Cara Memelihara Burung Pet

Mengelola burung peliharaan dalam pengaturan klinis bisa menjadi tantangan. Kemampuan untuk "menutupi" tanda-tanda klinis penyakit hingga akhir proses penyakit sering kali menyebabkan unggas menjadi jauh lebih sakit daripada yang disadari oleh pemiliknya. Karena itu, unggas juga merupakan pasien yang lebih berisiko untuk dievaluasi. Burung memiliki metabolisme yang jauh lebih tinggi daripada mamalia, dan kekurangan oksigen dapat terjadi selama pengekangan, pengobatan, atau pengambilan sampel diagnostik. Pemilik harus diberi tahu tentang risiko penanganan dan pengambilan sampel serta perlunya pendekatan langkah demi langkah melalui pemeriksaan fisik dan pengujian diagnostik. Menempatkan unggas yang sangat lemah dalam inkubator atau sangkar oksigen hangat sambil mendapatkan riwayat dan sebelum pemeriksaan fisik mungkin diperlukan. Dalam semua pemeriksaan unggas dan prosedur diagnostik, penting untuk mempersiapkan semua item yang diperlukan untuk pemeriksaan, pengumpulan sampel, dan perawatan sebelum menahan burung. Ini termasuk sumber cahaya, spekulum oral, skala gram, stetoskop, spuit dan jarum untuk venipuncture, tabung darah, dan cairan untuk administrasi. Jika burung sangat stres, kesakitan, atau tidak terbiasa dengan penanganan, obat penenang sebelum pengujian diagnostik mungkin diperlukan.

 

SEJARAH

 

Sebaiknya pemilik membawa burung peliharaan di kandangnya sendiri untuk diperiksa, tetapi seringkali tidak praktis. Atau, pemilik dapat diminta untuk membawa foto atau video pengaturan kandang, serta kertas terbaru dari lantai kandang agar kotorannya dapat diperiksa. Riwayat kandang harus mencakup jenis dan ukuran kandang, ukuran dan jarak kandang, jenis substrat dan seberapa sering diganti, frekuensi pembersihan mangkuk makanan dan air, lokasi kandang di dalam rumah, dan suhu dan kelembaban kandang. lingkungan kandang. Pola makan yang ditawarkan, makanan yang benar-benar dimakan, dan perubahan pola makan atau nafsu makan baru-baru ini harus diperhatikan. Sejarah lengkap juga harus mencakup sumber burung dan apakah itu tangan atau induk yang dibesarkan; paparan terhadap burung atau hewan peliharaan lain, termasuk burung milik klien dan burung di luar rumah; lamanya kepemilikan dan sejarah pemilik sebelumnya; berapa lama burung berada di luar sangkarnya dan apakah ia dipantau selama waktu tersebut; paparan di luar ruangan; dan waktu yang dihabiskan untuk berinteraksi dengan orang atau burung lain dalam rumah tangga.

 

MACAW BERSAYAP HIJAU

 

Lamanya burung berada di dalam rumah biasanya berbanding terbalik dengan kemungkinan penyakit tersebut disebabkan oleh penyakit menular primer. Burung yang baru didapat atau yang terpapar burung lain di luar rumah melalui pameran burung atau kunjungan ke toko hewan kemungkinan besar akan terpengaruh oleh penyakit menular. Malnutrisi kronis dan infeksi sekunder lebih sering terjadi pada unggas yang belum pernah terpapar unggas yang berpotensi menular. Malnutrisi merupakan penyebab utama penyakit subklinis pada unggas, yang seringkali menjadi klinis bila terjadi infeksi sekunder.

 

Tanda-tanda klinis penyakit sulit dideteksi pada burung. Namun, pemilik yang cerdik mungkin mengenali perbedaan perilaku kecil pada burung mereka, seperti tidak bersuara di pagi hari atau berkurangnya interaksi dengan anggota keluarga. Perubahan ini harus dipertimbangkan sebagai tanda penyakit yang potensial. Pemilik yang kurang pengalaman atau kurang interaksi dengan burung mereka cenderung tidak memperhatikan tanda-tanda awal ini. Bulu dapat secara efektif menutupi kekurusan atau pembengkakan perut yang parah. Pemilik juga mungkin memperhatikan tanda-tanda penyakit lainnya, seperti perubahan kotoran atau vokalisasi, atau jika burung tampak lebih sering tidur. Dokter hewan yang melihat pasien unggas harus dapat mengidentifikasi spesies umum burung peliharaan (kakatua, beo Amazon, macaw, conures, dll) dan terbiasa dengan perilaku normal spesies tertentu. Misalnya, burung beo Pionus spp sering mengeluarkan suara mengendus dengan cepat saat stres yang dapat disalahartikan sebagai gangguan pernapasan.

