Deteksi C. burnetii dari Spesimen Klinis

 

Deteksi C. burnetii dari Spesimen Klinis dengan PCR

 

RINGKASAN

Untuk deteksi PCR Coxiella burnetii dalam berbagai spesimen klinis, kami mengembangkan metode preparasi sampel di mana pengikatan silika DNA digunakan. Metode ini ternyata cepat, mudah dilakukan dengan jumlah sampel yang besar, dan sama sensitifnya untuk semua spesimen yang diuji (hati, limpa, plasenta, katup jantung, susu, darah). Metode preparasi DNA yang dijelaskan di sini juga dapat digunakan sebagai langkah awal dalam pemeriksaan spesimen berbasis PCR. Prosedur ini diuji dengan lebih dari 600 sampel susu, yang diambil dari 21 ekor sapi yang seropositif C. burnetii dan dilaporkan memiliki masalah kesuburan (dan karena itu dicurigai melepaskan agen melalui susu sebentar-sebentar atau terus-menerus). Dari 21 ekor sapi yang diuji, 6 ekor melepaskan C. burnetii melalui susu. Secara keseluruhan, DNA C. burnetii terdeteksi pada 6% sampel. Tidak ada korelasi antara pola shedding dan hasil serologis.

 

PENGANTAR

Coxiella burnetii adalah agen penyebab demam Q, zoonosis yang terjadi di seluruh dunia (12). Hewan yang terinfeksi, terutama ternak, dianggap sebagai sumber penularan terpenting ke manusia (9). Sedangkan hewan pada umumnya tidak menunjukkan tanda-tanda klinis infeksi kecuali aborsi sesekali dan masalah reproduksi lainnya, C. burnetii dapat menyebabkan penyakit serius pada manusia. Agen ini sangat tahan terhadap pengaruh lingkungan, dan bahkan satu partikel infektif dapat memulai infeksi pada model hewan (16).

 

Pentingnya infeksi melalui rute oral (misalnya, dengan minum susu yang tidak dipasteurisasi) masih menjadi bahan diskusi (2, 5, 7, 20, 22). Bahkan jika tingkat rata-rata yang dikeluarkan jauh lebih rendah, hingga 10⁵ coxiellae/ml dapat ditumpahkan dalam susu sapi selama beberapa periode laktasi (3, 20, 23). Oleh karena itu, sistem diagnostik yang spesifik dan sensitif diperlukan untuk mendeteksi bahkan sejumlah kecil coxiellae.

 

Kultur sel masih digunakan sebagai alat sensitif untuk deteksi rutin C. burnetii, yang merupakan bakteri obligat intraseluler, tetapi metode ini relatif memakan waktu. Sebuah capture enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) juga secara rutin digunakan untuk diagnosis infeksi C. burnetii (24); metode ini lebih cepat daripada tes kultur sel, tetapi batas deteksi tidak sepenuhnya memuaskan, mengingat tingkat pelepasan yang rendah dan dosis infeksi C. burnetii yang minimum.

 

PCR adalah metode deteksi yang sangat sensitif dan spesifik yang telah digunakan sebelumnya untuk melacak C. burnetii dalam sampel klinis (6, 13, 14, 26, 27). PCR yang dilakukan dengan primer berdasarkan elemen transposonlike berulang (Trans-PCR) (26) terbukti sangat spesifik dan sensitif, tetapi ekstraksi DNA dari sampel susu membutuhkan banyak usaha dan ada risiko tinggi kontaminasi karena banyaknya langkah-langkah persiapan.

 

Teknik di mana matriks silika digunakan telah berhasil digunakan untuk memurnikan DNA bakteri dari berbagai sumber untuk PCR (4, 8, 15, 25). Oleh karena itu, kami mengembangkan prosedur di mana matriks silika digunakan untuk ekstraksi DNA dalam penelitian ini, dan prosedur ini digabungkan dengan Trans-PCR untuk mendeteksi C. burnetii. Tujuan kami adalah untuk mengembangkan metode diagnostik yang cepat, murah, aman, dan sangat sensitif untuk mendeteksi C. burnetii dalam berbagai spesimen klinis. Selain itu, penerapan metode baru ini pada sampel susu dimaksudkan untuk menunjukkan kesesuaian sistem baru untuk diagnostik rutin dan untuk mengumpulkan informasi baru tentang pelepasan C. burnetii melalui susu sapi.

 

BAHAN DAN METODE

Organisme dan kondisi pertumbuhan.

C. burnetii Nine Mile fase I ditanam dalam kultur sel monyet hijau kerbau seperti yang dijelaskan sebelumnya (1) dan digunakan untuk mengkontaminasi spesimen. Sel monyet hijau kerbau diperbanyak dalam medium esensial minimal Eagle dan diinokulasi dengan C. burnetii. Supernatan kultur sel dipanen setiap minggu dan disonikasi untuk melepaskan agen infeksi dari sel. Puing-puing sel dihilangkan dengan sentrifugasi, dan pelet bakteri disuspensikan kembali dalam 0,15 M NaCl yang mengandung 0,04% NaN₃. Coxiellae yang panas tidak aktif (80 ° C, 15 menit), dan jumlah coxiellae di setiap suspensi ditentukan dengan mengukur densitas optik pada 420 nm. Konsentrasi sel riketsia dihitung dengan menggunakan kurva standar yang telah ditentukan sebelumnya. Suspensi rickettsial disimpan pada suhu 4°C sampai digunakan.

 

Sampel.

Sampel darah, susu, plasenta sapi, katup jantung babi, hati sapi, dan limpa domba diuji. Hati, limpa, dan katup jantung disediakan oleh rumah potong hewan setempat. Plasenta, darah, dan susu disumbangkan oleh klinik kebidanan dan kandungan setempat untuk hewan. Pengambilan sampel ELISA- dan PCR-negatif disimpan pada suhu -20 °C dan digunakan untuk kontaminasi buatan atau sebagai kontrol negatif.

 

Sampel susu yang digunakan dalam survei dikumpulkan setiap hari dari 21 sapi di empat peternakan sapi perah dan disimpan pada -20 ° C. Penurunan kesuburan telah dilaporkan untuk ternak. Sapi yang dipilih ditemukan serologis positif pada pemeriksaan sebelumnya, seperti yang ditentukan oleh ELISA atau CFT. Tidak ada indikasi mastitis pada sapi yang diperiksa, dan sampel susu menunjukkan konsistensi fisiologis.

 

Ekstraksi DNA.

Bagian (25 mg) dari jaringan hewan yang disebutkan di atas secara mekanis dihomogenisasi dalam 180 μl saline buffer fosfat. Untuk sampel susu dan darah, volume sampel 200 μl digunakan. Sel dilisiskan dengan proteinase K (konsentrasi akhir, 200 g/ml) pada 56°C semalaman. DNA disiapkan dengan kit pemurnian Prep-A-Gene (Bio-Rad, Munich, Jerman) dengan menggunakan 10 μl matriks silika. DNA dielusi dari matriks silika dengan menambahkan 100 μl buffer elusi Prep-A-Gene. Untuk meningkatkan hasil, DNA dielusi pada 56 ° C selama 5 menit dan disentrifugasi lagi. Satu mikroliter supernatan yang mengandung DNA digunakan untuk amplifikasi.

