Subscribe

RSS Feed (xml)

Powered By

Skin Design: Kisi Karunia
Base Code: Free Blogger Skins

Powered by Blogger

Friday, 22 November 2024

Panduan untuk Chlamydia felis

 

Panduan untuk Chlamydia felis (sebelumnya Chlamydophila felis) pertama kali diterbitkan dalam J Feline Med Surg 2009; 11: 605-609 oleh Tim Gruffydd-Jones et al. Panduan ini diperbarui oleh Séverine Tasker dan rekan-rekan ABCD.

 

Poin Utama

  • Chlamydia (C.) felis adalah bakteri Gram-negatif yang merupakan parasit intraseluler obligat pada kucing.
  • C. felis tidak bertahan di luar inangnya, sehingga kontak dekat antar kucing diperlukan untuk penularan, biasanya melalui cairan mata.
  • Penyakit klamidia umumnya menyerang kucing muda di bawah 9 bulan dengan gejala mata (awalnya unilateral, lalu bilateral) yang meliputi konjungtivitis, hiperemia membran niktitan, blefarospasme, cairan mata (awalnya serosa kemudian mukopurulen), dan kemosis.
  • Diagnosis dilakukan dengan PCR pada usapan konjungtiva atau orofaring.
  • Pengobatan mencakup antibiotik sistemik; doxycycline biasanya digunakan dan idealnya diberikan selama setidaknya 4 minggu untuk mengeliminasi infeksi, serta 2 minggu setelah gejala klinis mereda.
  • Amoxicillin-klavulanat adalah alternatif antibiotik, terutama untuk anak kucing.
  • Diagnosis dan pengobatan yang cepat berhubungan dengan hasil yang baik, dengan gejala yang biasanya membaik dalam 48 jam setelah memulai pengobatan yang tepat.
  • Vaksinasi untuk C. felis adalah vaksin non-inti dan tidak direkomendasikan untuk semua kucing, namun dapat disarankan bagi kucing yang berada di lingkungan multi-kucing (misalnya penangkaran, tempat penampungan) yang berisiko tinggi terinfeksi atau memiliki riwayat klamidiosis.

 

Sifat Agen Penyebab

 

ABCD mengikuti nomenklatur yang mengklasifikasikan semua 11 spesies Chlamydiaceae yang diakui saat ini dalam satu genus, yaitu Chlamydia (Sachse et al., 2015); spesies ini termasuk Chlamydia felis (sebelumnya Chlamydophila felis), Chlamydia pneumoniae, dan Chlamydia psittaci. C. felis adalah spesies yang biasanya menginfeksi kucing, meskipun Chlamydia abortus kadang-kadang ditemukan pada kucing (Sostaric-Zuckermann et al., 2011; Bressan et al., 2021), dan DNA yang mirip dengan patogen manusia C. pneumoniae kini juga telah terdeteksi pada usapan mata dari kucing dengan konjungtivitis di Eropa (Sibitz et al., 2011). Infeksi C. psittaci juga pernah dilaporkan pada kucing (Lipman et al., 1994; Sanderson et al., 2021).

 

Chlamydia felis, yang khas dari genus Chlamydia, adalah bakteri kokus berbentuk batang Gram-negatif; dinding selnya tidak mengandung peptidoglikan (Sykes, 2023). Sebagai parasit intraseluler obligat, ia tidak mampu bereplikasi secara mandiri (Becker, 1978).

 

Genom C. felis berukuran kecil (Sykes, 2023) dan telah diurutkan (Azuma et al., 2006). Terdapat homolog nukleotida yang luas antara genom berbagai spesies Chlamydia. Membrannya mengandung keluarga protein penting: protein membran luar utama (MOMPs) dan protein membran luar polimorfik (POMPs). Berdasarkan data urutan dari gen protein membran luar C. felis, semua isolat dari kucing tampak serupa secara genetik, namun metode serologi dan sidik jari DNA menunjukkan bahwa lebih dari satu strain C. felis mungkin ada (Sykes, 2023).

 

Organisme ini menempel pada reseptor asam sialat pada sel. Ia memiliki pola replikasi unik, melibatkan badan retikulat non-infeksius (berdiameter 0,5 hingga 1,5 μm) yang bereplikasi dalam sitoplasma sel inang, dan badan elementer infeksius (berdiameter 0,2 hingga 0,6 μm) yang ada di luar sel inang (Sykes, 2023). Badan elementer dilepaskan setelah lisis sel. Beberapa isolat C. felis tampaknya mengandung plasmid, dan ini mungkin terkait dengan kemampuan patogennya (Everson et al., 2003).

Chlamydiae mudah diinaktivasi oleh larutan deterjen dan desinfektan umum.