 

PEMERIKSAAN FISIK

 

Burung harus diobservasi di kandang atau carrier sebelum dilakukan pengekangan manual. Pengamatan harus dilakukan dari jarak yang tidak mengancam (beberapa kaki jauhnya). Sikap dan pola pernapasan burung harus diperhatikan. Apakah itu bertengger dan berdiri dengan kedua kaki? Apakah itu waspada? Apakah mata terbuka atau tertutup? Apakah bulunya halus atau halus? Apakah ada sayap yang terkulai? Apakah ekornya terayun-ayun (tanda peningkatan upaya pernapasan)? Apakah burung itu bernapas dengan mulut terbuka? Kecepatan pernapasan harus diperoleh saat ini. Laju pernapasan istirahat normal untuk burung peliharaan bervariasi menurut ukuran dan spesies, dengan laju berkisar pada burung yang lebih kecil (<300 g) dari 30−60 denyut / menit dan pada burung yang lebih besar (400–1.000 g) dari 15–30 denyut / menit . Jika burung menunjukkan tanda-tanda gangguan pernapasan, burung tersebut harus ditempatkan dalam inkubator beroksigen yang hangat sebelum ditahan.

 

Parkit Quaker terkendali

 

Burung harus ditahan dengan cara yang meminimalkan stres dan tidak menimbulkan rasa takut yang tidak semestinya. Jika burung sudah terbiasa dipegang, seringkali handuk bisa diletakkan dengan perlahan dan lembut di atas burung. Jika pemilik telah menangani burung di rumah dengan handuk, dokter hewan dapat meminta pemilik untuk handuk burung dan kemudian menyerahkannya untuk pemeriksaan atau pengujian. Meminimalkan waktu pengekangan, berbicara dengan burung dengan suara pelan, dan bergerak perlahan dapat membantu banyak burung. Bayi burung atau kakatua yang dipelihara dengan tangan sering kali dapat diperiksa dengan sedikit atau tanpa kendali. Banyak burung peliharaan akan keluar dari kandang atau ke tangan dan dapat dengan lembut memakai handuk. Beberapa burung yang gugup mungkin mendapat manfaat dari sedasi untuk pemeriksaan dan pengujian diagnostik. Burung yang tidak ditangani secara rutin (breeding atau aviary burung) mungkin harus dengan lembut handuk langsung dari kandang atau carrier.

 

Pengendalian burung psittacine melibatkan melumpuhkan kepala, umumnya dengan ibu jari di satu sisi mandibula dan telunjuk atau jari tengah di sisi lain. Kaki dan reminges distal (bulu sayap utama), jika tidak dipotong, dipegang oleh tangan yang berlawanan pada burung beo berukuran sedang hingga besar. Ini membuat dada dan perut bebas mengembang dengan respirasi. Jika bulu sayap utama telah dipangkas, handuk mungkin berguna untuk mencegah sayap mengepak selama pengekangan. Burung harus diamati dengan cermat selama pengekangan; semua burung bisa menjadi stres, dan burung yang gemuk bisa kepanasan, terutama jika dipegang dengan handuk. Jika pernafasan bertambah atau sulit, atau jika burung menjadi lemah, burung harus dikembalikan ke kandangnya.

 

Segera setelah burung ditahan, tanaman harus dipalpasi untuk menentukan apakah ada makanan atau cairan. Jika tanaman sudah penuh, pemegang harus memantau tanda-tanda regurgitasi selama pengekangan. Prosedur diagnostik mungkin perlu ditunda sampai panen kosong. Berat badan yang akurat sangat penting untuk memantau kesehatan, kondisi tubuh, dan pemulihan dari penyakit serta untuk menentukan terapi cairan, kebutuhan nutrisi, dan dosis obat. Telinga, mata, lubang hidung, dan rongga mulut semuanya harus diperiksa dan tampak bersih, tanpa eksudat, massa, atau pembengkakan. Choana di atap rongga mulut harus memiliki papilla tajam yang utuh. Eksudat di sekitar lubang hidung dapat mengindikasikan infeksi saluran pernapasan atau sinus, dan kotoran pada bulu kepala atau wajah dapat mengindikasikan muntah atau regurgitasi. Kondisi bulu dan kulit harus diperhatikan, termasuk kesimetrisan dan keutuhan paruh dan kukunya. Paruh dan kuku yang terlalu besar dapat menandakan peternakan, nutrisi, atau penyakit hati yang buruk. Integumen kaki harus utuh, tanpa keausan berlebihan, tidak berperasaan, atau ulserasi. Keausan yang berlebihan pada permukaan plantar kaki dapat mengindikasikan tempat bertengger yang tidak memadai atau nutrisi yang buruk. Keausan yang berlebihan atau kapalan secara sepihak dapat mengindikasikan masalah dengan kaki kontralateral.