 

Sampel yang digunakan untuk uji sensitivitas terkontaminasi dengan 10⁴ sampai 100 coxiellae/sampel. Sampel yang digunakan sebagai kontrol positif terkontaminasi 10⁴ partikel/sampel. Kontrol diperlakukan seperti sampel. Setiap sampel susu diuji dalam rangkap tiga.

 

Oligonukleotida.

Primer Trans1 (5′-TAT GTA TCC ACC GTA GCC AGT C-3′), Trans2 (5′-CCC AAC AAC ACC TCC TTA TTC-3′) (26), Trans3 (5′-GTA ACG ATG CGC AGG CGA T-3′), dan Trans4 (5′-CCA CCG CTT CGC TCG CTA-3′) dibeli dari MWG Biotech (Ebersberg, Jerman).

 

Pemeriksaan PCR.

Trans-PCR dilakukan dengan menggunakan protokol yang dijelaskan sebelumnya (26) kecuali bahwa program siklus termal telah dimodifikasi. Primer Trans1 dan Trans2 mengapit urutan target 687-bp di wilayah berulang transposonlike genom C. burnetii.

Satu mikroliter dari setiap sampel digunakan untuk amplifikasi PCR. Total volume reaksi adalah 20 μl, dan setiap campuran reaksi mengandung setiap primer pada konsentrasi 1 M, setiap deoksinukleosida trifosfat (Roth, Karlsruhe, Jerman) pada konsentrasi 200 M, buffer reaksi (20 mM Tris-HCl [pH 9.0 ], 8 mM amonium sulfat, 1,5 mM MgCl2), dan 0,2 U Tfl DNA polimerase (Biozym, Hameln, Jerman). DNA dari 10⁴ coxiellae dan air suling ganda sebagai pengganti DNA digunakan masing-masing untuk menyiapkan kontrol positif dan negatif.

 

Uji PCR dilakukan dengan model 9600 thermal cycler (ABI/Perkin-Elmer, Weiterstadt, Jerman) di bawah kondisi berikut: lima siklus terdiri dari denaturasi pada 94°C selama 30 detik, anil pada 77 hingga 69°C (suhu penurunan 2°C antara langkah berurutan) selama 15 detik, dan ekstensi pada 77°C selama 1 menit dan kemudian 38 siklus yang terdiri dari denaturasi pada 94°C selama 30 detik, annealing pada 67°C selama 30 detik, dan ekstensi pada 77° C selama 1 menit. Sepuluh mikroliter produk PCR dianalisis dengan elektroforesis gel agarosa dan divisualisasikan dengan pewarnaan etidium bromida dan transiluminasi UV.

 

Pengurutan/ Sequencing.

Reaksi sekuensing nonradioaktif dilakukan dengan kit pengurutan siklus terminator dye-deoxy siap reaksi PRISM (Perkin-Elmer/ABI) seperti yang direkomendasikan oleh pabrikan.

 

Analisis urutan/ Sequencing.

Analisis urutan DNA dilakukan dengan paket perangkat lunak DNASTAR (DNASTAR Inc., London, Inggris Raya).

 

HASIL

Sensitivitas PCR.

Sensitivitas analitik dari Trans-PCR ditemukan 100 (kadang-kadang bahkan 10−1) partikel C. burnetii per campuran reaksi. Tes sensitivitas yang dilakukan dengan spesimen klinis yang terkontaminasi artifisial mengungkapkan batas deteksi 4.000 partikel/g jaringan (Gbr.1) dan 500 partikel/ml ketika darah atau susu digunakan(Gbr.2 ). Nilai-nilai ini sesuai dengan 1 partikel per campuran PCR.

                                                    Gambar 1

Sensitivitas Trans-PCR spesifik C. burnetii dengan sampel hati setelah preparasi DNA dengan matriks silika. Jalur 1, kontrol negatif dengan hati; jalur 2, 4 × 10⁵ C. partikel burnetii/g hati; jalur 3, 4 × 10⁴ partikel C. burnetii/g hati; jalur 4, 4 × 10³ partikel C. burnetii/g hati; jalur 5, 4 × 10¹ partikel C. burnetii/g hati; jalur 6, 4 × 100 partikel C. burnetii/g hati; jalur 7, kontrol negatif tanpa hati; jalur 8, tangga DNA 100-bp; jalur 9, kontrol positif tanpa hati.

 

                               Gambar 2

Sensitivitas Trans-PCR spesifik C. burnetii dengan sampel susu setelah preparasi DNA dengan matriks silika. Jalur 1, kontrol negatif dengan susu; jalur 2, 5 × 10⁴ partikel C. burnetii/g susu; jalur 3, 5 × 103 partikel C. burnetii/ml susu; jalur 4, 5 × 10² partikel C. burnetii/ml susu; jalur 5, 5 × 10¹ partikel C. burnetii/ml susu; jalur 6, 5 × 100 partikel C. burnetii/ml susu; jalur 7, kontrol negatif tanpa susu; jalur 8, tangga DNA 100-bp; jalur 9, kontrol positif tanpa susu.

 

Pengurutan/ Sequencing

Untuk memverifikasi identitas amplikon PCR, dilakukan sekuensing lengkap menggunakan primer PCR Trans1 dan Trans2, serta dua primer internal (Trans3 dan Trans4). Dalam semua kasus, urutan amplikon identik dengan urutan dalam database EMBL/GenBank (aksesi no. M80806).

 

Deteksi DNA C. burnetii

Dalam sampel susu klinis.

Selama survei 1 bulan dilakukan dengan sapi seropositif, hanya 6 ekor dari 21 ekor sapi diperiksa coxiellae diekskresikan dalam susu; 2 ekor dari 21 sapi melepaskan coxiellae melalui susu satu kali, 1 ekor melepaskan coxiellae dalam 2 hari, 1 ekor melepaskan coxiellae dalam 3 hari, dan 1 ekor melepaskan coxiellae dalam 6 hari. Biasanya, shedding tidak koheren. Hanya satu ekor yang menunjukkan pelepasan agen yang hampir terus menerus melalui susu selama 23 hari. Tidak ada korelasi antara hasil serologis dan pola pelepasan coxiellae dalam susu, kami juga tidak mengamati hubungan antara tanggal melahirkan terakhir dan pelepasan C. burnetii.

 

DISKUSI

Kesesuaian metode deteksi untuk diagnostik rutin tergantung pada beberapa faktor, seperti spesifisitas, sensitivitas, biaya, jumlah waktu, dan penerapan pada sejumlah besar spesimen yang relevan secara klinis. Prosedur persiapan sampel yang dijelaskan di sini telah terbukti bekerja sama baiknya dengan semua bahan yang dianggap penting untuk diagnosis infeksi C. burnetii. Plasenta dan jaringan janin, seperti jaringan hati atau limpa, harus diperiksa setelah aborsi yang diduga disebabkan oleh coxiellosis. Pemeriksaan darah diperlukan untuk membuktikan coxiellaemia. Dalam kasus demam Q kronis pada manusia, katup hati dan jantung dapat menjadi tempat kolonisasi (18).