 

Epidemiologi

 

Karena C. felis (dan badan elementer) memiliki daya tahan hidup yang rendah di luar inangnya, penularan membutuhkan kontak dekat antar kucing; transfer sekresi mata kemungkinan merupakan jalur infeksi yang paling penting. Fomit mungkin menjadi sarana penularan di antara kucing yang ditempatkan dalam kelompok di lingkungan yang sangat terkontaminasi (Sykes, 2023). Pengeluaran Chlamydia spp. melalui rektum juga telah didokumentasikan pada 25% kucing yang terinfeksi (Bressan et al., 2021); studi ini menyarankan bahwa Chlamydia spp. dapat bereplikasi dalam saluran usus kucing, tetapi hanya sebagai akibat sekunder dari infeksi mata tanpa bukti infeksi yang menetap. Chlamydia spp. juga dapat menginfeksi sistem genitourinari (Sykes, 2023). Tidak diketahui apakah penularan secara venereal terjadi, namun organisme ini dikeluarkan dalam cairan vagina dari beberapa kucing yang terinfeksi (Graham dan Taylor, 2012; Sykes, 2023).

 

Infeksi paling umum terjadi di lingkungan dengan banyak kucing, terutama pada penangkaran, sehingga prevalensi mungkin lebih tinggi di antara kucing ras (Wills et al., 1987). Namun, studi lain menunjukkan tingginya prevalensi C. felis pada kucing liar (Wu et al., 2013), termasuk yang mengalami konjungtivitis (Halanova et al., 2011). Sebuah studi di Slovakia (Halanova et al., 2019) menemukan bahwa risiko infeksi C. felis jauh lebih tinggi pada kucing dengan konjungtivitis dan/atau tanda-tanda infeksi saluran pernapasan atas (30% positif menurut PCR) dibandingkan dengan kucing sehat (4%); selain itu, kucing dari tempat penampungan (31% positif menurut PCR) dan kucing liar di jalanan (36%) memiliki risiko infeksi yang jauh lebih tinggi daripada kucing yang hanya berada di dalam rumah (0%). Prevalensi C. felis juga lebih tinggi (19%) pada kucing liar dibandingkan dengan kucing peliharaan (12%) di Swiss, dengan tingkat yang lebih tinggi pada kucing yang menunjukkan tanda-tanda konjungtivitis (88%) (Bressan et al., 2021). Dalam studi dari Cina, 7% kucing yang menunjukkan tanda klinis infeksi saluran pernapasan atas dinyatakan positif C. felis dengan PCR (Gao et al., 2023), sementara prevalensi sebesar 29% ditemukan pada 93 usapan hidung atau faring yang dikumpulkan dari 39 kucing, terutama dari tempat penampungan, dengan penyakit pernapasan (Thieulent et al., 2024).

 

Sebagian besar kasus penyakit klamidia terjadi pada kucing muda, terutama di bawah satu tahun. Kucing yang berusia lebih dari 5 tahun sangat kecil kemungkinannya terinfeksi C. felis (Sykes, 2023). C. felis adalah organisme infeksius yang paling sering dikaitkan dengan konjungtivitis pada kucing dan diisolasi dari hingga 30% kucing yang terkena, terutama yang mengalami konjungtivitis kronis (Wills et al., 1987). Infeksi ini terkait dengan penyakit mata dan konjungtivitis yang lebih parah (Fernandez et al., 2017). Namun, sebuah studi pada 60 kucing di tempat penampungan di AS dengan penyakit mata tidak menemukan bukti infeksi C. felis dengan PCR (Zirofsky et al., 2018). Studi PCR pada kucing dengan tanda-tanda penyakit mata atau saluran pernapasan atas menunjukkan prevalensi sebesar 12 hingga 20%. Prevalensi pada kucing sehat rendah, dengan hasil positif PCR kurang dari 2-3% pada kucing tanpa tanda klinis (Di Francesco et al., 2004; Fernandez et al., 2017; Chan et al., 2023). Di antara kucing peliharaan, mereka yang sehat secara klinis, yang memiliki riwayat konjungtivitis, dan yang mengalami konjungtivitis aktif saat ini, menunjukkan hasil PCR positif masing-masing sebesar 0%, 5%, dan 7% (Low et al., 2007). Dalam studi pada kucing peliharaan, kucing dari tempat penampungan penyelamatan dan dari peternak di Eropa (Helps et al., 2005), infeksi C. felis lebih umum pada kucing dengan penyakit pernapasan (10%) dibandingkan dengan yang tidak memiliki penyakit (3%).

 

Studi menunjukkan hasil yang bervariasi dalam menyelidiki hubungan antara gingivostomatitis dan C. felis (Fernandez et al., 2017; Nakanishi et al., 2019). Survei serologis menunjukkan bahwa 10% atau lebih dari hewan peliharaan rumah tangga yang tidak divaksinasi memiliki antibodi (Lang, 1992; Gunn-Moore et al., 1995).

