Vaksin Rabies Oral

Vaksin rabies oral : strategi baru dalam memerangi kematian akibat rabies

Tahukah Anda bahwa anjing menyebabkan hampir 59.000 kematian manusia akibat rabies setiap tahun di seluruh dunia?

Mitra utama¹ telah berjanji untuk menghilangkan rabies yang disebarkan oleh anjing. Tujuan mereka adalah untuk mencapai nol kematian manusia pada tahun 2030. Risiko rabies sangat tinggi di negara-negara dengan populasi anjing liar yang besar atau di mana masyarakat, bukan pemilik tunggal, merawat anjing.

 

“Anjing yang berkeliaran bebas telah memainkan peran utama dalam menyebarkan rabies di antara populasi hewan dan manusia di Thailand dan negara-negara lain di kawasan ini selama beberapa dekade. Memvaksinasi anjing-anjing ini dengan suntikan membutuhkan usaha yang luar biasa. Tanpa alat inovatif untuk memvaksinasi anjing yang berkeliaran bebas, eliminasi rabies sulit dicapai.” Karoon Chanachai, sebelumnya Departemen Pengembangan Ternak (DLD) dan sekarang penasihat kesehatan hewan regional untuk Misi Pembangunan Regional Badan Pembangunan Internasional AS untuk Asia.

 

Karena gigitan anjing menyebabkan sebagian besar kematian akibat rabies – lebih dari 9 dari setiap 10 kasus – menjaga anjing agar tidak terkena rabies adalah strategi paling penting untuk mencegah kematian manusia akibat rabies. Kita dapat membantu mencegah kematian akibat rabies pada manusia dengan memvaksinasi anjing secara rutin terhadap rabies.

Untuk menghilangkan rabies di masyarakat, kita perlu memvaksinasi 7 dari setiap 10 anjing.

Program vaksinasi rabies untuk anjing saat ini bergantung pada penggunaan suntikan suntik. Metode untuk melindungi anjing dari rabies di negara-negara berpenghasilan rendah ini bisa jadi rumit karena banyak anjing yang belum pernah ke dokter hewan dan mungkin tidak terbiasa berinteraksi dekat dengan manusia.

 

Metode yang lebih baru – memberikan vaksin oral pada anjing – mendapatkan daya tarik sebagai alternatif yang aman dan efektif.

Organisasi Kesehatan Dunia (WHO) dan Organisasi Kesehatan Hewan Dunia (OIE) mendukung penggunaan vaksin rabies oral yang efektif dan aman untuk anjing.

Membuat anjing 'memakan' umpan vaksin rabies jauh lebih cepat, lebih mudah dan lebih praktis daripada menangkap mereka dengan jaring dan memberi mereka suntikan rabies. Ini juga menghemat uang karena lebih banyak anjing dapat divaksinasi setiap hari.

 

“Butuh waktu berbulan-bulan untuk melatih tim yang terdiri dari orang-orang yang sehat secara fisik untuk menangkap anjing yang sulit dijangkau menggunakan jaring untuk suntikan rabies. Anjing yang sama ini dapat divaksinasi menggunakan vaksin oral oleh orang-orang setelah beberapa jam pelatihan tentang cara menyebarkan umpan. Cara efisien untuk menjangkau anjing yang sebelumnya tidak dapat ditangani untuk vaksinasi ini adalah pengubah permainan. Ini bisa/akan secara drastis meningkatkan pengendalian rabies di banyak bagian dunia yang masih menjadi masalah besar.” Andy Gibson, direktur penelitian strategis untuk Mission Rabies.

 

ORV di Thailand

“Thailand menerapkan vaksin oral pada populasi anjing yang berkeliaran bebas. Bekerja sama dengan mitra, kami mengidentifikasi umpan yang paling tepat untuk anjing Thailand yang bebas berkeliaran. Kami bekerja dengan lima kota/kabupaten untuk meluncurkan vaksinasi rabies oral di wilayah mereka pada tahun 2020, memvaksinasi hampir 2.000 anjing yang berkeliaran bebas. Kami mencapai 65% cakupan vaksinasi pada populasi anjing jelajah bebas di area ini. Semua pihak sepakat bahwa alat ini layak dan praktis untuk meningkatkan cakupan vaksinasi pada populasi anjing yang sulit dijangkau. Lebih penting lagi, tidak ada wabah rabies yang dilaporkan pada anjing yang berkeliaran bebas di salah satu dari lima kota ini sejak vaksinasi oral dilakukan. Kami akan meningkatkan vaksinasi rabies oral pada anjing yang berkeliaran bebas pada tahun 2021 untuk melengkapi suntikan vaksin rabies.” Karoon Chanachai, penasihat kesehatan hewan regional untuk Misi Pembangunan Regional Badan Pembangunan Internasional AS untuk Asia.

 

Bagaimana pakar kesehatan dapat meningkatkan penggunaan vaksin rabies oral

Untuk mengeksplorasi lebih lanjut penggunaan vaksin rabies oral (ORV) pada anjing dan memastikannya dilakukan dengan aman, pakar kesehatan di seluruh dunia harus bekerja di bidang berikut:

Evaluasi Keamanan: Karena produk vaksin rabies oral mengandung versi virus hidup yang dilemahkan, mereka perlu dievaluasi keamanannya secara menyeluruh – untuk ditangani dan dibagikan oleh manusia, dan untuk dimakan hewan.

WHO dan OIE telah mengembangkan panduan dan laporan tentang bagaimana hal ini dapat dilakukan. Selain itu, proses tinjauan vaksin formal global dapat membantu meningkatkan kepercayaan diri terkait penggunaan produk vaksin oral ini.

 

Sertikasi Vaksin oleh Pemerintah Pusat

Tidak setiap negara memiliki proses lisensi vaksin veteriner. Dan mencapai lisensi di setiap negara dapat secara signifikan menunda eliminasi rabies. Entitas seperti European Medicines Institute harus mempertimbangkan untuk mengakui lisensi vaksin veteriner regional untuk mengurangi hambatan penggunaan vaksin rabies oral yang aman dan efektif.