 

Karena jaringan manusia tidak tersedia, padanan hewan digunakan dalam percobaan kami. Karena masalah kesehatan masyarakat, susu sering diperiksa, terutama bila susu yang tidak dipasteurisasi digunakan secara komersial. Dengan teknik mapan yang dijelaskan di sini sejumlah besar sampel dapat diperiksa secara bersamaan; hingga 64 sampel sekaligus diproses dengan mudah dalam penelitian ini. Hasil tersedia dalam 1 hari, termasuk waktu yang dibutuhkan untuk preparasi sampel (0,5-1,5 jam), PCR, dan dokumentasi. Tergantung pada jumlah sampel, waktu kerja adalah sekitar 2 sampai 4 jam. Oleh karena itu, metode yang digunakan dalam penelitian ini lebih cepat daripada prosedur yang dijelaskan sebelumnya untuk mendeteksi C. burnetii. Selain itu, metode kami tidak mahal dibandingkan dengan metode lain yang digunakan untuk menyiapkan sampel untuk PCR. Dengan demikian, teknik yang dijelaskan di sini mudah diterapkan untuk diagnostik rutin sehari-hari dan studi epidemiologi C. burnetii yang lebih besar.

 

Namun, sensitivitas metode kami terbukti lebih rendah daripada sensitivitas yang diperoleh dengan metode preparasi sampel yang awalnya dijelaskan untuk deteksi C. burnetii dengan PCR (26). Kapasitas pengikatan dan volume reaksi memungkinkan preparasi DNA dari sampel masing-masing hanya sebesar 200 μl dan 25 mg. Di sisi lain, tidak ada ukuran sampel minimum, sehingga sampel biopsi pun cocok untuk pengujian.

 

Selama pemurnian DNA PCR inhibitor dimurnikan. Oleh karena itu, volume elusi yang direkomendasikan (10 μl)) harus ditingkatkan (menjadi 100 μl)) untuk mengencerkan inhibitor. Batas deteksi ditentukan menjadi 4.000 coxiellae/g jaringan. Setidaknya ketika plasenta diperiksa, batas ini sudah cukup, karena telah dilaporkan bahwa sejumlah besar C. burnetii bersarang di dalam rahim dan cairan ketuban sapi yang terinfeksi (23). Sedikit yang diketahui tentang tingkat rata-rata agen di jaringan lain.

 

Dalam penelitian sebelumnya (19) konsentrasi coxiellae dalam susu ditentukan sebagai unit menular dengan menggunakan kelinci percobaan sebagai model hewan. Schaal (19) menemukan bahwa susu dari sapi yang terinfeksi mengandung 10² hingga 10⁴ unit infeksius/ml. Dengan asumsi bahwa infeksi marmot biasanya membutuhkan lebih dari satu sel coxiella, batas deteksi PCR, 500 coxiellae/ml susu, mencakup jumlah yang diharapkan dari agen yang ditumpahkan melalui susu. Selanjutnya, PCR tidak hanya mendeteksi agen infeksius tetapi juga agen yang tidak dapat hidup. Bagaimanapun, metode yang dijelaskan di atas lebih sensitif daripada capture ELISA (batas deteksi, 2.000 coxiellae per pengujian) dan jauh lebih cepat dan nyaman daripada kultur sel, di mana setidaknya 6 hari pemeriksaan diperlukan untuk hasil diagnostik (18). Karena metode yang dijelaskan di sini tidak spesifik untuk DNA C. burnetii, metode ini mungkin berguna untuk mendiagnosis infeksi dengan bakteri lain juga. Ini berbeda dengan metode preparasi di mana pemisahan imunomagnetik digunakan (13), yang secara selektif memurnikan DNA spesifik.

 

Hasil yang diperoleh untuk sampel susu dari 21 ekor sapi membuktikan bahwa sistem dapat mendeteksi coxiellae pada spesimen yang terinfeksi secara alami. Ini penting karena C. burnetii adalah agen intraseluler obligat (16). Temuan yang diperoleh dengan sampel yang terkontaminasi artifisial yang hanya mengandung partikel C. burnetii ekstraseluler tidak dapat begitu saja ditransfer ke sampel klinis. Selain itu, survei ini mengkonfirmasi kesesuaian tes untuk diagnostik rutin.

 

Persentase sapi seropositif C. burnetii yang dilaporkan sebelumnya yang melepaskan agen melalui susu mereka berkisar antara 8,3 hingga 90% (2, 5). Nilai-nilai ini didasarkan pada deteksi coxiellae dengan uji aglutinasi kapiler (11, 22) atau hewan percobaan (19, 20, 22). Selanjutnya, dalam penelitian ini sapi seropositif dipilih dengan ELISA, sedangkan pada survei sebelumnya CF digunakan untuk uji serologis.  Perbedaan besar dalam hasil penelitian sebelumnya mungkin karena perbedaan ini. Dalam penelitian ini C. burnetii terdeteksi dalam sampel susu dari 6 dari 21 sapi yang diuji. Penumpahan coxiellae dalam susu adalah intermiten untuk semua sapi positif, yang konsisten dengan penelitian sebelumnya (3, 5, 20). Penting bahwa pelepasan agen tidak terjadi dalam pola yang terlihat. Pengamatan ini menunjukkan bahwa penetapan tanggal untuk pemeriksaan susu dapat menghasilkan negatif palsu. Oleh karena itu, di masa depan, survei serologis dari ternak yang membutuhkan susu bebas coxiella mungkin tidak diperlukan.

 

Pemeriksaan tanggal melahirkan menunjukkan tidak ada hubungan antara melahirkan dan pelepasan C. burnetii. Hubungan seperti itu dimungkinkan karena terjadinya C. burnetii dalam susu dilaporkan membutuhkan kelenjar susu yang berkembang penuh (21) dan titer darah antibodi terhadap coxiella meningkat setelah lahir (10). Coxiellae mungkin terkonsentrasi di kelenjar susu selama istirahat dalam menyusui dan kemudian dapat ditumpahkan pada awal periode laktasi baru. Namun, ukuran survei ini tidak memungkinkan pernyataan statistik apa pun; data kami hanya memberikan petunjuk tentang kondisi pelepasan C. burnetii melalui susu sapi. Studi lebih lanjut yang mencakup jumlah hewan yang signifikan secara statistik dan mempertimbangkan faktor-faktor seperti ukuran kawanan, kelahiran, penyakit, dan pengobatan akan diperlukan untuk mendapatkan informasi lengkap tentang perjalanan pelepasan.