 

Kondisi tubuh dapat ditentukan dengan melakukan palpasi pada otot dada. Sistem penilaian lunas dari 1–5 sering digunakan, dengan 1 sangat kurus, 5 sebagai obesitas, dan 3 sebagai skor yang sesuai untuk kebanyakan burung peliharaan. Burung yang sangat gemuk dapat menyimpan lemak di leher, paha, dan rongga perut. Sayap dan kaki harus terentang dan lentur sepenuhnya, dan kekuatan cengkeraman harus simetris.

 

Kecepatan pernapasan harus dipantau selama pemeriksaan; pernapasan dapat meningkat dengan hipertermia, stres, atau obesitas. Pernafasan akan normal dalam waktu 3–4 menit setelah burung dilepaskan. Denyut jantung cepat pada burung yang terkendali; Biasanya, burung beo besar akan memiliki detak jantung> 250 denyut / menit saat ditahan. Aritmia dapat terjadi tetapi sulit untuk dikategorikan karena detak jantung yang cepat. Kloaka harus memiliki warna yang cukup untuk menutup rapat, kulit harus lembab, dan bulu di sekitar ventilasi harus bersih.

 

PROSEDUR PERAWATAN RUTIN

 

Pemotongan sayap sering diminta oleh pemilik. Komunikasi dengan pemilik tentang trim sayap sangat penting dan harus mencakup derajat dan tujuan trim sayap. Pemilik dapat berasumsi bahwa trim sayap diperlukan secara berkala. Namun, di penangkaran, frekuensi bulu berganti bulu sangat bervariasi berdasarkan nutrisi, paparan sinar matahari alami, fotoperiode, dan kelembapan. Fakta bahwa trim sayap adalah penghalang untuk terbang, tetapi bukan jaminan, harus ditekankan. Seekor burung yang hanya bisa meluncur ke tanah di dalam ruangan mungkin bisa terbang di luar ruangan pada hari yang berangin. Tipe dasar trim sayap adalah: 1) Mencabut 4–7 bulu terbang primer distal dari kedua sayap, di bawah permukaan bulu. Jumlah bulu yang harus dicabut berbanding terbalik dengan berat burung. 2) Meninggalkan 1-4 bulu primer bagian distal dan membuang sisa bulu primer dari kedua sayap. Klip ini tidak lagi disukai, tetapi beberapa pemilik telah menggunakannya selama bertahun-tahun. Jika itu berhasil dengan baik untuk burung mereka, mungkin bijaksana untuk melanjutkan penggunaannya. 3) Menghapus sejumlah bulu primer hanya dari satu sayap. Klip ini terlalu berat dan tidak disarankan. Beberapa burung yang lebih kecil mampu mengimbangi dengan menahan ekornya ke samping dan masih bisa terbang bahkan dengan semua reminges primer dipangkas.

 

Pemotongan sayap yang terlalu agresif, terutama jika dilakukan bersamaan dengan pemotongan kuku, dapat menyebabkan kerusakan fisik dan psikologis pada burung. Ketidakstabilan dan daya angkat yang tiba-tiba dapat menyebabkan burung jatuh, kemungkinan melukai karina lunas atau paruh. Kurangnya stabilitas ini dapat menyebabkan masalah perilaku yang serius, terutama jika terjadi pada burung muda yang sedang belajar terbang.

 

Pemotongan kuku sering diminta, seringkali untuk kenyamanan pemiliknya dan bukan karena pertumbuhan kuku yang berlebihan. Namun, pemotongan paku menurunkan stabilitas burung dan meningkatkan kemungkinan jatuh dari tempat bertenggernya. Umumnya, kompromi dapat dicapai dengan menumpulkan ujung seperti jarum sambil tetap menyisakan cukup paku untuk memungkinkan cengkeraman yang stabil.