Pengembangan Umpan

Ada bukti bahwa anjing mungkin lebih menyukai rasa umpan yang berbeda berdasarkan apa yang biasanya mereka makan, yang dapat bervariasi menurut tempat tinggal mereka. Kelompok yang menerapkan penggunaan ORV pada anjing perlu terus meneliti jenis umpan mana yang paling disukai anjing dan memastikan bahwa rasa tersebut dapat diproduksi secara massal.

 

Alokasi Sumber Daya

Vaksin rabies oral cenderung lebih mahal daripada “suntikan” tradisional. Vaksin oral harus digunakan dengan tepat, dan dengan perencanaan yang tepat, untuk memastikan bahwa vaksin tersebut seefektif mungkin.

 

Edukasi

Sejak vaksin oral rabies adalah produk baru untuk anjing, organisasi internasional perlu mengembangkan program edukasi baru untuk membantu pemberi vaksin dan pemilik memahami manfaat dari vaksin baru ini dan bagaimana vaksin tersebut dapat digunakan untuk menghilangkan kasus rabies yang terkait dengan anjing.

ORV dapat memainkan peran penting dalam memerangi rabies dan menawarkan cara baru untuk membantu menyelamatkan nyawa dan mencapai tujuan menghilangkan kematian manusia akibat rabies yang disebabkan oleh anjing pada tahun 2030.

 

SUMBER

WHO.

https://www.who.int/news/item/03-05-2021-oral-rabies-vaccine-a-new-strategy-in-the-fight-against-rabies-deaths.

1 The World Health Organization (WHO), World Organisation for Animal Health (OIE), Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO) and Global Alliance for Rabies Control (GARC) comprise United Against Rabies (UAR)

Rencana Kontinjensi ASF

 

LATAR BELAKANG

African swine fever (ASF) adalah penyakit yang sangat menular yang mempengaruhi babi domestik dan babi liar dari segala usia, menyebabkan kerugian ekonomi dan kesehatan yang sangat besar di negara-negara yang terkena dampak karena tingkat kematian yang tinggi yang diamati dalam bentuk akutnya, infektivitasnya besar melalui pergerakan hewan dan produk hewan, biaya besar untuk pengendalian dan pemberantasan ASF dan pembatasan internasional yang diberlakukan.

 

ASF disebabkan oleh virus dengan struktur kompleks, diklasifikasikan sebagai satu-satunya anggota keluarga Asfaviridae, yang saat ini belum ada pengobatan atau vaksin yang efektif. ASF adalah penyakit nonzoonotik yang dapat dilaporkan. Dalam istilah klinis dan anatomi, bentuk akut dan akut African Swine Fever (karena hanya jenis virus yang sangat virulen yang beredar saat ini, bentuk akut dan perakut adalah jenis yang paling umum) ditandai dengan demam tinggi, kematian yang tinggi pada permulaan penyakit. infeksi, perdarahan pada kulit dan organ dalam (limfa, ginjal, ganglia) dan kerusakan jaringan limfoid.

 

Diagnosis laboratorium sangat penting untuk menegakkan diagnosis yang akurat. Sejumlah besar teknik diagnostik yang sangat sensitif, spesifik dan terbukti sekarang ada yang memungkinkan diagnosis etiologis dan/atau serologis dibuat hanya dalam beberapa jam [1].

 

Saat ini ASF endemik di lebih dari 20 negara Afrika sub-Sahara dan di pulau Sardinia Italia. Pada tahun 2007, wabah dilaporkan di Georgia, mungkin berasal dari Afrika tenggara, karena genotipe virus yang diidentifikasi (tipe II) beredar di daerah itu. Dari Georgia, virus menyebar ke beberapa negara di wilayah Kaukasus dan Federasi Rusia, menciptakan situasi epidemiologis risiko kesehatan yang tinggi.

 

Panel ahli dari European Food Safety Authority (EFSA) baru-baru ini menganalisis situasi epidemiologi ASF saat ini di wilayah Kaukasus dan kemungkinan risiko penyebaran virus ke zona bebas ASF lainnya, termasuk Uni Eropa, serta kemungkinan bahwa zona yang terinfeksi saat ini bisa tetap endemik. Hasil analisis menunjukkan risiko tinggi menyebar ke zona tetangga. Risiko ini akan moderat untuk Uni Eropa, dan risiko zona endemik yang tersisa juga akan moderat [2].

 

Babi biasanya tertular virus African Swine Fever (ASFV) melalui rute oronasal, meskipun rute lain juga mungkin, seperti rute kulit (luka, goresan atau lecet), atau rute intramuskular, subkutan atau intravena, yang disebabkan oleh gigitan babi. kutu lunak dari genus Ornithodoros. Masa inkubasi berkisar antara 3 sampai 21 hari, tergantung pada isolat dan rute paparan. Replikasi primer terjadi di monosit dan makrofag kelenjar getah bening yang paling dekat dengan titik masuk virus.

 

Virus menyebar melalui jalur darah, berhubungan dengan membran eritrosit, dan/atau melalui jalur limfatik. Viremia biasanya dimulai 2-8 hari setelah infeksi dan, karena kurangnya antibodi penetralisir, bertahan untuk waktu yang lama, bahkan berbulan-bulan. Saat ASFV menyebar ke organ yang berbeda, seperti kelenjar getah bening, sumsum tulang, limpa, ginjal, paru-paru dan hati, replikasi sekunder dan lesi hemoragik yang khas terjadi [3].

 

Penyebaran virus dari hewan yang terinfeksi dapat dimulai dari hari kedua pasca infeksi, melalui air liur, kotoran mata dan hidung, dan melalui aerosol. Setelah beberapa hari, virus juga dapat keluar melalui urin, feses, dan air mani.

 

Rute utama penularan adalah:

- kontak antara hewan yang terinfeksi, pulih atau tanpa gejala dan hewan yang rentan;

- konsumsi produk yang terkontaminasi;

- kendaraan pengangkut;

- pakaian dan alas kaki yang terkontaminasi;

- gigitan dari kutu genus Ornithodoros; dan

- peralatan bedah dan/atau tempat perawatan hewan.