 

DAFTAR PUSTAKA

1. Arens M. Kontinuierliche Vermehrung von Coxiella burnetii durch persistierende Infektion in Buffalo-Green-Monkey (BGM)-Zellkulturen. Zentbl Vetmed Reihe B. 1983;30:109–116. [PubMed] [Google Scholar]

2. Benson W W, Brock D W, Mather J. Serologic analysis of a penitentiary group using raw milk from a Q fever infected herd. Public Health Rep. 1963;78:707–710. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

3. Biberstein E L, Behymer D E, Bushnell R, Crenshaw G, Riemann H P, Franti C E. A survey of Q fever (Coxiella burnetii) in California dairy cows. Am J Vet Res. 1974;35:1577–1582. [PubMed] [Google Scholar]

4. Dupon M, Cazenave J, Pellegrin J L, Ragnaud J M, Cheyrou A, Fischer I, Leng B, Lacut J Y. Detection of Toxoplasma gondii by PCR and tissue culture in cerebrospinal fluid and blood of human immunodeficiency virus-seropositive patients. J Clin Microbiol. 1995;33:2421–2426. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

5. Durand M P. L’excrétion lactée et placentaire de Coxiella burnetii, agent de la Fièvre Q, chez la vache. Importance et prévention. Bull Acad Natl Med (Paris) 1993;6:935–946. [PubMed] [Google Scholar]

6. Frazier M E, Mallavia L P, Samuel J E, Baca O G. DNA probes for the identification of Coxiella burnetii strains. Ann NY Acad Sci. 1990;590:445–457. [PubMed] [Google Scholar]

7. Gouverneur K, Schmeer N, Krauss H. Zur Epidemiologie des Q-Fiebers in Hessen: Untersuchungen mit dem Enzymimmuntest (ELISA) und der Komplementbindungsreaktion (KBR) Berl Muench Tieraerztl Wochenschr. 1984;97:437–441. [PubMed] [Google Scholar]

8. Kox L F, Rhietong D, Miranda A M, Udomsantisuk N, Ellis K, van Leeuwen J, van Heusden S, Kuijper S, Kolk A H. A more reliable PCR for detection of Mycobacterium tuberculosis in clinical samples. J Clin Microbiol. 1994;32:672–678. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

9. Lang G H. Coxiellosis (Q-fever) in animals. In: Marrie T J, editor. Q-fever: The disease. Boca Raton, Fla: CRC Press; 1990. pp. 23–48. [Google Scholar]

10. Lange S, Söllner H, Hofmann J, Lange A. Q-Fieber-Antikörper-Verlaufsuntersuchung beim Rind unter besonderer Berücksichtigung der Trächtigkeit. Berl Muench Tieraerztl Wochenschr. 1992;105:260–263. [PubMed] [Google Scholar]

11. Luoto L. A capillary agglutination test for bovine Q-fever. J Immunol. 1953;71:226–231. [PubMed] [Google Scholar]

12. Marrie T J. Epidemiology of Q-fever. In: Marrie T J, editor. Q-fever: the disease. Boca Raton, Fla: CRC Press; 1990. pp. 49–70. [Google Scholar]

13. Muramatsu Y, Maruyama M, Yanase T, Ueno H, Morita C. Improved method for preparation of samples for the polymerase chain reaction for detection of Coxiella burnetii in milk using immunomagnetic separation. Vet Microbiol. 1996;51:179–185. [PubMed] [Google Scholar]

14. Muramatsu Y, Yanase T, Okabayashi T, Ueno H, Morita C. Detection of Coxiella burnetii in cow’s milk by PCR–enzyme-linked immunosorbent assay combined with a novel sample preparation method. Appl Environ Microbiol. 1997;63:2142–2146. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

15. Noordhoek G T, Kaan J A, Mulder S, Wilke H, Kolk A H J. Routine application of the polymerase chain reaction for detection of Mycobacterium tuberculosis in clinical samples. J Clin Pathol. 1995;48:810–814. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

16. Ormsbee R, Peacock M, Gerloff R, Tallent G, Wilke D. Limits of rickettsial infectivity. Infect Immun. 1978;19:239–245. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

17. Raoult D, Levy P Y, Harlé J R, Etienne J, Massip P, Goldstein F, Micoud M, Beytout J, Gallais H, Remy G, Capron J P. Chronic Q fever: diagnosis and follow up. Ann NY Acad Sci. 1990;590:51–60. [PubMed] [Google Scholar]

18. Raoult D, Vestris G, Enea M. Isolation of 16 strains of Coxiella burnetii from patients by using a sensitive centrifugation cell culture system and establishment of the strains in HEL cells. J Clin Microbiol. 1990;28:2482–2484. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

19. Schaal E. Die hygienische Bedeutung von Rickettsien (Coxiella burnetii) in Lebensmitteln tierischer Herkunft. Dtsch Med Wochenschr. 1972;97:699–704. [PubMed] [Google Scholar]

20. Schaal E. Zur Kontamination der Milch mit Rickettsien. Tieraerztl Umsch. 1980;35:431–438. [Google Scholar]

21. Schaal E, Schaaf J. Erfahrungen und Erfolge bei der Sanierung von Rinderbeständen mit Q-Fieber. Zentbl Vetmed Reihe B. 1969;16:818–831. [PubMed] [Google Scholar]

22. Schaal E H, Schäfer J. Zur Verbreitung des Q-Fiebers in einheimischen Rinderbeständen. Dtsch Tieraerztl Wochenschr. 1984;91:52–56. [PubMed] [Google Scholar]

23. Schliesser T. Zur Epidemiologie und Bedeutung des Q-Fiebers bei Tieren. Wien Tieraerztl Monschr. 1991;78:7–12. [Google Scholar]

24. Thiele D, Karo M, Krauss H. Monoclonal antibody based capture-ELISA/ELIFA for detection of Coxiella burnetii in clinical specimen. Eur J Epidemiol. 1992;8:568–574. [PubMed] [Google Scholar]

25. Tola S, Angioi A, Rocchigiani A M, Idini G, Manunta D, Galleri G, Leori G. Detection of Mycoplasma agalactiae in sheep milk samples by polymerase chain reaction. Vet Microbiol. 1997;54:17–22. [PubMed] [Google Scholar]

26. Willems H, Thiele D, Fröhlich-Ritter R, Krauss H. Detection of Coxiella burnetii in cow’s milk using the polymerase chain reaction (PCR) J Vet Med Ser B. 1994;41:580–587. [PubMed] [Google Scholar]

27. Yuasa Y, Yoshiie K, Takasaki T, Yoshida H, Oda H. Retrospective survey of chronic Q fever in Japan by using PCR to detect Coxiella burnetii DNA in paraffin-embedded clinical samples. J Clin Microbiol. 1996;34:824–827. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

 

Sumber:

Helga Lorenz, Cornelie Jäger, Hermann Willems, and Georg Baljer. 1998. PCR Detection of Coxiella burnetii from Different Clinical Specimens, Especially Bovine Milk, on the Basis of DNA Preparation with a Silica Matrix.  Appl Environ Microbiol. 1998 Nov; 64(11): 4234–4237.

 

Rol Robot: Infrastruktur Masa Depan

Pasukan rol robot Tiongkok membuka jalan menuju infrastruktur masa depan

Beberapa yang terbesar infrastruktur proyek yang sedang dibangun di Tiongkok sudah mulai menggunakan robot.

Proyek-proyek tersebut termasuk proyek pengalihan air yang paling menantang di dunia, bendungan tertingginya, satu kota futuristik baru, dan bagian dari jalan tol yang diharapkan oleh pemerintah Tiongkok daratan akan menghubungkan Beijing ke Taipei.