 

Berbagai jenis peralatan dapat digunakan untuk memotong kuku, tergantung pada ukuran burung. Pemotong kuku manusia bekerja dengan baik untuk menghilangkan ujung kuku dari burung yang sangat kecil. Pemangkas cakar kucing, pemangkas kuku White, dan bor hobi dengan bit pengamplasan semuanya berguna. Alat pengamplasan juga sangat baik untuk menghilangkan keratin berlebih yang dapat menumpuk di permukaan lateral paruh. Pemotongan paruh terkadang diperlukan karena paruh atas atau bawah yang tumbuh terlalu banyak. Burung dengan kelainan paruh sering kali mengalami kekurangan nutrisi, penyakit, atau trauma sebelumnya. Burung yang sehat menyediakan permukaan abrasif lingkungan yang memadai dan jarang memerlukan pemotongan paruh.

 

Tempat bertengger beton (semen) tersedia dalam berbagai ukuran dan tekstur. Ini dapat bekerja dengan baik untuk burung psittacine berukuran sedang (~ 250–700 g) ketika ukuran yang sesuai dipilih dan ditempatkan dengan benar di dalam kandang. Tempat bertengger ini dapat menghilangkan kebutuhan untuk memotong kuku dan menghilangkan kelebihan keratin dari paruh. Tempat bertengger harus ditempatkan di tempat burung dipaksa berdiri untuk waktu yang singkat (misalnya, di depan mangkuk makanan atau mangkuk makanan). Untuk menghindari iritasi pada permukaan plantar kaki, tempat bertengger beton tidak boleh menjadi tempat bertengger utama burung untuk bersolek atau tidur.

 

Pada dekade sebelumnya, ketika burung beo diimpor secara luas, pita baja canai terbuka digunakan untuk mengidentifikasi lokasi di mana mereka dikarantina. Sekarang sebagian besar burung diikat dengan kaki (menggunakan pita tertutup) sebagai anak burung untuk identifikasi individu. Pita dapat menimbulkan bahaya tertentu bagi burung, tetapi pelepasan juga menimbulkan beberapa risiko jika peralatan yang tepat tidak tersedia. Pita karantina baja yang terbuka (ada celah) sangat kuat dan harus dilepas dengan pemotong baut ukuran penuh dengan tepi tajam. Pita aluminium tertutup yang dipasang pada burung muda yang dipelihara harus distabilkan untuk mencegah terpuntir saat dipotong. Pita ini membutuhkan dua potongan untuk dilepas; instrumen tajam yang dirancang dengan tepat untuk melepaskan mengurangi bahaya trauma kaki. Pita plastik lingkaran penuh dapat dilepas dengan cara yang sama. Microchipping adalah mengganti atau menambah garis melintang sebagai alat identifikasi. Standar penempatan chip ini pada burung psittacine ada di otot dada kiri. Reaksi yang merugikan atau kegagalan pada burung jarang terjadi; penempatan intramuskuler mengurangi risiko migrasi mikrochip. Meskipun microchipping relatif aman pada burung beo besar dengan otot dada yang baik (> 150 g), lebih berisiko pada burung yang lebih kecil. Microchipping pada unggas kecil (<150 g) menyebabkan pendarahan dan kematian.

 

PATOLOGI KLINIS

 

Pengujian hematologi dan analisis biokimia plasma sangat penting pada burung, karena pemeriksaan fisik cenderung kurang mengungkap dibandingkan pada hewan lain. Jumlah darah yang dapat diambil tergantung pada berat dan kesehatan burung tersebut. Pengumpulan darah harus dibatasi hingga 1% dari berat badan. Darah biasanya diambil dari vena jugularis kanan, yang lebih besar dari vena kiri. Vena basilika (sayap) juga dapat digunakan tetapi rentan terhadap pembentukan hematoma. Pada burung psittacine sedang hingga besar, burung laut, dan unggas, vena metatarsal medial juga dapat digunakan. Melapisi semprit dengan antikoagulan sebelum pengumpulan dapat membantu pada spesies yang lebih kecil di mana pengambilan sampel mungkin memakan waktu lebih lama tetapi dapat menyebabkan artefak dalam apusan darah, yang mempengaruhi jumlah sel yang berbeda.

 

PCV normal bervariasi antara spesies psittacine. Misalnya, cockatiel biasanya memiliki PCV yang lebih tinggi daripada banyak spesies lainnya, rata-rata 50% -55%. Akan tetapi, burung kakatua (Cacatua spp) seringkali memiliki PCV pada kisaran 40% –45%.