 

Penyakit ini ditularkan terutama melalui kontak langsung antara hewan pembawa yang terinfeksi atau pulih dan hewan yang rentan, atau ketika babi diberi makan dengan limbah dari makanan yang disiapkan menggunakan daging segar yang terkontaminasi dari negara-negara endemik yang terinfeksi.

 

Produk olahan komersial (seperti ham atau daging babi yang diawetkan) tidak mengandung virus aktif 140 hari setelah pemrosesan daging segar dimulai. Virus tidak aktif dalam produk yang diberi perlakuan panas. Babi hutan Eropa rentan terhadap infeksi ASFV, menunjukkan tanda-tanda klinis dan kematian yang serupa dengan yang diamati pada babi domestik, meskipun babi hutan cenderung lebih tahan daripada babi domestik. Transmisi aerosol tidak penting dalam penyebaran ASF. Namun, darah babi yang baru terinfeksi mengandung muatan ASFV yang besar: 10 ^5,3 - 10 ^9,3 HAD₅₀ per mililiter [4].

 

Oleh karena itu penyakit ini dapat menyebar luas sebagai akibat dari perkelahian antara babi dengan luka berdarah, adanya diare berdarah atau pelaksanaan pemeriksaan post-mortem. Sepanjang sejarah ASF, bukti epidemiologis telah menunjukkan bahwa sebagian besar wabah yang terjadi di zona bebas ASF terutama disebabkan oleh memindahkan produk sisa makanan dari babi yang terinfeksi ke babi yang rentan.

 

Deteksi dini African Swine Fever Tanpa ragu, deteksi dini penyakit adalah kunci untuk menjaga kesehatan hewan dan merupakan aspek paling kompleks dari surveilans penyakit yang efektif. Kemajuan ilmiah utama yang dicapai dalam beberapa dekade terakhir telah menyebabkan metode diagnostik laboratorium yang tidak hanya sangat sensitif dan spesifik, tetapi juga cepat untuk dilakukan.

 

Memang, sebagian besar laboratorium rujukan nasional dan internasional memiliki teknik untuk menegakkan diagnosis laboratorium yang akurat hanya dalam beberapa jam. Namun, tantangan utama saat ini adalah waktu yang lama untuk mendeteksi penyakit di lapangan, atau setidaknya untuk menduga kemunculannya.

 

Ada kasus di mana penyakit yang sangat terkenal, seperti penyakit mulut dan kuku, demam babi klasik atau lidah biru, telah beredar di sejumlah negara selama beberapa minggu, atau bahkan berbulan-bulan, tanpa ada kecurigaan atau sampel dikirim ke rumah sakit. laboratorium untuk diagnosis banding. Dalam beberapa kasus, ini karena presentasi penyakit yang tidak khas di negara-negara yang belum pernah terinfeksi dan tidak pernah mempertimbangkan kemungkinan terinfeksi. Dalam kasus lain, itu karena penyakit itu terjadi pada spesies hewan yang menunjukkan sedikit gejala klinis, serta karena desain program surveilans yang salah. Memang, berbagai faktor dapat menunda deteksi dini ASF. 

 

Faktor-faktor yang dapat menunda deteksi dini dikelompokkan sebagai berikut:

- Kurangnya kesadaran atau meremehkan risiko pengenalan (probabilitas penyebaran agen).

- Tidak mengenal penyakit, diagnosis banding, dan presentasi klinis dan anatomipatologis.

- Prosedur epidemiologi dan diagnostik yang tidak memadai.

- Kurangnya persiapan peralatan lapangan.

- Pengujian sampel yang tidak sesuai.

- Kesalahan laboratorium.

 

Oleh karena itu sangat penting untuk diingat bahwa diagnosis yang cepat dan efektif bergantung pada pembatasan penyebaran, serta penerapan tindakan yang tepat secepat mungkin, karena faktor-faktor ini sangat penting untuk perkembangan penyakit dan penyelesaian masalah. Penting juga untuk diingat bahwa, untuk membuat diagnosis yang cepat: pertama, penyakit harus dicurigai di lapangan; kedua, sampel yang sesuai harus dikirim ke laboratorium; dan, ketiga, tindakan pengendalian yang benar harus ditetapkan.

 

Oleh karena itu, deteksi dini penyakit akan bergantung pada keseimbangan yang tepat antara surveilans lapangan, sumber daya laboratorium, dan tindakan pengendalian. Untuk memastikan pengawasan lapangan yang baik, prioritas utama adalah membuat dokter hewan dan produsen ternak sadar akan risiko masuknya penyakit tertentu dan pentingnya melaporkan setiap kecurigaan. Oleh karena itu, langkah pertama dan paling penting adalah memberikan informasi dan pelatihan kepada dokter hewan swasta dan resmi serta produsen ternak di zona tersebut tentang risiko yang ada dan karakteristik utama penyakit tersebut. Informasi ini terutama harus memperhatikan rute potensial masuknya penyakit, tanda-tanda klinis dan potensi lesi, dan sampel yang harus dikirim ke laboratorium untuk menegakkan diagnosis yang benar.

 

Sampel yang dipilih untuk dikirim ke laboratorium di mana African Swine Fever dicurigai:

- darah dengan antikoagulan (EDTA);

- serum;

- limpa;

- paru-paru;

- ginjal;

- kelenjar getah bening.

 

Karena berbagai tanda dan lesi klinis yang dapat disebabkan oleh infeksi virus African Swine Fever, dan kesamaannya dengan penyakit perdarahan babi lainnya, diagnosis laboratorium penting untuk ASF.

 

Di zona berrisiko, setiap kematian babi dengan tanda klinis demam berdarah harus diselidiki, mengingat diagnosis banding harus disiapkan dengan penyakit berikut:

- demam babi klasik;

- salmonellosis;

- erisipelas;

- pasteurellosis akut;

- infeksi streptokokus;

- penyakit Aujeszky;

- leptospirosis;

- infeksi circovirus: porcine dermatitis and nephropathy syndrome (PDNS) dan postweaning multisystemic wasting syndrome (PMWS);

- keracunan kumarin.