Sebagai catatan awal bahwa kecerdasan buatan atau artificial Intelligece (AI) memungkinkan mesin untuk belajar dari pengalaman, menyesuaikan input-input baru dan melaksanakan tugas seperti manusia. Sebagian besar contoh AI yang ada dewasa ini – mulai dari komputer yang bermain catur hingga mobil yang mengendarai sendiri – sangat mengandalkan pembelajaran mendalam dan pemrosesan bahasa alamiah. Dengan menggunakan teknologi ini, komputer dapat dilatih untuk menyelesaikan tugas-tugas tertentu dengan memproses sejumlah besar data dan mengenali pola dalam data.

Kecerdasan buatan atau artificial Intelligece (AI) telah digunakan secara luas dalam ledakan infrastruktur Tiongkok, termasuk dalam pembangunan Baihetan, bendungan pembangkit listrik tenaga air terbesar kedua di dunia, yang dibangun dalam waktu empat tahun. Tetapi tujuan utama dari teknologi adalah untuk mengkoordinasikan aktivitas pekerja manusia. Selama beberapa dekade, robot di industri konstruksi kebanyakan hanya dibicarakan saja. Namun, didorong oleh teknologi yang mengganggu seperti 5G, investasi besar dalam infrastruktur dan kenaikan biaya tenaga kerja, pasukan robot konstruksi yang kecil namun berkembang pesat telah muncul di Cina.

Penggunaan robot mengubah sektor konstruksi Tiongkok “dari industri padat karya menjadi industri teknologi tinggi berbasis pengetahuan”, kata Yan Junle, seorang insinyur sipil senior di proyek pengalihan air lembah sungai Hanjiang-ke-Weihe, dalam sebuah makalah yang diterbitkan bulan ini di jurnal dalam negeri Teknologi dan Manajemen Mesin Konstruksi.

Tim Yan adalah pengguna pertama robot konstruksi dalam proyek infrastruktur besar Tiongkok. Pada tahun 2018, mereka membangun armada rol otonom bekerja sama dengan peneliti dari Universitas Tsinghua dan pendanaan dari pemerintah.

Proyek pengalihan air Han-Wei dirancang untuk menyalurkan 1,5 miliar meter kubik (400 miliar galon) air per tahun dari wilayah Sungai Yangtze ke wilayah Sungai Kuning yang haus di provinsi barat laut Shaanxi – titik awal Sabuk dan Jalan Inisiatif di darat.

Proyek ini melibatkan dua bendungan besar dan terowongan air sepanjang 100 km (62 mil) melalui Pegunungan Qinling. Tanpa rol robot, tim proyek akan berjuang untuk menyelesaikan konstruksi pada tenggat waktu mereka tahun ini, menurut Yan.

Pengemudi manusia harus sering istirahat karena "rol menghasilkan getaran kuat yang dapat menggangu kesehatan", Yan dan rekan mengatakan di koran. Robot juga meningkatkan kualitas konstruksi, kata mereka.

“Penggulungan tradisional oleh manusia tidak dapat memperoleh data konstruksi, dan ada banyak masalah seperti kompresi yang tidak merata, underpressure, overpressure yang sangat mengancam kualitas,” tulis mereka.

Tim proyek infrastruktur lainnya, seperti yang membangun bendungan baru di Tibet dan "kota masa depan" Xiongan di selatan Beijing, mengadopsi teknologi serupa.

Mereka menghadapi beberapa masalah. Sebuah situs konstruksi bisa sangat kompleks, terutama bila menggunakan lebih banyak rol, menurut makalah penelitian yang diterbitkan oleh para ilmuwan yang terlibat dalam proyek ini. Beberapa area kerja, misalnya, bentuknya tidak beraturan, dan memiliki hambatan yang harus dihindari.

Gerakan perencanaan dan koordinasi dapat menimbulkan tantangan bagi teknologi AI, sementara perangkat komunikasi sering rusak di daerah dataran tinggi yang dingin seperti Tibet.

Terlepas dari tantangan seperti itu, proyek pembangkit listrik tenaga air Shuangjiangkou di sungai Dadu di Sichuan membawa penggunaan robot ke tingkat yang baru. Bendungan senilai 20 miliar yuan (US$3 miliar) seharusnya setinggi 312 meter (1.024 kaki) ketika selesai pada 2024.

Tidak seperti proyek pengalihan air Han-Wei, yang menggunakan Sistem Pemosisian Global yang dikembangkan AS, dan radio gelombang mikro untuk komunikasi, robot yang bekerja di bendungan Shuangjiangkou menggunakan sistem navigasi BeiDou baru Tiongkok dan teknologi komunikasi 5G baru.

Rol pintar dihubungkan ke sensor yang ditempatkan di sekitar lokasi konstruksi, dan dilengkapi untuk belajar dari data yang dikumpulkan cara meningkatkan kinerjanya. Drone, sementara itu, digunakan untuk mendeteksi potensi bahaya lingkungan.

Mesin pintar ini terhubung ke komputer pusat yang dilengkapii dengan teknologi AI untuk mengoordinasikan interaksi antara manusia dan mesin, menurut informasi di situs web pemerintah provinsi Sichuan.

Tahun lalu, otoritas transportasi di provinsi Zhejiang menyetujui penggunaan pertama robot dalam pemeliharaan jalan.

Sementara sebagian besar robot konstruksi sejauh ini adalah roller, robot pemelihara di jalan Beijing-Taipei yang diusulkan dapat mengelola berbagai tugas yang lebih luas, seperti mengaspal jalan dengan aspal.

Pihak berwenang menyimpulkan bahwa mesin akan membantu mengatasi kekurangan tenaga kerja, meningkatkan presisi kerja hingga 50 persen, mengurangi waktu hingga seperempat dan memotong biaya sebesar 15 persen.

Seorang kontraktor swasta pada proyek infrastruktur pemerintah di Guangdong mengatakan robot telah menjadi kata kunci. Mereka mungkin terlihat kikuk, katanya, tetapi mereka dapat merevolusi industri mereka “mirip lokomotif uap awal”.

"Saya akan melakukan apa saja untuk mengganti pekerja dengan mesin," katanya, meminta untuk tidak disebutkan namanya karena ini masalah yang sangat sensitif.

Kebanyakan anak muda tidak mau bekerja di lokasi konstruksi, katanya, seraya menambahkan bahwa keterampilan bervariasi dari satu orang ke orang lain, sedangkan “Robot bagus untuk kontrol kualitas,” katanya.

Beberapa ahli telah memperingatkan bahwa peningkatan penggunaan robot dapat berdampak negatif pada masyarakat.

Sebuah studi yang dipimpin oleh University of Nottingham Ningbo Tiongkok bulan ini menemukan bahwa penggunaan robot tidak membantu meningkatkan pendapatan sebanyak yang diharapkan, dan tidak meningkatkan produktivitas secara keseluruhan.

Studi lain yang diterbitkan bulan ini oleh para peneliti Universitas Teknologi Guangdong menemukan bahwa di Delta Sungai Pearl, salah satu daerah paling maju di  Tiongkok, transisi dari tenaga kerja manusia ke robot telah meningkatkan pengangguran dan mengurangi gaji rata-rata pekerja.