 

Anemia bisa jadi akibat kehilangan darah atau penurunan produksi. Kehilangan darah dapat terjadi dalam kasus trauma atau penyakit organ yang parah atau dalam kasus idiopatik seperti sindrom perdarahan conure. Respon terhadap anemia karena kehilangan darah mungkin termasuk adanya eritrosit imatur dan anisositosis bersamaan dengan peningkatan polikromasia. Produksi sel darah merah yang menurun dapat terjadi dengan penyakit kronis apa pun, dan anemia seringkali non-regeneratif. Racun seperti timbal atau minyak yang tertelan dapat menyebabkan anemia hemolitik.

 

Polisitemia jarang terjadi pada burung dan didefinisikan sebagai PCV> 70%. Telah dilaporkan pada burung dengan penyakit pernafasan kronis dan pada macaw dengan sindrom hipersensitivitas paru, suatu kondisi yang terjadi pada macaw yang bertempat di daerah berventilasi buruk dengan burung yang menghasilkan bubuk bulu dalam jumlah besar seperti kakatua, cockatiels, dan burung beo abu-abu Afrika.

 

Sel darah merah burung memiliki nukleasi, sehingga metode penentuan sel darah putih mamalia tradisional tidak memadai. Berbagai pengencer (misalnya, Eosinophil Unopette®, larutan Natt-Herricks®) tersedia untuk memungkinkan penentuan WBC yang akurat. Jumlah sel darah putih yang diperkirakan kurang akurat tetapi dapat berguna ketika individu yang melakukan perkiraan menghasilkan apusan darah dengan kualitas dan ketebalan yang konsisten. Jumlah WBC total normal bervariasi menurut spesies dan usia. Cockatiel dewasa sering memiliki jumlah leukosit 4.000–7.000 × 103 / μL. Macaw dewasa biasanya berada di ujung atas dari kisaran unggas normal (12.000-15.000 × 103 / μL).

Untuk banyak spesies burung, nilai referensi untuk jumlah WBC masih ditentukan. Leukositosis, dan perbedaan atau jenis leukosit yang meningkat, dapat mengidentifikasi penyakit yang mendasari dan memberikan indikasi penyebab yang paling mungkin. Hitungan diferensial pada burung dapat dipengaruhi oleh penyakit bakteri, jamur, dan virus, serta racun. Jenis sel darah putih unggas adalah heterofil, eosinofil, monosit, dan basofil.

 

Heterofil setara dengan neutrofil mamalia, dengan fungsi yang hampir sama. Heterofil unggas mengandung enzim lisosom dan bersifat bakterisidal dan fagositik. Mereka adalah sel pertama yang merespon setiap proses penyakit infeksi atau inflamasi. Alih-alih membentuk bahan purulen cair, heterofil unggas membentuk bahan kaseus yang terinsisasi. Bahan caseous ini kemudian ditutup oleh makrofag dan jaringan fibrosa untuk membentuk granuloma. Heterofilia dapat terjadi selama infeksi atau karena stres. Heteropenia sering dikaitkan dengan infeksi yang parah atau penyakit virus.

 

Limfosit berfungsi dalam produksi antibodi dan antigen serta reaksi imun seluler dan humoral. Limfositosis dapat terjadi pada infeksi kronis (klamidia, jamur, mikobakteri) atau dengan neoplasia limfoid. Pada beberapa spesies (misalnya, kenari dan burung beo Amazon), hingga 70% sel darah merah biasanya adalah limfosit. Limfopenia sering dikaitkan dengan penyakit virus (misalnya circovirus atau polyomavirus) atau sepsis.

 

Monositosis sering dikaitkan dengan penyakit granulomatosa kronis seperti infeksi klamidia, jamur, atau mikobakteri. Eosinofilia telah dilaporkan dengan penyakit parasit dan juga telah dikaitkan dengan reaksi hipersensitivitas yang tertunda. Basofilia dapat terjadi selama kondisi inflamasi dan infeksi kronis.

 

Perbedaan fisiologis pada burung menciptakan variasi dari nilai normal mamalia yang diterima untuk banyak pengukuran biokimia. Karena ekskresi asam urat daripada urea sebagai produk utama metabolisme protein, kadar asam urat secara signifikan lebih tinggi pada burung daripada pada mamalia, sedangkan BUN secara signifikan lebih rendah. Asam urat dapat meningkat pada penyakit ginjal berat atau dengan gout artikular. Dehidrasi parah dapat meningkatkan kadar asam urat, tetapi kadarnya kembali normal dengan rehidrasi. Saat ini tidak ada indikator biokimia yang dapat diandalkan untuk mendeteksi gangguan ginjal dini.

 

Glukosa serum atau plasma lebih tinggi pada burung dibandingkan mamalia, dengan tingkat umum 250–400 g / dL, tergantung pada spesies. Tingkat yang mengindikasikan diabetes juga bervariasi menurut spesies dan individu tetapi seringkali> 700-800 g / dL.