 

Persyaratan kunci kedua adalah memiliki metode diagnostik laboratorium yang sesuai. Saat ini, sejumlah besar metode tersedia untuk melakukan berbagai jenis diagnosis: virologis (deteksi virus atau protein virus), molekuler (deteksi DNA virus) dan serologis (deteksi antibodi). Manual Tes Diagnostik dan Vaksin untuk Hewan Terestrial merinci prosedur yang harus diikuti [5].

 

DETEKSI VIRUS

Tes Haemadsorbsi (HAD)

HAD adalah teknik yang saat ini hanya digunakan di beberapa laboratorium referensi. HAD membutuhkan waktu antara 3 dan 10 hari untuk menyelesaikannya.

Virus ASF diisolasi dari kultur makrofag babi primer. ASFV mampu menginfeksi dan mereplikasi dirinya secara alami dalam kultur leukosit darah tepi dari babi di mana, selain menghasilkan efek sitopatik pada makrofag yang terinfeksi, juga menyebabkan efek karakteristik haemadsorption (HAD) sebelum sel lisis.  Di bawah mikroskop, tampak seperti roset eritrosit di sekitar leukosit. Teknik haemadsorption masih merupakan metode yang paling sensitif dan spesifik untuk mengidentifikasi ASFV, karena tidak ada virus babi lain yang menghasilkan efek ini. Terlepas dari kenyataan bahwa haemadsorpsi sulit digunakan dan tidak secepat metode diagnostik lainnya (dengan hasil yang memakan waktu 5-10 hari), ini adalah teknik pilihan dibandingkan dengan metode diagnostik lain yang lebih cepat, meskipun penting untuk diingat bahwa beberapa Strain ASFV adalah non-haemadsorbing. Dalam kasus seperti itu, analisis tambahan dari sedimen sel harus dilakukan, menggunakan teknik PCR atau tes antibodi fluoresen untuk mengkonfirmasi keberadaan virus.

 

Fluorescent antibody technique (FAT)

FAT adalah teknik yang direkomendasikan hanya ketika reaksi berantai polimerase tidak tersedia atau ketika tidak ada cukup pengalaman dengan menggunakan PCR. Jangan lupa bahwa hasil negatif harus dikonfirmasi dan direkomendasikan untuk melakukan tes deteksi antibodi secara paralel. FAT membutuhkan waktu 75 menit untuk menyelesaikannya.

Teknik antibodi fluoresen didasarkan pada deteksi antigen virus dengan pewarnaan bagian cryostat atau apusan impresi jaringan dengan imunoglobulin anti-ASFV terkonjugasi fluorescein isothiocyanate (FITC). Ini adalah metode yang sangat sederhana, cepat dan sensitif yang juga dapat digunakan pada kultur sel yang terinfeksi maserat organ atau jaringan dari babi yang dicurigai. Di bawah mikroskop, sel yang terinfeksi menampilkan inklusi sitoplasma yang memancarkan fluoresensi intens. Ketika infeksi sudah lanjut, fluoresensi spesifik dapat tampak granular. Dimana infeksi lebih dari 10 hari dan antibodi telah terbentuk, ini dapat memblokir konjugat dan menghasilkan hasil negatif palsu. Untuk alasan ini, jika FAT adalah teknik yang dipilih, itu harus digunakan secara paralel dengan tes deteksi antibodi (tes antibodi fluoresen tidak langsung, uji imunosorben terkait-enzim atau uji imunoblotting).

 

Polymerase chain reaction (PCR)

PCR saat ini merupakan teknik yang paling umum digunakan untuk diagnosis etiologi tetapi memerlukan pelatihan menyeluruh. PCR membutuhkan waktu 5 hingga 6 jam untuk diselesaikan.

PCR adalah teknik yang sangat sensitif dan spesifik yang mengkonfirmasi keberadaan virus dengan memperkuat DNA virus yang ada dalam sampel. Teknik PCR menggunakan primer dari wilayah genom yang sangat terkonservasi untuk mendeteksi berbagai isolat ASFV yang diketahui, termasuk strain haemadsorbing dan nonhaemadsorbing. Saat ini digunakan oleh laboratorium referensi untuk diagnosis virologi dan konfirmasi ASF. Ini dapat digunakan baik dalam sampel jaringan maupun sampel serum dari hewan dengan tanda-tanda klinis, karena menghasilkan viremia yang berkepanjangan. Oleh karena itu, teknik PCR dapat digunakan untuk mendeteksi virus dalam darah mulai dari hari kedua infeksi hingga beberapa minggu.

 

Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA)

ELISA tidak digunakan secara rutin. Dibutuhkan 3 jam untuk menyelesaikannya.

Teknik seperti sandwich ELISA atau immunodot blot juga telah diadaptasi untuk ASF, tetapi kurang umum digunakan karena, meskipun sangat sensitif pada fase awal infeksi, sensitivitas ini berkurang secara drastis pada 9-10 hari pasca infeksi, seperti mereka mungkin diblokir oleh antibodi, seperti yang dijelaskan sebelumnya dalam kaitannya dengan FAT.

 

DETEKSI ANTIBODI

Immunoflorescence Assay (IFA)

IFA sedikit digunakan saat ini. Tidak ada reagen komersial. Dibutuhkan 2 jam untuk menyelesaikannya.

IFA adalah teknik cepat dengan sensitivitas dan spesifisitas yang baik, di mana antibodi spesifik yang ada dalam serum atau eksudat dibuat untuk bereaksi pada tikar sel yang terinfeksi virus ASF. Reaksi ditampilkan dengan menambahkan protein iodinasi A atau antibodi anti-IgG babi berlabel fluorescein kedua. Di mana sampel positif hadir pada tikar sel, fluoresensi muncul pada titik-titik tertentu yang dekat dengan nukleus, yang merupakan pusat replikasi ASFV.

 

ELISA

ELISA saat ini merupakan teknik yang paling umum digunakan, di mana kit diagnostik komersial juga tersedia. Dibutuhkan 2 jam untuk menyelesaikannya.

