):76-81.

92.    Yin L, Lagae S, Kalmar I, Borel N, Pospischil A, Vanrompay D. Pathogenicity of low and highly virulent Chlamydia psittaci isolates for specific-pathogen-free chickens. Avian Dis. 2013;57(2):242-7.

93.    Wannaratana S, Thontiravong A, Amonsin A, Pakpinyo S. Persistence of Chlamydia psittaci in various temperatures and times. Avian Dis. 2017;61(1):40-5.

94.    Zhang F, Li S, Yang J, Pang W, Yang L, He C. Isolation and characterization of Chlamydophila psittaci isolated from laying hens with cystic oviducts. Avian Dis. 2008;52(1):74-8.

95.    Zocevic A, Vorimore F, Marhold C, Horvatek D, Wang D, Slavec B, Prentza Z, Stavianis G, Prukner-Radovcic E, Dovc A, Siarkou VI, Laroucau K. Molecular characterization of atypical Chlamydia and evidence of their dissemination in different European and Asian chicken flocks by specific realtime PCR. Environ Microbiol. 2012;14(8):2212-22.

SUMBER: The Center for Food Security and Public Health. 2017. Psittacosis / Avian Chlamydosis, Ornithosis, Parrot Fever. https://www.cfsph.iastate.edu/Factsheets/pdfs/psittacosis.pdf