 

Patogenesis

 

Chlamydia spp. menargetkan jaringan mukosa, dan target utama C. felis adalah konjungtiva. Setelah badan elementer infeksius masuk ke dalam sel inang, mereka berkembang menjadi badan retikulat yang tidak infeksius dan bereplikasi melalui pembelahan biner di dalam vakuola yang terbungkus membran di sitoplasma sel inang, menghindari fusi lisosom. Badan retikulat ini kemudian berubah kembali menjadi badan elementer, yang dilepaskan ke ruang ekstraseluler setelah lisis sel untuk menginfeksi sel inang lain (Sykes, 2023). Siklus replikasi ini memakan waktu sekitar 2 hari. Masa inkubasi sebelum tanda klinis muncul umumnya 2-5 hari, meskipun banyak kucing tetap sehat setelah terinfeksi. C. felis juga dapat menyebar dari mata melalui aliran darah ke organ lain seperti tonsil, paru-paru, hati, limpa, saluran usus, dan ginjal (Sykes, 2023). Pada sebagian besar kucing, pelepasan konjungtiva berhenti sekitar 60 hari setelah infeksi, meskipun beberapa mungkin terus mengalami infeksi yang menetap (O'Dair et al., 1994). C. felis telah diisolasi dari konjungtiva kucing yang tidak diobati hingga 215 hari setelah infeksi eksperimental (Wills, 1986).

 

Chlamydia spp. terutama menyebabkan penyakit mata dan konjungtivitis, dengan keluarnya cairan dari mata, hiperemia pada membran niktitan, kemosis, dan blefarospasme yang dapat terjadi. Chlamydia spp. dapat menginfeksi sel epitel dari sistem okular, pernapasan, gastrointestinal, dan/atau reproduksi, meskipun kaitannya dengan penyakit di beberapa sistem ini belum sepenuhnya dipahami. Terdapat bukti tidak langsung bahwa Chlamydia spp. mungkin menyebabkan penyakit reproduksi (Graham dan Taylor, 2012).

 

Imunitas

 

Imunitas Pasif

Kucing yang terinfeksi mengembangkan antibodi, dan anak kucing tampaknya terlindungi selama satu hingga dua bulan pertama kehidupannya oleh antibodi yang berasal dari induknya (Wills, 1986).

 

Imunitas Aktif

Sifat respons imun protektif terhadap infeksi klamidia belum jelas. Namun, respons imun seluler diyakini memainkan peran penting dalam perlindungan (Longbottom dan Livingstone, 2006). MOMP dan POMP merupakan target penting untuk respons imun protektif pada spesies lain (Longbottom dan Livingstone, 2006) dan telah terbukti ada pada kucing (Harley et al., 2007). Imunitas terhadap infeksi alami tampaknya berlangsung singkat dan tidak melindungi terhadap infeksi ulang (Sykes, 2023). Kemungkinan ada resistansi terhadap infeksi yang terkait dengan usia (Sykes, 2023).

 

Tanda Klinis

 

Penyakit mata unilateral dapat terlihat awalnya, namun ini umumnya berkembang menjadi bilateral. Konjungtivitis yang parah dapat terjadi dengan hiperemia yang ekstrem pada membran niktitan, blefarospasme, dan ketidaknyamanan mata (Gbr. 1). Cairan mata awalnya bersifat encer tetapi kemudian menjadi mukoid atau mukopurulen (Gbr. 2). Kemosis pada konjungtiva adalah ciri khas dari klamidiosis. Tanda-tanda pernapasan umumnya minimal pada infeksi C. felis, tetapi dapat mencakup keluarnya cairan hidung dan stertor (Sykes, 2023). Pada kucing dengan penyakit pernapasan tetapi tanpa tanda-tanda mata, infeksi C. felis tidak mungkin terjadi. Komplikasi mata seperti perlekatan konjungtiva dapat terjadi, tetapi keratitis dan ulkus kornea umumnya tidak terkait dengan infeksi klamidia; jika keratitis terjadi, kemungkinan besar disebabkan oleh herpesvirus kucing. Demam sementara, kehilangan nafsu makan, dan penurunan berat badan dapat terjadi segera setelah infeksi, meskipun sebagian besar kucing tetap sehat dan terus makan.

 


Gambar 1. Konjungtivitis pada kucing dengan infeksi Chlamydia felis. Atas izin dari The Feline Centre, Langford Vets, University of Bristol, Inggris.

 


Gambar 2. Konjungtivitis purulen dan kemosis pada kucing dengan infeksi Chlamydia felis. Atas izin Eric Déan.

 

Ko-infeksi dengan patogen pernapasan lain, seperti feline herpesvirus, feline calicivirus, atau Mycoplasma felis (Chan et al., 2023; Thieulent et al., 2024) mungkin terjadi dan dapat meningkatkan tingkat keparahan tanda-tanda klinis.

 

Diagnosis

 

Metode deteksi langsung

Infeksi klamidia dapat diidentifikasi melalui kultur, namun teknik ini kini telah digantikan oleh metode molekuler yang lebih sensitif (PCR), sehingga umumnya hanya digunakan di bidang penelitian. Kultur membutuhkan media transportasi khusus untuk mengangkut swab konjungtiva yang digunakan dalam pengambilan sampel. Hasil negatif palsu dapat terjadi karena organisme kehilangan viabilitas selama transportasi atau pada infeksi kronis ketika jumlah organisme sangat rendah (Sykes, 2023).