ELISA adalah metodologi yang digunakan untuk melakukan studi epizootiologi dan kontrol skala besar. Teknik ELISA yang saat ini digunakan menggunakan antigen terlarut yang mengandung sebagian besar protein virus ASF. Metode ini sangat sensitif dan spesifik, serta cepat, mudah dan murah. Baru-baru ini, ELISA baru telah dikembangkan dengan reagen noninfeksius, menggunakan protein rekombinan p32, p54 dan pp62 sebagai antigen virus. ELISA ini sama atau lebih sensitif dan spesifik daripada teknik saat ini untuk menganalisis serum yang kurang terkonservasi.

 

Tes imunoblotting

Tidak ada kit diagnostik komersial yang tersedia dan reagen diproduksi di beberapa Laboratorium Referensi Uni Eropa dan OIE. Immunoblotting adalah teknik yang sangat baik untuk konfirmasi serologis dalam kasus keraguan. Dibutuhkan 3 jam untuk menyelesaikannya

Imunoblotting adalah teknik imunoenzimatik dimana protein virus ASF ditransfer ke filter nitroselulosa yang berfungsi sebagai: strip antigen di mana serum tersangka dibuat untuk bereaksi, menggunakan protein A-peroksidase untuk mendeteksi antibodi spesifik. Teknik imunoblotting digunakan untuk menentukan reaktivitas antibodi yang ada dalam serum terhadap protein berbeda yang diinduksi secara spesifik oleh virus African Swine Fever. Karakteristik ini, bersama dengan sensitivitas dan objektivitasnya yang tinggi, menjadikan imunoblotting sebagai teknik diagnosis serologis yang ideal untuk mengkonfirmasi ASF.

 

Bagaimanapun, tes paralel harus selalu dilakukan untuk mendeteksi virus dan antibodi. Virus ASF sangat antigenik dan menghasilkan sejumlah besar antibodi non-penetral yang dapat dideteksi antara 7 dan 10 hari pasca infeksi dan dapat bertahan selama berbulan-bulan. Selain itu, karena tidak ada vaksin, keberadaan antibodi selalu merupakan tanda infeksi. Terakhir, penting untuk diingat bahwa ketika teknik seperti tes antibodi fluoresen atau ELISA langsung digunakan untuk mendeteksi antigen virus, keberadaan antibodi hewan dapat memblokir penyatuan konjugat dan menghasilkan hasil negatif palsu. Lebih lanjut, menggunakan kombinasi metode untuk mendeteksi antigen dan antibodi memberikan petunjuk tentang lamanya infeksi karena, ketika antigen tetapi tidak ada antibodi yang terdeteksi, hal itu dapat mengindikasikan infeksi awal yang berumur kurang dari 10-12 hari. Identifikasi antibodi juga dapat mengidentifikasi hewan pembawa, yang umum terjadi pada infeksi ASF yang sudah berlangsung lama.

 

RENCANA KONTINGENSI

Rencana kontinjensi sangat penting dan harus disiapkan sebelum wabah apa pun. Oleh karena itu, semua negara harus memiliki rencana darurat untuk African Swine Fever, khususnya negara-negara yang saat ini memiliki risiko terbesar.

 

Rencana kontinjensi untuk pengendalian ASF mencakup pemusnahan dan pembuangan semua hewan yang terinfeksi, tersangka, dan kontak. Untuk alasan ini, dana darurat yang didukung secara hukum untuk memberi kompensasi kepada produsen atas pembantaian babi mereka merupakan tindakan pengendalian yang penting untuk mendorong pemberitahuan dan menjamin keberhasilan program pengendalian.

 

Rencana kontinjensi harus memasukkan manual tertulis yang jelas yang mencakup semua tindakan yang harus diambil dari saat kecurigaan sampai akhir wabah.

Rencana kontinjensi harus disesuaikan dengan kondisi epidemiologis, sanitasi, produksi dan infrastruktur masing-masing negara dan tentu saja harus sesuai dengan standar dan rekomendasi OIE saat ini.

 

Rencana kontinjensi harus mencakup setidaknya tiga bagian umum yang memberikan informasi sebanyak mungkin tentang aspek-aspek berikut:

i. Struktur administratif di zona atau negara: Layanan Kedokteran Hewan, laboratorium diagnostik, undang-undang saat ini.

ii. Struktur produksi ternak: sensus, jumlah perusahaan dan lokasinya, pergerakan, populasi liar, dll.

iii. Karakteristik penyakit: lembar fakta teknis, faktor risiko, hewan dan/atau vektor yang rentan, perjalanan dan lesi klinis, rute masuk dan penyebaran, masa inkubasi, sampel yang akan dikirim ke laboratorium, metode diagnostik, desinfektan yang akan digunakan, dll.

 

Informasi yang lebih spesifik juga harus diberikan tentang tindakan yang akan diambil di zona dengan dugaan atau konfirmasi wabah, yang harus mencakup setidaknya data berikut:

- sistem notifikasi, pemeriksaan penetapan tersangka (pengamatan klinis dan epidemiologis), pengiriman sampel ke laboratorium; - zonasi area yang terkena dampak;

- larangan pergerakan hewan di zona tersebut, tindakan di tempat yang berdekatan, kontrol pergerakan, pengawasan epidemiologis;

- konfirmasi laboratorium;

- metode penyembelihan hewan;

- prosedur pemusnahan bangkai;

- depopulasi;

- pembersihan dan desinfeksi bangunan dan kendaraan pengangkut;

- kontrol serologis di zona dan zona yang berdekatan untuk memastikan kemungkinan penyebaran wabah;

- studi babi hutan dan/atau vektor; - penggunaan hewan penjaga untuk memastikan bahwa virus telah dieliminasi dari tempat yang terkena dampak yang menjadi sasaran pembersihan;

- repopulasi.

 

Disarankan juga untuk menyusun manual praktis yang merinci tindakan yang dijelaskan di atas, yang akan diringkas di bawah judul berikut:

 - Tindakan yang harus diambil setelah adanya kecurigaan yang dilaporkan.

- Inspeksi tempat tersangka, tindakan biosekuriti konkret yang akan diambil di tempat tersangka dan tempat berdekatan.