Penerapan robot dalam skala besar dapat "merangsang pertumbuhan ekonomi tetapi menghancurkan lapangan kerja", kata para peneliti.

Sebuah tim peneliti di Tiongkok telah meluncurkan drone bawah air yang dapat mengenali, mengikuti, dan menyerang kapal selam musuh tanpa instruksi manusia.

Proyek rahasia, yang didanai oleh militer, sebagian dideklasifikasi minggu lalu dengan penerbitan makalah yang memberikan pandangan langka tentang uji lapangan kendaraan bawah air tak berawak atau unmanned underwater vehicle (UUV), yang tampaknya berada di Selat Taiwan, lebih dari satu dekade lalu.

Sumber:

https://www.scmp.com/news/Tiongkok/military/article/3140220/Tiongkok-reveals-secret-programme-unmanned-drone-submarines-dating

diunduh 9 Juli 2021 jam 07:00 WIB.

 

Sertifikat Veteriner

Sertifikat Veteriner Lalu lintas hewan, produk hewan, dan media pembawa penyakit hewan lainnya antar kabupaten/kota atau provinsi dalam Negara Kesatuan Republik Indonesia

Aktivitas Penyediaan Sertifikat Elektronik dan Layanan Yang Menggunakan Sertifikat Elektronik

 

1. Ruang Lingkup 

Standar ini mengatur persyaratan yang harus dipenuhi oleh pelaku usaha untuk Lalu Lintas Hewan, Produk Hewan, dan Media Pembawa Penyakit Hewan Lainnya Antar kabupaten/Kota atau Provinsi Dalam Negara Kesatuan Republik Indonesia mencakup persyaratan penerbitan, tata cara penerbitan, dan kewajiban pelaku usaha.

2. Istilah dan Definisi

1. Hewan adalah binatang atau satwa yang seluruh atau sebagian dari siklus hidupnya berada di darat, air, dan/atau udara, baik yang dipelihara maupun yang di habitatnya.

2. Hewan, produk hewan, dan media pembawa penyakit hewan lainnya yang selanjutnya disebut HPM adalah semua hewan, produk hewan, dan media pembawa penyakit hewan lainnya selain hewan air.

3. Wilayah adalah suatu lokasi dapat berupa kabupaten/kota, provinsi, atau beberapa provinsi.

4. Kawasan adalah pulau, zona, kompartemen, unit konservasi, dan tempat terisolasi dengan batas-batas buatan dan/atau alami yang diberlakukan tindakan pengamanan untuk melindungi Hewan dan lingkungan hidup dari Penyakit Hewan.

5. Lalu lintas adalah kegiatan melalulintaskan HPM antar kabupaten/kota, antar provinsi, atau Kawasan dalam wilayah Negara Kesatuan Republik Indonesia.

6. Pemasukan adalah kegiatan memasukkan HPM dari kabupaten/kota ke kabupaten/kota lainnya, dari satu provinsi ke provinsi lain, atau dari satu Kawasan ke Kawasan lainnya.

7. Pengeluaran adalah kegiatan mengeluarkan HPM dari satu kabupaten/kota ke kabupaten/kota lainnya atau dari satu provinsi ke provinsi lain, atau dari satu Kawasan ke Kawasan lainnya.

8. Penyakit Hewan Menular adalah penyakit yang ditularkan antara Hewan dan Hewan, Hewan dan manusia, serta Hewan dan media pembawa penyakit Hewan lain melalui kontak langsung atau tidak langsung dengan media perantara mekanis seperti air, udara, tanah, Pakan, peralatan, dan manusia, atau melalui media perantara biologis seperti virus,bakteri, amuba, atau jamur.

9. Penyakit Hewan Menular Strategis adalah penyakit Hewan yang dapat menimbulkan angka kematian dan/atau angka kesakitan yang tinggi pada Hewan, dampak kerugian ekonomi, keresahan masyarakat, dan/atau bersifat zoonotik.

10.Otoritas Veteriner adalah kelembagaan Pemerintah atau Pemerintah Daerah yang bertanggung jawab dan memiliki kompetensi dalam penyelenggaraan Kesehatan Hewan.

11.Dokter Hewan Berwenang adalah Dokter Hewan yang ditetapkan oleh Menteri, gubernur, atau bupati/walikota sesuai dengan kewenangannya berdasarkan jangkauan tugas pelayanannya dalam rangka penyelenggaraan Kesehatan Hewan.

12.Sertifikat Veteriner adalah jaminan tertulis yang diberikan oleh Otoritas Veteriner Provinsi atau Kabupaten/Kota yang menyatakan bahwa HPM telah memenuhi persyaratan daerah tujuan.

13.Dinas Daerah adalah satuan kerja perangkat daerah yang selanjutnya disingkat dengan SKPD provinsi atau kabupaten/kota yang membidangi fungsi Peternakan dan kesehatan hewan.

14.Provinsi atau kabupaten/kota penerima adalah provinsi atau kabupaten/kota yang menerima pemasukan HPM.

15.Provinsi atau kabupaten/kota pengirim adalah provinsi atau kabupaten/kota yang mengeluarkan HPM.

16.Setiap orang adalah orang perseorangan atau korporasi baik yang berbadan hukum maupun yang tidak berbadan hukum serta yang melakukan kegiatan di bidang peternakan dan kesehatan hewan.

17.Hewan kebutuhan khusus adalah hewan yang membutuhkan perawatan, kesehatan, vitamin dan vaksin agar kualitas hidupnya tetap terjaga dan untuk menghindari dari berbagai macam penyakit.

18.Satwa Liar adalah semua binatang yang hidup di darat, air, dan/atau udara yang masih mempunyai sifat liar, baik yang hidup bebas maupun yang dipelihara oleh manusia.

19.Hewan Laboratorium adalah hewan yang dipelihara khusus sebagai hewan percobaan, penelitian, pengujian, pengajaran, dan penghasil bahan biomedik ataupun dikembangkan menjadi hewan model untuk penyakit manusia.

20.Ternak adalah hewan peliharaan yang produknya diperuntukan sebagai penghasil pangan, bahan baku industri, jasa, dan/atau hasil ikutannya yang terkait dengan pertanian.

21.Hewan Kesayangan adalah hewan yang dipelihara khusus sebagai hewan olah raga, kesenangan, dan/atau keindahan.

22.Hewan eksotik adalah hewan yang tidak lazim dipelihara oleh manusia sebagai hewan kesayangan.

23.Daerah Bebas adalah Wilayah atau Kawasan yang tidak pernah ditemukan adanya agen Penyakit Hewan menular/bebas historis atau yang semula terdapat kasus atau agen Penyakit Hewan menular dan setelah dilakukan pengamatan tidak ditemukan kasus atau agen Penyakit Hewan menular.

24.Daerah Terduga adalah Wilayah atau Kawasan yang masih berstatus bebas penyakit yang berbatasan langsung dengan daerah wabah tanpa dibatasi oleh batas alam seperti laut, sungai, gunung, kawasan hutan alam maupun daerah bebas lainnya yang mempunyai batas alam dengan frekuensi lalu lintas HPM tinggi dan berada di luar Wilayah kerja karantina.