 

Teknik PCR kini menjadi pilihan utama untuk mendiagnosis infeksi klamidia. PCR sangat sensitif dan menghindari masalah terkait viabilitas organisme. Metode PCR kuantitatif juga tersedia (Helps et al., 2001). Swab mata umumnya digunakan sebagai sampel (Gambar 3), meskipun sebuah studi tidak menemukan perbedaan signifikan dalam kemampuan mendeteksi C. felis dengan PCR dari swab mata, orofaring, hidung, dan lidah (Schulz et al., 2015), dan studi lain berhasil menggunakan swab buccal yang dikumpulkan oleh pemilik untuk analisis (Chan et al., 2023). Organisme juga dapat dideteksi pada swab vagina, janin yang mengalami abortus, dan swab rektal, meskipun jarang digunakan untuk diagnosis. Karena organisme ini bersifat intraseluler, perlu untuk mendapatkan swab berkualitas baik yang mencakup sel epitel tempat organisme menginfeksi. Anestesi topikal proxymetacaine terbukti tidak memengaruhi amplifikasi DNA klamidia dengan PCR dari swab mata (Segarra et al., 2011). Tersedia uji PCR generik atau spesifik spesies, atau metode sequencing pada produk PCR yang diperkuat juga dapat digunakan untuk menentukan spesies atau tipe klamidia yang menginfeksi, misalnya pengetikan C. felis menggunakan gen pmp9, yang mengkode protein membran polimorfik (Bressan et al., 2021). Sensitivitas PCR kadang-kadang menghasilkan hasil positif pada kucing tanpa gejala penyakit, sehingga interpretasi sangat penting. Selain itu, kucing dapat tetap positif PCR selama beberapa hari setelah memulai pengobatan antibiotik (Sykes et al., 1999; Dean et al., 2005).

 

Tes amplifikasi berbantuan rekombinase untuk C. felis menggunakan enzim spesifik dalam teknologi amplifikasi isothermal telah dikembangkan untuk memungkinkan diagnosis yang lebih sederhana dan cepat daripada PCR (Liu et al., 2023), namun belum banyak digunakan atau tersedia.

 

Teknik lain untuk mendeteksi organisme ini kurang sensitif dan kurang andal dibandingkan PCR. Smear konjungtiva dapat diwarnai Giemsa untuk memeriksa inklusi intrasitoplasma (cluster basofilik bakteri kokus, ~10 μm dalam diameter) (Streeten dan Streeten, 1985). Namun, inklusi klamidia mudah dikacaukan dengan inklusi basofilik lainnya, seperti granul melanin, dan hanya ada pada tahap awal infeksi, sehingga deteksi menjadi kurang sensitif. Tes antigen klamidia (termasuk yang dikembangkan untuk infeksi klamidia pada manusia) berdasarkan deteksi antigen spesifik kelompok menggunakan ELISA atau teknik serupa juga tersedia tetapi memiliki sensitivitas dan spesifisitas yang lebih rendah dibandingkan kultur atau PCR (Sykes, 2023).

 


Gambar 3. Pengambilan swab konjungtiva; sampel harus mengandung cukup banyak sel untuk diagnosis PCR. Atas izin The Feline Centre, Langford Vets, University of Bristol, UK.

 

Metode Deteksi Tidak Langsung

 

Deteksi antibodi pada kucing yang tidak divaksinasi telah digunakan untuk mendiagnosis infeksi C. felis sebelumnya atau yang sedang berlangsung, meskipun metode ini tidak banyak tersedia, dan hasil yang bervariasi dilaporkan (Sykes, 2023). Teknik imunofluoresensi (IF; Gambar 4) dan ELISA digunakan untuk menentukan titer antibodi. Beberapa reaktivitas silang dengan bakteri lain dapat terjadi, dan titer IF rendah (≤ 32) umumnya dianggap negatif. Infeksi aktif atau baru-baru ini dapat dikaitkan dengan titer tinggi, seringkali ≥ 512. Serologi dapat berguna untuk menentukan apakah infeksi bersifat endemik dalam suatu kelompok. Serologi juga bermanfaat dalam menyelidiki kasus dengan tanda-tanda okular kronis. Titer tinggi menunjukkan bahwa C. felis mungkin menjadi faktor etiologi, sedangkan titer rendah menyingkirkan kemungkinan keterlibatan klamidia.

 

Vaksinasi dengan vaksin klamidia dapat mengganggu interpretasi hasil, meskipun tes antibodi ELISA yang dapat membedakan antara infeksi alami dan vaksinasi telah dikembangkan (Ohya et al., 2010).

 


Gambar 4. Uji imunofluoresensi tidak langsung untuk menentukan titer antibodi terhadap Chlamydia felis; kultur sel yang terinfeksi digunakan sebagai substrat antigen. Atas izin The Feline Centre, Langford Vets, University of Bristol, UK.