 

Enzim hati yang diukur umumnya termasuk AST dan LDH, yang memiliki nilai normal beberapa kali lipat dari mamalia (AST, 10–400 U / L; LDH, 75–450 U / L). Pengukuran CK sering dilakukan secara bersamaan untuk membedakan peningkatan nilai SGOT akibat nekrosis otot dari nilai yang disebabkan kerusakan hati. LDH adalah enzim berumur pendek dengan kegunaan terbatas dalam mendeteksi nekrosis hati. Tingkat ALT sangat rendah dibandingkan dengan mamalia (5-15 U / L); Namun, peningkatan kadar dapat mengindikasikan nekrosis hepatoseluler. Burung memiliki tingkat reduktase bilirubin yang rendah; oleh karena itu, bilirubin total biasanya juga sangat rendah, dan peningkatan dengan penyakit hati tidak konsisten (kisaran bilirubin total 0-0,1 mg / dL). Burung juga tidak menjadi ikterik dengan penyakit hati seperti halnya mamalia; mereka mengeluarkan biliverdin melalui ginjal mereka, menghasilkan urat kuning atau hijau limau. Pengukuran asam empedu merupakan indikator yang berguna untuk fungsi hati, dengan kadar <100 μmol / L dianggap normal untuk sebagian besar spesies unggas (tergantung laboratorium). Penetapan nilai referensi untuk spesies unggas yang berbeda akan meningkatkan kegunaan uji asam empedu.

 

Nilai kalsium dan fosfor mirip dengan yang ditemukan pada mamalia. Kadar ini dapat meningkat hingga 3 kali lipat pada ayam dalam persiapan untuk bertelur (yaitu, kalsium ~ 30 mg / dL dan fosfor> 10 mg / dL), biasanya dengan rasio mineral yang relatif normal. Total padatan yang diukur melalui refraktometer secara signifikan lebih rendah pada burung dibandingkan mamalia, dengan tingkat 3–5,5 g / dL normal untuk sebagian besar spesies. Total padatan juga dapat meningkat pada ayam yang aktif secara reproduktif.

 

Kisaran referensi kolesterol dan trigliserida masih dievaluasi, tetapi nilai referensi ~ 180–250 mg / dL untuk kolesterol dan 51–200 mg / dL untuk trigliserida. Peningkatan kadar trigliserida dan kolesterol telah dilaporkan pada burung yang diberi makanan tinggi lemak. Kadar tinggi juga dapat dilihat pada betina yang bereproduksi aktif dan mungkin merupakan faktor risiko pada burung yang mengembangkan aterosklerosis. Asam lemak omega-3 yang ditambahkan ke makanan serta pembatasan diet dan konversi ke diet pelet telah terbukti mengurangi hipertrigliseridemia dan hiperkolesterolemia.

 

Hematologi dan Biokimia Plasma Neonatus:

 

Neonatus memiliki beberapa perbedaan penting dari burung dewasa dalam parameter hematologi dan biokimia mereka. Neonatus memiliki PCV lebih rendah (20% –30%). Kisaran normal dewasa hadir mulai dari 10-12 minggu di sebagian besar spesies. Neonatus memiliki protein total yang lebih rendah (1-3 mg / dL) dan konsentrasi albumin plasma yang lebih rendah dibandingkan orang dewasa. Jumlah sel darah putih yang tinggi (20.000–40.000 sel / uL) sering terjadi pada neonatus; kisaran normal dewasa terjadi pada usia 9-11 minggu. Neonatus juga memiliki nilai asam urat yang lebih rendah dan konsentrasi alkali fosfatase dan CK yang lebih tinggi daripada orang dewasa.

 

Prosedur Medis Rutin

 

Suntikan dapat diberikan melalui beberapa rute. Suntikan SC digunakan untuk pemberian cairan, beberapa vaksinasi, dan banyak obat rutin seperti antibiotik. Studi pendahuluan menunjukkan bahwa rute SC mungkin sama efektifnya dengan suntikan IM untuk sebagian besar obat, tanpa nekrosis otot terkait. Untuk memastikan bahwa obat atau cairan yang disuntikkan benar-benar disimpan di bawah kulit, kulit harus divisualisasikan dengan jelas; penggunaan alkohol untuk membasahi kulit dan bulu dianjurkan untuk membantu visualisasi. Alat suntik insulin (50 U atau 0,5 mL) dengan jarum 27-gauge sangat berharga untuk pemberian dosis yang akurat ketika jumlah kecil harus diberikan. Cairan SC sering digunakan pada burung. Untuk memaksimalkan penyerapannya dan meminimalkan ketidaknyamanan, cairan harus dihangatkan hingga 102 ° –106 ° F. Situs administrasi adalah sayap lateral, jaring inguinalis, dan punggung. Cairan pemeliharaan diperkirakan 50 mL / kg dibagi bid-tid. Pada unggas yang mengalami dehidrasi, 50% dari total pemeliharaan harian dapat diberikan secara SC (25 mL / kg) dan diulangi setiap 6–8 jam sampai hidrasi kembali normal.