25.Daerah Tertular adalah Wilayah atau Kawasan dengan situasi sporadis, endemis, kejadian luar biasa, atau wabah yang ditemukan kasus Penyakit Hewan menular tertentu pada populasi Hewan rentan.

3. Persyaratan Umum 

Setiap Orang yang mengajukan permohonan Sertifikat Veteriner Lalu Lintas HPM Antar Kabupaten/Kota atau Provinsi Dalam Negara Kesatuan Republik Indonesia harus memenuhi persyaratan:

a. Surat Rekomendasi Pemasukan yang diterbitkan Pejabat Otoritas Veteriner kabupaten/kota penerima untuk HPM yang dilalulintaskan antar kabupaten/kota atau Kawasan dalam satu provinsi atau Surat Rekomendasi Pemasukan yang diterbitkan Pejabat Otoritas Veteriner provinsi penerima dan Surat Rekomendasi Pengeluaran yang diterbitkan Pejabat Otoritas Veteriner provinsi pengirim untuk HPM yang dilalulintaskan antar provinsi.

b. Rekomendasi Pengeluaran dari Provinsi didasarkan kepada Rekomendasi Pemasukan dari Provinsi Penerima.

c. Rekomendasi Pemasukan dan Rekomendasi Pengeluaran memuat informasi: - Nama pemohon - Alamat - Provinsi Asal - Kabupaten/Kota Asal - Kawasan Asal - Kabupaten/Kota Tujuan - Jenis HPM - Persyaratan Teknis Kesehatan Hewan Persyaratan Teknis Kesehatan Hewan Daerah Penerima diumumkan di website Pemerintah Daerah Kabupaten/Kota atau Provinsi

d. Rekomendasi Pemasukan atau Rekomendasi Pengeluaran berlaku selama tidak ada perubahan persyaratan teknis Kesehatan Hewan.

e. Sertifikat Veteriner memuat informasi: - Nama Pemilik - Alamat - Provinsi Asal - Kabupaten/Kota Asal - Kawasan Asal - Provinsi Tujuan - Kabupaten/Kota Tujuan - Kawasan Tujuan - Jenis HPM - Jumlah - Telah memenuhi persyaratan teknis kesehatan hewan daerah tujuan yang disesuaikan dengan Rekomendasi masukan dan Rekomendasi Pengeluaran Sertifikat Veteriner berlaku untuk 1 (satu) kali pengiriman atau 30 (tiga puluh) hari.

4. Persyaratan khusus 

Persyaratan kesehatan HPM diberikan berdasarkan:

1. pemeriksaan fisik; dan/atau Persyaratan Teknis Produk, Proses, dan/atau Jasa

2. hasil uji dari Laboratorium Veteriner yang terakreditasi atau yang ditetapkan oleh Menteri.

3. Status Daerah, dari:

a. Bebas ke Bebas, Tertular atau Terduga

b. Terduga ke Terduga atau Tertular

c. Tertular ke Tertular

d. Tertular ke bebas atau Terduga sepanjang dapat memenuhi persyaratan teknis kesehatan hewan berdasarkan kajian risiko dari Pejabat Otoritas Veteriner Kabupaten/Kota, Provinsi, Kesehatan Hewan, atau Kesehatan Masyarakat Veteriner.  Status dan situasi ditetapkan oleh Direktur Jenderal Peternakan dan Kesehatan Hewan atas nama Menteri Pertanian dan didasarkan pada rekomendasi Pejabat Otoritas Veteriner Nasional. Status dan situasi tiap daerah dan Kawasan diumumkan melalui website Pemerintah dan/atau Pemerintah Daerah.

Hasil uji Laboratorium Veteriner dikecualikan untuk:

a. HPM yang berasal dari Daerah Bebas penyakit hewan menular tertentu; dan/atau

b. Surat Rekomendasi Pemasukan yang tidak mempersyaratkan hasil uji laboratorium dalam persyaratan teknis kesehatan hewan.

Lalu lintas HPM dilarang apabila suatu Daerah Tertular dengan situasi wabah.

Pelarangan lalu lintas hanya untuk:

a. hewan rentan terhadap kejadian penyakit hewan;

b. produk hewan yang berpotensi menyebarkan penyakit;

c. media biologis yang rentan terhadap kejadian penyakit hewan; atau

d. media mekanis yang belum dilakukan desinfeksi

 

5. Sarana Lalu lintas HPM meliputi:

a. Pemasukan HPM ke kabupaten/kota penerima dari kabupaten/kota pengirim dalam satu provinsi;

b. Pemasukan HPM ke provinsi penerima dari provinsi pengirim;

c. Pengeluaran HPM dari provinsi pengirim; dan/atau

d. Pemasukan atau pengeluaran antar Kawasan dalam satu kabupaten/kota.

6. Penilaian Kesesuaian dan Pengawasan 

Penilaian kesesuaian 

Penilaian kesesuaian dilakukan melalui verifikasi terhadap pemenuhan atas persyaratan umum dan khusus oleh Pejabat Otoritas Veteriner Kabupaten/Kota atau Provinsi pengirim dan Kabupaten/Kota atau Provinsi penerima sesuai kewenanganya.

Pengawasan Pengawasan lalu lintas HPM dilakukan oleh:

a. dinas kabupaten/kota di dalam daerah kabupaten/kota;

b. dinas provinsi di perbatasan provinsi; dan/atau

c. dinas provinsi di dalam daerah provinsi. 

Pengawasan di perbatasan provinsi dilakukan di Pos Pemeriksaan Kesehatan Hewan (check point). Pengawasan dapat dilakukan di tempat peredaran, penyimpanan, dan/atau pemeliharaan hewan.

Pos Pemeriksaan Kesehatan Hewan harus:

a. dipimpin oleh Dokter Hewan atau Paramedik Veteriner; dan

b. dilengkapi dengan sarana prasarana. Sarana dan prasarana terdiri atas bangunan, tempat parkir, peralatan pemeriksaan fisik, dan tindakan biosekuriti.

Pengawasan dilakukan dengan pemeriksaan persyaratan:

a. dokumen; dan

b. pemeriksaan fisik.

Pemeriksaan persyaratan dokumen meliputi:

a. Sertifikat Veteriner dan/atau surat keterangan hasil uji Laboratorium Veteriner;

b. Surat Rekomendasi Pemasukan dari Otoritas Veteriner provinsi penerima.

Selain pemeriksaan persyaratan dokumen, pemeriksaan dilakukan terhadap:

a. keaslian dan kesesuaian Sertifikat Veteriner dengan surat keterangan hasil uji;

b. keaslian dan kesesuaian Sertifikat Veteriner dengan Surat Rekomendasi Pemasukan dari provinsi penerima; dan

c. kesesuaian Sertifikat Veteriner dengan fisik.