 

Pengobatan

 

Infeksi Chlamydia pada kucing dapat diobati secara efektif dengan antibiotik, dengan perbaikan yang sering terlihat dalam beberapa hari. Antibiotik sistemik lebih efektif daripada pengobatan topikal lokal (Sparkes et al., 1999) sehingga direkomendasikan. Tetrasiklin umumnya dianggap sebagai antibiotik pilihan untuk infeksi klamidia (Dean et al., 2005). Doksisiklin memiliki keunggulan berupa dosis harian tunggal dan sering digunakan dengan dosis harian 10 mg/kg secara oral, meskipun 5 mg/kg secara oral dua kali sehari dapat digunakan jika muntah terjadi dengan dosis tunggal harian. Pemberian doksisiklin dalam bentuk hyclate harus selalu diikuti dengan makanan atau air karena kemungkinan menyebabkan esofagitis pada kucing dengan proses menelan yang tidak sempurna.


Penelitian menunjukkan bahwa pengobatan harus dilakukan selama empat minggu untuk memastikan eliminasi organisme (Dean et al., 2005), karena pengobatan tiga minggu tidak mampu membersihkan infeksi pada beberapa kucing. Pada beberapa kucing, kambuh dapat terjadi beberapa waktu setelah penghentian terapi. Melanjutkan pengobatan selama dua minggu setelah gejala klinis hilang juga disarankan.

 

Tetrasiklin memiliki efek samping potensial pada kucing muda, meskipun ini tampaknya lebih jarang dengan doksisiklin dibandingkan dengan oksitetrasiklin. Antibiotik alternatif dapat dipertimbangkan jika hal ini menjadi perhatian. Enrofloksasin dan pradofloksasin menunjukkan kemanjuran terhadap Chlamydia spp. (Gerhardt et al., 2006; Hartmann et al., 2008), meskipun pradofloksasin lebih disukai daripada enrofloksasin mengingat laporan jarang tentang degenerasi retina difus dan kebutaan akut setelah pengobatan dengan enrofloksasin pada kucing. Namun, doksisiklin lebih efektif daripada pradofloksasin dalam studi eksperimental (Hartmann et al., 2008). Azitromisin tidak efektif untuk klamidiosis (Owen et al., 2003).

 

Terapi selama empat minggu dengan amoksisilin yang dipotensiasi asam klavulanat dapat menjadi pilihan teraman sebagai alternatif doksisiklin pada anak kucing muda (Sturgess et al., 2001).

 

Prognosis

Prognosis untuk pemulihan dari penyakit klamidia baik jika pengobatan yang efektif dilakukan.

 

Vaksinasi

 

Vaksin Chlamydia felis termasuk vaksin non-inti. Tersedia vaksin inaktif dan hidup (dilemahkan), yang berbasis organisme utuh, namun hanya sebagai komponen vaksin multivalen (misalnya, dengan feline herpesvirus, feline calicivirus, feline parvovirus, dan dengan atau tanpa feline leukaemia virus dalam vaksin). Vaksin efektif dalam melindungi terhadap manifestasi klinis penyakit, tetapi tidak terhadap infeksi (Wills et al., 1987). Tidak ada data yang dapat diandalkan untuk membandingkan efikasi vaksin inaktif versus vaksin hidup yang dilemahkan.

 

Vaksinasi harus dipertimbangkan untuk kucing yang berisiko terpapar infeksi, terutama di lingkungan dengan banyak kucing yang dipelihara bersama dalam jangka panjang, dan jika ada riwayat infeksi C. felis. Vaksinasi anak kucing biasanya dimulai pada usia 8–9 minggu dengan suntikan kedua 3–4 minggu kemudian pada sekitar usia 12 minggu. Informasi tentang durasi kekebalan terbatas. Ada beberapa bukti bahwa kucing yang sebelumnya terinfeksi dapat menjadi rentan terhadap reinfeksi setelah satu tahun atau lebih. Booster tahunan direkomendasikan untuk kucing yang terus berisiko terpapar infeksi.

 

Pengendalian Penyakit dalam Situasi Tertentu

 

Shelter (Tempat Penampungan Hewan)

 

Infeksi Chlamydia dapat menjadi penyebab penyakit yang signifikan di tempat penampungan hewan, tetapi umumnya masalah ini kurang signifikan dibandingkan dengan virus pernapasan (McManus et al., 2014). Vaksinasi harus dipertimbangkan jika ada riwayat penyakit klamidia sebelumnya di tempat tersebut. Karena transmisi memerlukan kontak dekat dan organisme memiliki viabilitas rendah di luar inangnya, penempatan kucing secara individu dan penerapan langkah-langkah kebersihan rutin dapat mencegah infeksi silang. Jika kucing dipelihara bersama dalam jangka waktu yang lebih lama, mereka harus divaksinasi secara teratur.