- Pemeriksaan klinis dan anatomis.

Apa yang perlu dilakukan dan diperhatikan:

- Pengambilan sampel dan pengiriman ke laboratorium, disertai informasi sumber sampel. Jenis sampel yang akan dikumpulkan; laboratorium yang berwenang untuk mendiagnosis ASF.

- Model survei epidemiologi (pertanyaan konkret tentang masuknya hewan, air mani, pengunjung), serta catatan dan tanggal pergerakan masuk dan keluar dari tempat tersebut.

- Rincian spesifik dari metode penyembelihan yang harus digunakan.

- Prosedur pembuangan bangkai.

- Metode pembersihan dan desinfeksi.

- Zonasi: definisi zona fokus, zona perifokal, zona penyangga, dan zona pengambilan sampel (kontrol serologis).

- Deteksi vektor dan metode penangkapan kutu.

- Kriteria penggunaan hewan sentinel.

 

DAFTAR PUSTAKA

[1] Arias M., Sánchez-Vizcaíno J.M. (2002).– African swine fever. In: Trends in emerging viral infections of swine. A. Morilla, K.J. Yoon & J.J. Zimmerman (eds).119–124. Ames, IA: Iowa State Press. ISBN: 978-0- 8138-0383-8

[2] EFSA. European Food Safety Authority. 2010. – Scientific opinion on African Swine Fever. EFSA Journal 2010; 8(3):1556 [149 pp.]. doi:10.2903/j.efsa.2010.1556. www.efsa.europa.eu

[3] Sánchez-Vizcaíno J.M. (2006).– African swine fever. In: Diseases of swine. 9th edition. pp 291-298. Ed. B. Straw, S. D’Allaire, W. Mengeling, D. Taylor. Iowa State University. USA. ISBN 10-0-8138-1703-X

[4] McVicar J.W. (1984).– Quantitative aspects of transmission of African swine fever virus. Am J Vet Res 45:1535-1541.

[5] OIE (World Organisation for Animal Health) (2008).– Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals, 6th edition. OIE, Paris.

 

SUMBER:

José Manuel Sánchez-Vizcaíno. 2010. Early detection and contingency plans for african swine fever. https://www.oie.int/doc/ged/D11831.PDF. Conf. OIE 2010, 139-147

 

 

 

 

LSD Menurut WOAH

ETIOLOGI, REFERENSI PENCEGAHAN DAN PENGENDALIAN EPIDEMIOLOGI

ETIOLOGI

Klasifikasi agen penyebab Lumpy skin disease (LSD) disebabkan oleh lumpy skin disease virus (LSDV), virus dari famili Poxviridae, genus Capripoxvirus. Virus Sheeppox dan Goatpox adalah dua spesies virus lain dalam genus ini.

Ketahanan terhadap perlakuan fisik dan kimia

Suhu

Rentan terhadap 55 ° C/2 jam, 65 ° C/30 menit. Dapat diambil dari nodul kulit yang disimpan pada suhu –80 °C selama 10 tahun dan cairan kultur jaringan yang terinfeksi disimpan pada suhu 4 °C selama 6 bulan. 

pH

Rentan terhadap pH basa atau asam.  Tidak ada penurunan titer yang signifikan saat ditahan pada pH 6,6–8,6 selama 5 hari pada 37°C

Bahan Kimia/Disinfektan

Rentan terhadap eter (20%), kloroform, formalin (1%), dan beberapa deterjen, mis. natrium dodesil sulfat. Rentan terhadap fenol (2%/15 menit), natrium hipoklorit (2–3%), senyawa yodium (pengenceran 1:33), Virkon® (2%), senyawa amonium kuartener (0,5%).

 

Kelangsungan hidup

LSDV sangat stabil, bertahan untuk waktu yang lama pada suhu kamar, terutama pada keropeng kering. LSDV sangat tahan terhadap inaktivasi, bertahan dalam nodul kulit nekrotik hingga 33 hari atau lebih, kerak kering hingga 35 hari, dan setidaknya 18 hari dalam kulit kering udara.

Virus dapat tetap hidup untuk waktu yang lama di lingkungan. Virus ini rentan terhadap sinar matahari dan deterjen yang mengandung pelarut lipid, tetapi dalam kondisi lingkungan yang gelap, seperti kandang hewan yang terkontaminasi, virus ini dapat bertahan selama berbulan-bulan.

 

EPIDEMIOLOGI

• Tingkat morbiditas bervariasi antara 10 dan 20%.

• Angka kematian 1 sampai 5% dianggap biasa. 

Inang

• LSDV sangat spesifik inang dan menyebabkan penyakit hanya pada sapi (Bos indicus dan B. taurus) dan kerbau (Bubalus bubalis). Ada bukti dari penelitian di Ethiopia tentang kerentanan breed diferensial terhadap LSD, dengan sapi Friesian Holstein atau sapi persilangan menunjukkan morbiditas dan mortalitas yang lebih tinggi karena LSD bila dibandingkan dengan sapi zebu lokal.

• Survei serologis ekstensif terhadap spesies ruminansia liar di Afrika belum mengidentifikasi reservoir LSDV di alam liar. Virus tampaknya sangat spesifik pada inang.

 • LSDV tidak bersifat zoonosis.

 

PENULARAN

• Cara utama penularan diyakini melalui vektor arthropoda. Meskipun tidak ada vektor spesifik yang telah diidentifikasi sampai saat ini, nyamuk (misalnya Culex mirificens dan Aedes natrionus), lalat penggigit (misalnya Stomoxys calcitrans dan Biomyia fasciata) dan kutu jantan (Riphicephalus appendiculatus dan Amblyomma hebraeum) dapat berperan dalam penularan virus. Pentingnya 2 vektor artropoda yang berbeda kemungkinan akan bervariasi di daerah yang berbeda tergantung pada kelimpahan dan perilaku makan dari vektor tersebut.

• Sapi jantan yang terinfeksi dapat mengeluarkan virus dalam air mani, namun penularan LSD melalui air mani yang terinfeksi belum terbukti.