 

Suntikan IM diberikan ke otot dada pada kebanyakan burung peliharaan; otot kaki juga digunakan pada beberapa spesies, terutama burung pemangsa. Serat otot burung lebih vaskular dan padat daripada mamalia, membuat nekrosis otot dan injeksi IV yang tidak disengaja lebih mungkin terjadi.

 

Suntikan IV kadang-kadang diindikasikan pada burung. Obat yang umum diberikan secara IV adalah beberapa antibiotik, amfoterisin B, obat kemoterapi, media kontras, dan cairan.

 

Kateter yang menetap dapat ditempatkan di vena jugularis, basilika, atau metatarsal medial untuk infus kecepatan konstan atau pemberian cairan intermiten. Kateter Intraoseus (IO) juga dapat dimasukkan, umumnya di tulang tibiotarsal proksimal atau ulna distal. Jarum hipodermik standar dapat digunakan (biasanya jarum ukuran 25 untuk entri awal, diikuti dengan jarum ukuran 22 kedua yang dijahit pada tempatnya), atau jarum tulang belakang dengan stilet dapat digunakan untuk burung besar. Tanpa stilet atau jarum kedua, penyumbat tulang dapat menghalangi jarum. Kateter IO atau IV sebentar-sebentar dibilas dengan larutan garam hangat setiap kali cairan tidak diinfuskan. Mempertahankan kateter IV pada pasien unggas dapat menjadi tantangan, dan kateter IO seringkali lebih disukai untuk terapi cairan jangka panjang. Namun, terapi cairan melalui kateter IO bisa menyakitkan burung, terutama setelah 1-2 hari.

 

Pemberian pakan tanaman (gavage) dapat digunakan untuk memenuhi kebutuhan kalori pada burung anorektik. Formula komersial tersedia dan nyaman digunakan. Hidrasi yang memadai dan suhu tubuh normal (103 ° –106 ° F [39 ° –41 ° C]) harus ditetapkan sebelum memulai pemberian makan untuk mencegah pengeringan makanan tanaman dan stasis GI. Pada unggas dewasa, umumnya 30 mL / kg dapat diberikan tid-qid. Bayi burung memiliki tanaman yang jauh lebih distensi dan akan menahan ~ 10% dari berat badannya per makan (100 mL / kg). Obat oral dapat ditambahkan ke makanan tanaman atau diberikan langsung melalui mulut. Teknik memegang burung sehingga obat diberikan ke dalam mulut dan berguling ke lidah akan meminimalkan stres, kehilangan obat, dan bahaya aspirasi. Merawat burung bisa sangat sulit bagi pemiliknya; membungkus burung dengan handuk untuk pemberian obat dapat membuat burung dan pemiliknya stres dan, dalam beberapa kasus, berdampak buruk pada ikatan manusia-burung. Obat peracikan untuk membuatnya lebih enak dan dalam volume yang lebih kecil bisa sangat membantu dalam menggunakan obat oral. Mencampur obat perasa dengan makanan favorit, jus, atau makanan bayi juga dapat membantu memastikan kepatuhan. Obat-obatan yang diberikan di dalam air diindikasikan hanya dalam keadaan khusus seperti kawanan kecil burung atau burung aviary yang tidak biasa menangani dan akan membutuhkan jaring dan pengekang setiap hari, atau dalam kasus khusus di mana pemilik tidak dapat menangani burung. Enrofloxacin dan doksisiklin dalam air minum umumnya memberikan tingkat darah yang cukup untuk kemanjuran. Namun, kurangnya dosis yang akurat, stabilitas obat, dan palatabilitas membuat cara ini tidak diinginkan dalam banyak kasus.