 

Kandang Pembiakan Kucing

 

Pada kandang pembiakan yang memiliki infeksi C. felis endemik, langkah pertama yang umum dilakukan adalah mengobati semua kucing dalam rumah tangga tersebut dengan doksisiklin selama setidaknya 4 minggu untuk mengeliminasi infeksi. Pada beberapa kucing di kandang pembiakan, diperlukan pengobatan minimal 6 hingga 8 minggu untuk menghilangkan infeksi alami. Setelah gejala klinis terkendali, kucing harus divaksinasi untuk memberikan perlindungan terhadap penyakit jika reinfeksi kandang pembiakan terjadi.

 

Kucing dengan Sistem Imun yang Lemah

 

Kucing dengan sistem imun yang lemah hanya boleh divaksinasi jika benar-benar diperlukan, dan dalam kasus tersebut vaksin inaktif kemungkinan besar harus digunakan, meskipun data pendukung mengenai hal ini masih kurang.

 

Risiko Zoonosis

 

Tidak ada bukti epidemiologis yang menunjukkan risiko zoonosis yang signifikan, meskipun konjungtivitis folikular kronis yang disebabkan oleh C. felis telah dilaporkan, misalnya pada pasien yang terinfeksi HIV (Hartley et al., 2001), pada seorang wanita imunokompeten (Wons et al., 2017) yang sumber infeksinya adalah anak kucing peliharaannya, dan pada tiga individu imunokompeten lainnya (Hughes et al., 2024). Selain itu, C. pneumoniae, yang merupakan patogen manusia yang dikenal, telah diidentifikasi pada sejumlah kecil kucing (Sibitz et al., 2011), meskipun transmisi dari kucing ke manusia belum terdokumentasi. C. psittaci umumnya menginfeksi burung dan merupakan agen zoonosis penting yang menyebabkan pneumonia atipikal pada manusia. Infeksi pada kucing jarang dilaporkan (Lipman et al., 1994). Sebuah laporan kasus melaporkan infeksi fatal C. psittaci pada anak kucing berusia 7 minggu (Sanderson et al., 2021); anak kucing ini menunjukkan sepsis Gram-negatif dengan hepatitis nekrosupuratif akut, pneumonia nonsupuratif, dan leptomeningitis ringan, serta dicurigai infeksi pada induknya melalui aktivitas berburu burung selama kehamilan.

 

REFERENSI

 

1.       Azuma Y, Hirakawa H, Yamashita A, Cai Y, Rahman MA, Suzuki H, Mitaku S, Toh H, Goto S, Murakami T, Sugi K, Hayashi H, Fukushi H, Hattori M, Kuhara S, Shirai M (2006): Genome sequence of the cat pathogen, Chlamydophila felis. DNA Res 13(1), 15-23.

2.       Becker Y (1978): The chlamydia: molecular biology of procaryotic obligate parasites of eucaryocytes. Microbiol Rev 42(2), 274-306.

3.       Bressan M, Rampazzo A, Kuratli J, Marti H, Pesch T, Borel N (2021): Occurrence of Chlamydiaceae and Chlamydia felis pmp9 Typing in Conjunctival and Rectal Samples of Swiss Stray and Pet Cats. Pathogens 10 (8), 951.

4.       Chan I, Dowsey A, Lait P, Tasker S, Blackwell E, Helps CR, Barker EN (2023): Prevalence and risk factors for common respiratory pathogens within a cohort of pet cats in the UK. J Small Anim Pract 64 (9), 552-560.

5.       Dean R, Harley R, Helps C, Caney S, Gruffydd-Jones T (2005): Use of quantitative real-time PCR to monitor the response of Chlamydophila felis infection to doxycycline treatment. J Clin Microbiol 43(4), 1858-1864.

6.       Di Francesco A, Piva S, Baldelli R (2004): Prevalence of Chlamydophila felis by PCR among healthy pet cats in Italy. New Microbiol 27(2), 199-201.

7.       Everson JS, Garner SA, Lambden PR, Fane BA, Clarke IN (2003): Host range of chlamydiaphages phiCPAR39 and Chp3. J Bacteriol 185(21), 6490-6492.

8.       Fernandez M, Manzanilla EG, Lloret A, Leon M, Thibault JC (2017): Prevalence of feline herpesvirus-1, feline calicivirus, Chlamydophila felis and Mycoplasma felis DNA and associated risk factors in cats in Spain with upper respiratory tract disease, conjunctivitis and/or gingivostomatitis. J Feline Med Surg 19(4), 461-469.

9.       Gao J, Li Y, Xie Q, Al-Zaban MI, Al-Saeed FA, Shati AA, Al-Doaiss AA, Ahmed AE, Nawaz S, Ebrahem H, Irshad I, Kulyar MF, Li J (2023): Epidemiological Investigation of Feline Upper Respiratory Tract Infection Encourages a Geographically Specific FCV Vaccine. Vet Sci 10 (1).

10.  Gerhardt N, Schulz BS, Werckenthin C, Hartmann K (2006): Pharmacokinetics of enrofloxacin and its efficacy in comparison with doxycycline in the treatment of Chlamydophila felis infection in cats with conjunctivitis. Vet Rec 159(18), 591-594.