Pemeriksaan fisik dilakukan melalui pemeriksaan organoleptik. HPM dilakukan pemeriksaan persyaratan di Pos Pemeriksaan Kesehatan Hewan dengan ketentuan:

a. dimasukkan ke provinsi penerima dalam hal telah memenuhi persyaratan dengan menerbitkan Surat Pelepasan;

b. ditahan paling lama 14 (empat belas) hari dalam hal belum memenuhi persyaratan dengan menerbitkan surat penahanan.

c. Ditolak atau dimusnahkan dalam hal tidak memenuhi persyaratan dengan menerbitkan surat penolakan atau pemusnahan

Biaya pemeliharaan selama masa penahanan, penolakan dan pemusnahan dibebankan kepada pemilik HPM. HPM yang dilalulintaskan melewati provinsi yang bukan provinsi penerima tidak dilakukan pengawasan sepanjang tidak dilakukan bongkar muat. Penerbitan persyaratan umum, persyaratan khusus atau persyaratan teknis produk, proses, dan/atau jasa, penilaian kesesuaian dan pengawasan dilaksanakan secara daring dengan menggunakan ISIKHNAS.

 

Sumber:

Peraturan Menteri Pertanian Republik Indonesia nomor 15 tahun 2021 tentang Standar Kegiatan Usaha dan Standar Produk pada Penyelenggaraan Perizinan Berusaha Berbasis Risiko Sektor Pertanian

Rabies pada Hewan

Hewan apa yang terkena rabies?

Rabies hanya menyerang mamalia. Mamalia adalah hewan berdarah panas dengan bulu. Manusia juga mamalia. Burung, ular, dan ikan bukan mamalia, jadi hewab tersbut tidak bisa tertular rabies dan hewan tersebut tidak bisa menularkan rabies kepada Anda. Tetapi mamalia apa pun bisa terkena rabies, termasuk manusia. Sementara rabies jarang terjadi pada orang di Amerika Serikat, dengan hanya 1 sampai 3 kasus dilaporkan setiap tahun, sekitar 55.000 orang Amerika mendapatkan profilaksis pasca pajanan (PEP) setiap tahun untuk mencegah infeksi rabies setelah digigit atau dicakar oleh hewan yang terinfeksi atau diduga terinfeksi.

Di Amerika Serikat, lebih dari 90% kasus rabies pada hewan yang dilaporkan terjadi di alam liar. Satwa liar yang paling sering membawa rabies di Amerika Serikat adalah rakun, sigung, kelelawar, dan rubah. Kontak dengan kelelawar yang terinfeksi adalah penyebab utama kematian manusia akibat rabies di negara ini; 7 dari 10 orang Amerika yang meninggal karena rabies di AS terinfeksi oleh kelelawar. Orang mungkin tidak mengenali goresan atau gigitan kelelawar, yang ukurannya bisa lebih kecil dari bagian atas penghapus pensil, tetapi kontak jenis hewan ini masih dapat menyebarkan rabies.

Hewan peliharaan (seperti kucing dan anjing) dan ternak (seperti sapi dan kuda) juga bisa terkena rabies. Hampir semua hewan peliharaan dan ternak yang terkena rabies belum pernah divaksinasi atau tidak divaksinasi ulang vaksinasi rabies. Sebagian besar hewan peliharaan mendapatkan rabies dari kontak dengan satwa liar.

Karena undang-undang yang mewajibkan anjing untuk divaksinasi rabies di Amerika Serikat, anjing hanya sekitar 1% dari hewan rabies yang dilaporkan setiap tahun di negara ini. Namun, rabies anjing tetap umum di banyak negara. Paparan anjing rabies masih menjadi penyebab hampir semua kematian manusia akibat rabies di seluruh dunia. Paparan anjing rabies di luar AS adalah penyebab utama kedua kematian rabies di Amerika.

Bagaimana Anda bisa tahu jika seekor hewan menderita rabies?

Anda tidak dapat mengetahui apakah seekor hewan menderita rabies hanya dengan melihatnya—satu-satunya cara untuk mengetahui dengan pasti apakah seekor hewan (atau seseorang) menderita rabies adalah dengan melakukan pengujian laboratorium. Namun, hewan dengan rabies dapat bertindak aneh. Beberapa mungkin agresif dan mencoba menggigit Anda atau hewan lain, atau mereka mungkin ngiler lebih dari biasanya. (Ini kadang-kadang ditampilkan di film sebagai hewan “berbusa di mulut.”) Tetapi tidak semua hewan dengan rabies akan agresif atau mengeluarkan air liur. Hewan lain mungkin bertindak pemalu atau malu-malu, dan hewan liar mungkin bergerak lambat atau berperangai jinak. Anda mungkin dapat dengan mudah mendekatinya. Karena itu bukan cara hewan liar biasanya bertindak, Anda harus ingat bahwa ada sesuatu yang salah. Beberapa hewan mungkin tidak menunjukkan tanda-tanda rabies. Sangat penting untuk meninggalkan satwa liar, termasuk bayinya.

Hal terbaik yang harus dilakukan adalah tidak pernah memberi makan atau mendekati satwa liar. Hati-hati dengan hewan peliharaan yang tidak Anda kenal. Jika Anda melihat anjing atau kucing liar, jangan dibelai. Ini sangat penting jika Anda bepergian di negara di mana rabies pada anjing biasa terjadi. Dan jika ada hewan yang bertingkah aneh, hubungi petugas kesehatan hewan setempat untuk meminta bantuan. Beberapa hal yang harus dicari adalah:

• penyakit umum

• masalah menelan

• banyak saliva keluar dari mulut atau air liur

• binatang yang menggigit apa saja

• hewan yang tampak lebih jinak dari yang Anda duga

• hewan yang kesulitan bergerak atau bahkan lumpuh

• kelelawar yang ada di tanah

 

Bagaimana cara mencegah rabies pada hewan?

Ada beberapa hal yang dapat Anda lakukan untuk melindungi hewan peliharaan Anda dari rabies. Ini termasuk memastikan hewan peliharaan Anda mendapatkan vaksin rabies secara teratur, menjauhkan hewan peliharaan dari satwa liar, memandulkan atau mengebiri hewan peliharaan, dan memanggil petugas kesehatan hewan untuk mengeluarkan hewan liar dari lingkungan Anda. Banyak negara bagian juga memvaksinasi hewan liar (terutama rakun) untuk mencegah penyebaran rabies. Alih-alih mencoba menangkap setiap hewan dan mencobanya, mereka menggunakan jenis vaksin makanan khusus yang bekerja saat hewan memakannya. Makanan diletakkan di tempat yang kemungkinan besar akan ditemukan oleh hewan. Terkadang pesawat terbang digunakan untuk membawa makanan ke tempat-tempat yang sulit dijangkau dengan berjalan kaki atau dengan truk.

Kapan Anda harus ke dokter?

Jika Anda telah melakukan kontak dengan satwa liar atau hewan asing, terutama jika Anda pernah digigit atau dicakar, Anda harus berbicara dengan profesional kesehatan atau kesehatan masyarakat untuk menentukan risiko rabies atau penyakit lainnya. Salah satu faktor penting dalam memutuskan apakah Anda harus menerima vaksinasi rabies (profilaksis pasca pajanan) adalah apakah hewan yang Anda terpajan dapat ditemukan dan ditahan untuk observasi gejala klinisnya. Keputusan tidak boleh ditunda.

Sumber:

https://www.cdc.gov/rabies/animals/index.html