 

Sedasi terkadang diperlukan untuk prosedur diagnostik atau pengobatan untuk mengurangi stres dan meminimalkan rasa takut. Midazolam yang diberikan pada 0,5–1 mg / kg, IM, atau 1–2 mg / kg intranasal (IN) adalah protokol sedasi yang aman dan efektif pada kebanyakan burung peliharaan; flumazenil (0,02-0,1 mg / kg, IM atau IN) dapat diberikan untuk membalikkan efeknya. Jika burung dianggap kesakitan atau tidak nyaman, butorphanol (0,5–3 mg / kg, IM atau IN, tergantung spesies) dapat diberikan sendiri atau dengan midazolam. Burung beo Amazon sering membutuhkan dosis yang lebih tinggi (2-3 mg / kg) butorphanol, sedangkan burung pemangsa membutuhkan dosis yang lebih rendah (0,5 mg / kg). Anestesi isofluran atau sevofluran yang diberikan dengan masker wajah juga dapat digunakan sendiri atau bersama dengan sedasi untuk prosedur yang lebih lama atau perawatan yang menyakitkan.

 

Intubasi pada burung relatif mudah, karena tidak adanya epiglotis memfasilitasi visibilitas bukaan trakea dan arytenoid. Puasa sebelum anestesi harus berdurasi minimal; puasa 4–6 jam adalah tipikal. Terlepas dari lamanya puasa, tanaman harus dipalpasi untuk mengetahui adanya makanan atau cairan sebelum anestesi. Pengosongan tanaman yang tertunda sering terjadi pada unggas yang sakit secara klinis. Jika anestesi harus diberikan pada burung dengan makanan atau air masih dalam tanaman, cairan harus dikeluarkan dengan selang makanan jika memungkinkan, dan kepala harus diangkat selama anestesi, terlepas dari apakah burung tersebut diintubasi. Tuba endotrakeal harus dibuka, karena tidak adanya ligamen trakea meningkatkan risiko nekrosis trakea jika manset terlalu mengembang. Bahkan pipa yang tidak beralas dapat menyebabkan kerusakan trakea atau nekrosis; Oleh karena itu, setelah burung diintubasi, gerakan kepala harus diminimalkan. Ventilator hewan kecil dapat digunakan untuk kebanyakan burung sekecil 100 g dan dapat sangat meningkatkan ventilasi selama anestesi. Jika ventilator mekanis tidak tersedia, ventilasi tekanan positif intermiten manual akan meningkatkan oksigenasi pada unggas yang dibius. Kapnograf, oksimeter denyut, dan Doppler juga berguna untuk pemantauan anestesi. Suhu tubuh normal kebanyakan psittacines adalah 103 ° –106 ° F (39 ° –41 ° C). Burung cenderung kehilangan panas tubuh dengan cepat saat dibius, dan menjaga suhu tubuh selama anestesi atau pembedahan yang berkepanjangan sangat penting untuk pemulihan. Burung dengan bulu rontok lebih berisiko mengalami hipotermia. Selimut penghangat air di bawah burung atau Bair HuggersTM dapat digunakan secara efektif untuk menjaga suhu tubuh. Lembar obat darurat dan obat darurat harus tersedia setiap kali burung dibius.

 

Pengelolaan lingkungan sangat penting; Burung yang sakit parah mendapat banyak manfaat dari peningkatan suhu dan kelembapan lingkungan (misalnya, penggunaan inkubator komersial dengan pengatur suhu dan kelembapan). Untuk keadaan darurat di rumah, lingkungan yang hangat dapat dibuat dengan membungkus plastik bening di sekitar tiga sisi kandang dan menempatkan bantalan pemanas listrik di sisi yang tersisa, pastikan burung tidak dapat mencapai bantalan. Termometer digital dengan probe jarak jauh dapat memberikan pemantauan suhu lingkungan yang akurat. Lokasi yang tenang, jauh dari suara gonggongan anjing dan aktivitas berlebihan lainnya, akan mengurangi stres.

 

Pengaturan kandang sangat penting untuk unggas yang sakit. Jika tempat bertengger disediakan, makanan dan air harus dinaikkan sehingga burung memiliki akses yang siap tanpa harus turun dari tempat bertengger. Seringkali, yang terbaik adalah menghilangkan tempat bertengger seluruhnya dari kandang burung yang sakit dan meletakkan wadah makanan dan air di lantai kandang sehingga burung memiliki akses yang mudah dan tidak mengeluarkan energi hanya dengan mencoba mempertahankan posisi bertengger.

 

Sumber:

Sharman M. Hoppes, DVM, ABVP (Avian).  2015. Management of Pet Birds.  Msdvetmanual.https://www.msdvetmanual.com/exotic-and-laboratory-animals/pet-birds/management-of-pet-birds.