11.  Graham EM, Taylor DJ (2012): Bacterial reproductive pathogens of cats and dogs. Vet Clin North Am Small Anim Pract 42(3), 561-582

12.  Gunn-Moore DA, Werrett G, Harbour DA, Feilden H, Gruffydd-Jones TJ (1995): Prevalence of Chlamydia psittaci antibodies in healthy pet cats in Britain. Vet Rec 136(14), 366-367.

13.  Halanova M, Sulinova Z, Cislakova L, Trbolova A, Palenik L, Weissova T, Halan M, Kalinova Z, Holickova M (2011): Chlamydophila felis in cats–are the stray cats dangerous source of infection? Zoonoses Public Health 58(7), 519-522.

14.  Halanova M, Petrova L, Halan M, Trbolova A, Babinska I, Weissova T (2019): Impact of way of life and environment on the prevalence of Chlamydia felis in cats as potentional sources of infection for humans. Ann Agric Environ Med 26(2), 222-226.

15.  Harley R, Herring A, Egan K, Howard P, Gruffydd-Jones T, Azuma Y, Shirai M, Helps C (2007): Molecular characterisation of 12 Chlamydophila felis polymorphic membrane protein genes. Vet Microbiol 124(3-4), 230-238.

16.  Hartley JC, Stevenson S, Robinson AJ, Littlewood JD, Carder C, Cartledge J, Clark C, Ridgway GL (2001): Conjunctivitis due to Chlamydophila felis (Chlamydia psittaci feline pneumonitis agent) acquired from a cat: case report with molecular characterization of isolates from the patient and cat. J Infect 43(1), 7-11.

17.  Hartmann AD, Helps CR, Lappin MR, Werckenthin C, Hartmann K (2008): Efficacy of pradofloxacin in cats with feline upper respiratory tract disease due to Chlamydophila felis or Mycoplasma infections. J Vet Intern Med 22(1), 44-52.

18.  Helps C, Reeves N, Tasker S, Harbour D (2001): Use of real-time quantitative PCR to detect Chlamydophila felis infection. J Clin Microbiol 39 (7), 2675-2676.

19.  Helps CR, Lait P, Damhuis A, Bjornehammar U, Bolta D, Brovida C, Chabanne L, Egberink H, Ferrand G, Fontbonne A, Pennisi MG, Gruffydd-Jones T, Gunn-Moore D, Hartmann K, Lutz H, Malandain E, Mostl K, Stengel C, Harbour DA, Graat EA (2005): Factors associated with upper respiratory tract disease caused by feline herpesvirus, feline calicivirus, Chlamydophila felis and Bordetella bronchiseptica in cats: experience from 218 European catteries. Vet Rec 156 (21), 669-673.

20.  Hughes L, Visser S, Heddema E, de Smet N, Linssen T, Wijdh RJ, Huis In ‘t Veld R (2024): Zoonotic transmission of Chlamydia felis from domestic cats; A case series of chronic follicular conjunctivitis in humans. New Microbes New Infect 59, 101412.

21.  Lang GH (1992): Ontario. Prevalence of antibodies of Coxiella and Chlamydia spp. in cats in Ontario. Can Vet J 33(2), 134.

22.  Lipman NS, Yan LL, Murphy JC (1994): Probable transmission of Chlamydia psittaci from a macaw to a cat. J Am Vet Med Assoc 204(9), 1479-1480.

23.  Liu J, Qian W, Wang J, Bai Y, Gui Y, Xia L, Gong G, Ge F, Shen H, Chang X, Zhao H (2023): A Recombinase-Aided Amplification Assay for the Detection of Chlamydia felis. Pol J Microbiol 72 (3), 339-343.

24.  Longbottom D, Livingstone M (2006): Vaccination against chlamydial infections of man and animals. Veterinary Journal 171(2), 263-275.

25.  Low HC, Powell CC, Veir JK, Hawley JR, Lappin MR (2007): Prevalence of feline herpesvirus 1, Chlamydophila felis, and Mycoplasma spp DNA in conjunctival cells collected from cats with and without conjunctivitis. Am J Vet Res 68 (6), 643-648.

26.  McManus CM, Levy JK, Andersen LA, McGorray SP, Leutenegger CM, Gray LK, Hilligas J, Tucker SJ (2014): Prevalence of upper respiratory pathogens in four management models for unowned cats in the Southeast United States. Veterinary Journal 201(2), 196-201.

27.  Nakanishi H, Furuya M, Soma T, Hayashiuchi Y, Yoshiuchi R, Matsubayashi M, Tani H, Sasai K (2019): Prevalence of microorganisms associated with feline gingivostomatitis. J Feline Med Surg 21(2), 103-108.

28.  O’Dair HA, Hopper CD, Gruffydd-Jones TJ, Harbour DA, Waters L (1994): Clinical aspects of Chlamydia psittaci infection in cats infected with feline immunodeficiency virus. Vet Rec 134(15), 365-368.