• Tidak diketahui apakah penularan dapat terjadi melalui benda asing, misalnya menelan pakan dan air yang terkontaminasi dengan air liur yang terinfeksi. 

• Hewan dapat terinfeksi secara eksperimental dengan inokulasi dengan bahan dari nodul kulit atau darah.

 • Kontak langsung dianggap memainkan peran kecil, jika ada, dalam penularan virus. 

SUMBER VIRUS

• Nodul kulit, koreng dan krusta mengandung LSDV dalam jumlah yang relatif tinggi. Virus dapat diisolasi dari bahan ini hingga 35 hari dan kemungkinan lebih lama.

• LSDV dapat diisolasi dari darah, air liur, cairan mata dan hidung, dan air mani.

 • LSDV ditemukan dalam darah (viremia) sebentar-sebentar sekitar 7 hingga 21 hari pasca infeksi pada tingkat yang lebih rendah daripada yang ada pada nodul kulit

• Pengeluaran air mani dapat berlangsung lama; LSDV telah diisolasi dari semen sapi jantan yang terinfeksi secara eksperimental 42 hari setelah inokulasi.

• Telah dilaporkan adanya transmisi LSD melalui plasenta.

 • LSD tidak menyebabkan penyakit kronis. Itu tidak menunjukkan latency dan recrudescence penyakit tidak terjadi.

 

KEJADIAN

LSD endemik di sebagian besar negara Afrika. Sejak 2012 telah menyebar dengan cepat melalui Timur Tengah, Eropa Tenggara, Balkan, Kaukasus, Rusia dan Kazakhstan. Untuk informasi terbaru dan terinci tentang terjadinya penyakit ini di seluruh dunia, lihat Antarmuka Database Informasi Kesehatan Hewan Dunia (WAHID) OIE [http://www.oie.int/wahis/public.php?page=home]

 

DIAGNOSA

Dalam kondisi eksperimental, setelah inokulasi virus, masa inkubasi adalah antara 4 dan 14 hari. Untuk tujuan Terrestrial Manual, masa inkubasi adalah 28 hari.

Diagnosa klinis

Tanda-tanda LSD berkisar dari penyakit yang tidak terlihat hingga parah. Saat ini tidak ada bukti variasi dalam virulensi mengenai strain LSDV yang berbeda.

• Demam yang dapat melebihi 41°C.

• Penurunan produksi susu yang nyata pada sapi laktasi.

• Depresi, anoreksia, dan kekurusan.

• Rinitis, konjungtivitis, dan air liur berlebihan.

• Pembesaran kelenjar getah bening superfisial

• Muncul nodul kulit dengan diameter 2–5 cm, terutama di kepala, leher, tungkai, ambing, genitalia, dan perineum dalam waktu 48 jam setelah awitan reaksi demam. Nodul ini berbatas tegas, tegas, bulat dan menonjol, dan melibatkan kulit, jaringan subkutan dan kadang-kadang bahkan otot di bawahnya.

• Nodul besar dapat menjadi nekrotik dan akhirnya fibrotik dan menetap selama beberapa bulan (“sitfasts”); bekas luka mungkin tetap tanpa batas. Nodul kecil dapat sembuh secara spontan tanpa konsekuensi.

• Myiasis pada nodul dapat terjadi

• Vesikel, erosi, dan ulserasi dapat berkembang di membran mukosa mulut dan saluran pencernaan serta di trakea dan paru-paru.

• Anggota badan dan bagian ventral tubuh lainnya, seperti dewlap, brisket, skrotum dan vulva, mungkin mengalami edema, menyebabkan hewan enggan bergerak.

• Banteng bisa menjadi mandul secara permanen atau sementara.

• Sapi yang bunting dapat mengalami abortus dan berada dalam anestrus selama beberapa bulan.

• Pemulihan dari infeksi berat lambat karena kekurusan, pneumonia sekunder, mastitis, dan sumbatan kulit nekrotik, yang dapat terkena serangan lalat dan meninggalkan lubang yang dalam di kulit.

 

DIAGNOSA PERBANDINGAN

LSD parah sangat khas, tetapi bentuk yang lebih ringan dapat dikacaukan dengan yang berikut:

• Bovine herpes mammillitis (bovine herpesvirus 2) (kadang-kadang dikenal sebagai penyakit kulit pseudo-lumpy)

• Stomatitis papula sapi (Parapoxvirus)

• Pseudocowpox (Parapoxvirus)

• Virus Vaccinia dan virus Cowpox (Orthopoxviruses) – infeksi yang tidak umum dan tidak umum

• Dermatofilosis

• Demodikosis

• Gigitan serangga atau kutu

• Besnoitiosis

• Rinderpest

• Infeksi hipoderma bovis

• Fotosensitisasi

• Urtikaria

• TBC kulit

• Onchocercosis

 

DIAGNOSIS LABORATORIUM

Sampel untuk Identifikasi agen

• PCR adalah metode yang paling murah dan tercepat untuk mendeteksi LSDV. Nodul kulit dan koreng, air liur, sekret hidung, dan darah adalah sampel yang cocok untuk deteksi PCR dari LSDV.

• Isolasi virus (VI) diikuti dengan PCR untuk mengkonfirmasi identitas virus membutuhkan waktu lebih lama dan lebih mahal tetapi memiliki keuntungan untuk menunjukkan adanya virus hidup dalam sampel.

 • Mikroskop elektron dapat digunakan untuk mengidentifikasi virion poxvirus klasik tetapi tidak dapat berdiferensiasi ke tingkat genus atau spesies. Tes serologi Tidak mungkin membedakan ketiga virus dalam genus Capripoxvirus (virus Sheeppox, virus Goatpox dan LSD) menggunakan teknik serologis.

• Netralisasi virus: saat ini merupakan tes standar emas untuk mendeteksi antibodi yang dimunculkan terhadap virus capripox.

• Western blot: sangat sensitif dan spesifik tetapi mahal dan sulit dilakukan.

• Uji antibodi terkait enzim capripoxvirus: kit komersial baru untuk mendeteksi antibodi capripoxvirus saat ini sedang dikembangkan dan dirilis ke pasar. Untuk informasi lebih rinci mengenai metodologi diagnostik laboratorium, silakan lihat Bab 2.4.14 Penyakit kulit benjolan dalam edisi terbaru Manual OIE tentang Tes Diagnostik dan Vaksin untuk Hewan Terestrial di bawah judul “B. Teknik Diagnostik”.  Dibawah merupakan gambaran asesmen Risiko LSD..

 

(Asia OIE. https://rr-asia.oie.int/wp-content/uploads/2021/01/5-lsd-prevention-gf_tads-dec-2020-eeva_-tuppurainen.pdf)

PENCEGAHAN DAN PENGENDALIAN

Bukti dari epidemi LSD saat ini di Eropa dan Asia Barat telah mengungkapkan bahwa keberhasilan pengendalian dan pemberantasan LSD bergantung pada deteksi dini kasus indeks, diikuti dengan kampanye vaksinasi yang cepat dan luas. Kemanjuran kebijakan pemusnahan total (membunuh semua ternak yang terkena dampak klinis dan kawanan yang tidak terpengaruh) dan kebijakan pemusnahan sebagian (pembunuhan hanya sapi yang terkena dampak klinis) telah dibandingkan menggunakan pemodelan matematika. Studi ini menemukan bahwa stamping-out total dan stamping-out parsial menghasilkan kemungkinan yang sama untuk memberantas infeksi. Studi ini juga menyoroti pentingnya memulai kampanye vaksinasi sebelum masuknya virus.

 

UPAYA SANITASI

• Negara bebas:

o Pembatasan impor sapi dan kerbau domestik, serta produk-produk pilihan dari hewan tersebut.

o Tindakan pengawasan untuk mendeteksi LSD direkomendasikan pada jarak setidaknya 20 kilometer dari negara atau zona yang terinfeksi

• Negara yang terinfeksi:

o Pengendalian LSD tergantung pada pembatasan pergerakan ternak di daerah yang terinfeksi, pemindahan hewan yang terkena klinis, dan vaksinasi. Pembatasan gerakan dan pemindahan hewan yang terkena saja tanpa vaksinasi biasanya tidak efektif.

o Pembuangan hewan mati yang benar (misalnya insinerasi), dan pembersihan serta disinfeksi tempat dan peralatan direkomendasikan untuk LSD.

o Saat ini tidak ada bukti keefektifan pengendalian vektor dalam mencegah penyakit

o Lihat Kode Kesehatan Hewan Terestrial OIE untuk peraturan yang mencakup pemulihan status bebas LSD suatu negara atau zona.

 

PROFILAKSIS MEDIS

• Strain vaksin hidup LSDV “Homolog” yang dilemahkan misalnya strain LSD “Neethling”

• Virus cacar domba atau virus cacar kambing “heterolog” strain vaksin hidup yang dilemahkan.

• Reaksi lokal di tempat inokulasi, serta demam dan penurunan produksi susu, dapat terjadi setelah vaksinasi dengan virus capripox hidup yang dilemahkan.

• Saat ini, tidak ada vaksin capripox rekombinan generasi baru yang tersedia secara komersial.

Untuk informasi lebih rinci mengenai vaksin, silakan merujuk ke Bab 2.4.14 Lumpy skin disease dalam edisi terbaru Manual OIE tentang Tes Diagnostik dan Vaksin untuk Hewan Terestrial di bawah judul “Persyaratan untuk Vaksin". Untuk informasi lebih rinci mengenai perdagangan internasional yang aman untuk hewan darat dan produk mereka, silakan merujuk ke edisi terbaru Kode Kesehatan Hewan Terestrial OIE.

 

DAFTAR PUSTAKA

1. Alkhamis M.A. & VanderWaal K. (2016). - Spatial and Temporal Epidemiology of Lumpy Skin Disease in the Middle East, 2012–2015. Front. Vet. Sci., 3, 19.

2. Brown C. & Torres A., Eds. (2008). - USAHA Foreign Animal Diseases, Seventh Edition. Committee of Foreign and Emerging Diseases of the US Animal Health Association. Boca Publications Group, Inc., Boca Raton, Florida, USA.

3. Coetzer J.A.W. & Tustin R.C., Eds. (2004). - Infectious Diseases of Livestock, 2nd Edition. Oxford University Press, Oxford, UK.

4. European Food Safety Authority (EFSA) (2015). - Scientific Opinion on Lumpy Skin Disease. EFSA Panel on Animal Health and Welfare. EFSA J., 13, 3986

5. Tuppurainen E.S.M., Venter E.H., Shisler J.L., Gari G., Mekonnen G.A., Juleff N., Lyons N.A., De Clercq K., Upton C., Bowden T.R., Babiuk S. & Babiuk L.A. (2015). - Review: Capripoxvirus Diseases: Current Status and Opportunities for Control. Transboundary Emerg. Dis., 64, 729–745.

6. Fauquet C., Mayo M.A., Maniloff J., Desselberger U. & Ball L.A. (2005). - Virus Taxonomy: VIII Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. Elsevier Academic Press, San Diego, California, USA and London, UK.

7. Gari G., Bonnet P., Roger F. & Waret-Szkuta A. (2011). - Epidemiological aspects and financial impact of lumpy skin disease in Ethiopia. Prev. Vet. Med., 102, 274–283.

8. Gibbs P. (2013). - Merck Veterinary Website.http://www.merckvetmanual.com/integumentarysystem/pox-diseases/lumpy-skin-disease (accessed in July 2017)

9. Spickler A.R. & Roth J.A. Iowa (2008). State University, College of Veterinary Medicine - http://www.cfsph.iastate.edu/DiseaseInfo/factsheets.htm

10. World Organisation for Animal Health (OIE) (2017) - Terrestrial Animal Health Code. OIE, Paris. http://www.oie.int/en/international-standard-setting/aquatic-code/access-online/

11. World Organisation for Animal Health (2017) - Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. OIE, Paris. http://www.oie.int/en/international-standard-setting/terrestrialmanual/access-online/

 

SUMBER: OIE

https://www.oie.int/app/uploads/2021/03/lumpy-skin-disease.pdf