29.  Ohya K, Okuda H, Maeda S, Yamaguchi T, Fukushi H (2010): Using CF0218-ELISA to distinguish Chlamydophila felis-infected cats from vaccinated and uninfected domestic cats. Vet Microbiol 146 (3-4), 366-370.

30.  Owen WM, Sturgess CP, Harbour DA, Egan K, Gruffydd-Jones TJ (2003): Efficacy of azithromycin for the treatment of feline chlamydophilosis. J Feline Med Surg 5 (6) 305-311.

31.  Sachse K, Bavoil PM, Kaltenboeck B, Stephens RS, Kuo CC, Rossello-Mora R, Horn M (2015): Emendation of the family Chlamydiaceae: proposal of a single genus, Chlamydia, to include all currently recognized species. Syst Appl Microbiol 38(2), 99-103.

32.  Sanderson H, Vasquez M, Killion H, Vance M, Sondgeroth K, Fox J (2021): Fatal Chlamydia psittaci infection in a domestic kitten. J Vet Diagn Invest 33(1), 101-103.

33.  Schulz C, Hartmann K, Mueller RS, Helps C, Schulz BS (2015): Sampling sites for detection of feline herpesvirus-1, feline calicivirus and Chlamydia felis in cats with feline upper respiratory tract disease. J Feline Med Surg 17(12), 1012-1019.

34.  Segarra S, Papasouliotis K, Helps C (2011): The in vitro effects of proxymetacaine, fluorescein, and fusidic acid on real-time PCR assays used for the diagnosis of Feline herpesvirus 1 and Chlamydophila felis infections. Vet Ophthalmol 14 Suppl 1, 5-8.

35.  Sibitz C, Rudnay EC, Wabnegger L, Spergser J, Apfalter P, Nell B (2011): Detection of Chlamydophila pneumoniae in cats with conjunctivitis. Vet Ophthalmol 14 Suppl 1, 67-74.

36.  Sostaric-Zuckermann IC, Borel N, Kaiser C, Grabarevic Z, Pospischil A (2011): Chlamydia in canine or feline coronary arteriosclerotic lesions. BMC Res Notes 4, 350.

37.  Sparkes AH, Caney SM, Sturgess CP, Gruffydd-Jones TJ (1999): The clinical efficacy of topical and systemic therapy for the treatment of feline ocular chlamydiosis. J Feline Med Surg 1(1), 31-35.

38.  Streeten BW, Streeten EA (1985): “Blue-body” epithelial cell inclusions in conjunctivitis. Ophthalmology 92(4), 575-579.

39.  Sturgess CP, Gruffydd-Jones TJ, Harbour DA, Jones RL (2001): Controlled study of the efficacy of clavulanic acid-potentiated amoxycillin in the treatment of Chlamydia psittaci in cats. Vet Rec 149, 73-76.

40.  Sykes JE, Anderson GA, Studdert VP, Browning GF (1999): Prevalence of feline Chlamydia psittaci and feline herpesvirus 1 in cats with upper respiratory tract disease. J Vet Intern Med 13 (3), 153-162.

41.  Sykes JE (2023): Chlamydial infections. in JE Sykes (ed.), Greene’s Infectious diseases of the dog and the cat (Elsevier: St Louis).

42.  Thieulent CJ, Carossino M, Peak L, Wolfson W, Balasuriya UBR (2024): Development and validation of multiplex one-step qPCR/RT-qPCR assays for simultaneous detection of SARS-CoV-2 and pathogens associated with feline respiratory disease complex. PLoS One 19 (3), e0297796.

43.  Wills JM (1986): Chlamydial infection in the cat. PhD Thesis, University of Bristol, Bristol, UK.

44.  Wills JM, Gruffydd-Jones TJ, Richmond SJ, Gaskell RM, Bourne FJ (1987): Effect of vaccination on feline Chlamydia psittaci infection. Infect Immun 55(11), 2653-2657.

45.  Wons J, Meiller R, Bergua A, Bogdan C, Geissdorfer W (2017): Follicular Conjunctivitis due to Chlamydia felis-Case Report, Review of the Literature and Improved Molecular Diagnostics. Front Med (Lausanne) 4, 105.

46.  Wu SM, Huang SY, Xu MJ, Zhou DH, Song HQ, Zhu XQ (2013): Chlamydia felis exposure in companion dogs and cats in Lanzhou, China: a public health concern. BMC Vet Res 9, 104.

47.  Zirofsky D, Rekers W, Powell C, Hawley J, Veir J, Lappin M (2018): Feline Herpesvirus 1 and Mycoplasma spp. Conventional PCR Assay Results From Conjunctival Samples From Cats in Shelters With Suspected Acute Ocular Infections. Top Companion Anim Med 33(2), 45-48.

 

SUMBER:

Guideline for Chlamydia felis. European Advisory Board on Cat Disease (ABCD). 2009.

https://www.abcdcatsvets.org/guideline-for-chlamydia-felis/

No comments: