Hand Sanitizer Ditinjau pada Aspek Formulasi, Efek Merugikan, dan Peraturan Perundangan
I. LATAR BELAKANG
Munculnya pandemi COVID-19 (Coronavirus
Disease-2019) telah meningkat menjadi masalah kesehatan masyarakat dunia
yang signifikan dan menyebabkan penggunaan disinfektan tangan secara ekstensif
karena sifat penyakitnya yang menular. Ada total 3,8 juta kasus yang dilaporkan
mempengaruhi lebih dari 200 negara di seluruh dunia pada 7 Mei 2020 [1,2].
COVID-19 adalah penyakit menular yang disebabkan oleh coronavirus 2
(SARS-CoV-2) sindrom pernapasan akut yang parah, yang dapat bertahan dan tetap
menular di permukaan hingga 9 hari [3,4]. Studi baru-baru ini mengungkapkan
bahwa penularan SARS-CoV-2 dimungkinkan dalam bentuk aerosol dan fomite, dan
virus dapat tetap hidup dan menular di aerosol selama berjam-jam dan di
permukaan hingga berhari-hari, tergantung pada inokulum yang dilepaskan [5].
Oleh karena itu, sangat penting untuk menghentikan rantai penularan virus
melalui isolasi kontak dan alat pengendalian infeksi yang ketat [6]. Setelah
masker wajah, kebersihan tangan yang tepat adalah yang paling penting karena
tangan dapat terkontaminasi dari kontak langsung dengan tetesan pernapasan
pasien dari batuk dan bersin atau kontak tidak langsung melalui permukaan, yang
kemudian dapat memfasilitasi penularan dan penyebaran penyakit [7–9] . Wabah
sindrom pernafasan akut parah (SARS) tahun 2003 disebabkan oleh virus corona
manusia baru (CoV) (SARS-CoV) yang dapat bertahan hidup di permukaan selama 24
hingga 72 jam [10]. Studi tentang pengaturan wabah SARS-CoV menunjukkan bahwa
menyediakan fasilitas cuci tangan yang efisien mengurangi penularan [11].
Mengingat bahaya yang ditimbulkan oleh penyakit ini, Pusat Pengendalian dan
Pencegahan Penyakit (CDC), Amerika Serikat telah mempromosikan dan mendorong
kebersihan tangan melalui cuci tangan atau penggunaan pembersih tangan [12].
Disinfektan tangan tersedia secara komersial dalam berbagai jenis dan bentuk
seperti sabun antimikroba, pembersih tangan berbasis air atau alkohol, paling
sering digunakan di lingkungan rumah sakit. Berbagai jenis sistem pengiriman
juga diformulasikan — misalnya, sabun cuci, busa, atau tisu basah (Gambar 1).
Organisasi Kesehatan Dunia (WHO) merekomendasikan pembersih tangan berbasis alkohol (ABHS) sejalan dengan keuntungan
terbukti dari tindakan cepat mereka dan spektrum luas aktivitas mikrobisidal
yang menawarkan perlindungan terhadap bakteri dan virus. Namun, efektivitas
terhadap virus non-envelope masih bisa diperdebatkan dan dipertanyakan
[7,13-18].
Sampai saat ini, produk pembersih tangan yang paling efektif adalah
formulasi berbasis alkohol yang mengandung 62% - 95% alkohol karena mampu
mendenaturasi protein mikroba dan menonaktifkan virus [19,20]. Ada beberapa
tantangan dan kekhawatiran sehubungan dengan formulasi ini dalam hal bahaya
kebakaran dan toksisitas kulit karena kandungan alkohol yang tinggi [21].
Tinjauan sistemik ini bertujuan untuk menyelidiki kisaran pembersih tangan yang
tersedia dan keefektifannya terhadap virus korona manusia serta aspek
formulasi, efek samping, dan rekomendasi untuk memperbaiki formulasi pembersih
tangan saat ini.
II. METODE
Studi ini dilakukan sesuai dengan rekomendasi PRISMA [22]. Kami secara
sistematis meninjau literatur yang tersedia di PubMed dan Google Cendekia,
hingga tahun 2020. Istilah pencarian yang kami gunakan adalah pembersih tangan
DAN alkohol DAN pengobatan DAN cuci tangan DAN virucide DAN bakterisida DAN
(menyembuhkan ATAU kegagalan ATAU kematian). Pencarian manual juga dilakukan.
Kami tidak menetapkan batas tahun, dan bahasa Inggris adalah satu-satunya
bahasa yang kami batasi. Pemilihan studi berdasarkan pengobatan yang efektif
menghasilkan potensi pemberantasan patogen. Data yang diekstrak dari masing-masing
studi terdiri dari karakteristik utama studi, seperti nama penulis pertama,
tahun, desain studi, dan negara. Dari banyak laporan, kami memilih artikel
berdasarkan agen disinfektan tangan dan potensi hasil yang sesuai untuk pandemi
virus saat ini. Data diekstraksi oleh dua penulis berdasarkan penyaringan judul
dan abstrak yang diperoleh dari database PubMed dan Google Scholar. Penulis
lain telah memeriksa materi untuk memenuhi kriteria pekerjaan studi.
III. HASIL DAN PEMBAHASAN
3.1. Jenis Pembersih Tangan
Pembersih tangan secara umum dapat dikategorikan menjadi dua kelompok:
berbasis alkohol atau bebas alkohol (Gambar 2). ABHS mungkin mengandung satu
atau lebih jenis alkohol, dengan atau tanpa eksipien dan humektan lain, untuk
diterapkan pada tangan untuk menghancurkan mikroba dan untuk sementara waktu
menekan pertumbuhannya [23]. ABHS dapat secara efektif dan cepat mengurangi
mikroba yang menutupi spektrum germisida yang luas tanpa perlu air atau
mengeringkan dengan handuk. Namun demikian, ada beberapa kekurangan dengan
efektivitas ABHS, seperti efek antimikroba berumur pendek dan aktivitas lemah
melawan protozoa, beberapa virus non-envelope (non-lipofilik) dan spora bakteri
[23].
Di sisi lain, pembersih bebas alkohol memanfaatkan bahan kimia dengan sifat
antiseptik untuk memberikan efek antimikroba. Bahan kimia ini memiliki cara
kerja dan fungsi yang berbeda sesuai dengan kelompok fungsional kimianya (Tabel
1) [24-26]. Karena tidak mudah terbakar dan sering digunakan pada konsentrasi
rendah, bahan ini relatif lebih aman digunakan pada anak-anak dibandingkan
dengan ABHS.
ABHS tersedia dalam berbagai bentuk sediaan, yaitu gel, liquid, dan
foam. Karena setiap jenis memiliki karakteristiknya sendiri, sebuah penelitian
dilakukan untuk memahami dampak pada atribut sensorik yang dapat mempengaruhi
penerimaan pengguna terhadap produk dan pada akhirnya mempengaruhi penggunaan
yang mengarah pada kepatuhan kebersihan tangan [27-29]. Hasil keseluruhan
menunjukkan bahwa gel dan busa lebih diterima secara luas dibandingkan dengan
cairan, terutama dalam hal pegangan, meskipun yang terakhir meninggalkan
perasaan bersih yang tinggi dan membutuhkan waktu yang lebih singkat untuk
mengering [30].
Administrasi Makanan dan Obat Amerika Serikat (USFDA) telah memberikan
daftar agen antiseptik yang memenuhi syarat yang digunakan dalam non-resep
(juga dikenal sebagai over-the-counter
atau OTC) dan tercantum dalam Tabel 2. Daftar ini sangat berguna dalam memilih
antiseptik yang tepat. bahan aktif yang dimaksudkan untuk digunakan oleh
profesional perawatan kesehatan di lingkungan rumah sakit atau situasi
perawatan kesehatan lain di luar rumah sakit [31]. Baru-baru ini, Komite Ahli
Peracikan Farmakope Amerika Serikat (USP) (CMP EC) merekomendasikan tiga
formulasi untuk peracikan pembersih tangan berbasis alkohol untuk digunakan
selama kekurangan yang terkait dengan pandemi COVID-19 dan tercantum dalam
Tabel 3 [32]
ABHS dalam bentuk semprotan yang memicu aliran larutan aerosol
memungkinkan kontak langsung larutan alkohol dengan permukaan target. Namun,
ada beberapa batasan terkait dengan penyemprotan, termasuk penyemprotan
berlebihan, dihirup oleh pasien, dan mudah terbakar. Alkohol siap pakai “Hand
Sanitizing Wipes (HSW)” adalah handuk yang telah dibasahi sebelumnya yang mengandung
disinfektan, antiseptik, surfaktan, dll. Dalam kemasan tertutup yang siap
digunakan untuk desinfeksi topikal. Keuntungan dari HSW adalah menghilangkan
kemungkinan kontaminasi dan transfer patogen akibat penggunaan kembali
towelettes. Namun, waktu penyimpanan yang lebih lama dapat meningkatkan
kemungkinan kehilangan aktivitas antimikroba / viricidal karena kemungkinan
pengikatan bahan aktif ke handuk atau dengan degradasi bahan aktif [33].
3.2. Alkohol dan Sabun
Menjaga tangan tetap bersih adalah langkah mendasar dan penting untuk
menghindari sakit sekaligus membatasi penularan kuman ke orang lain. CDC
merekomendasikan mencuci tangan dengan sabun dan air bila memungkinkan karena
sangat mengurangi jumlah semua jenis mikroba dan kotoran di permukaan kulit
[15,34]. Sabun dan pembersih berbasis alkohol bekerja dengan melarutkan membran
lipid mikroba, sehingga menonaktifkannya (Gambar 3). Dengan demikian, sanitizer
berfungsi sebagai alternatif saat sabun dan air tidak tersedia. Kandungan
alkohol minimum yang disarankan sebesar 60% diperlukan agar dapat memberikan
efek mikrobisidal. Dibandingkan dengan sabun, pembersih berbasis alkohol tidak
menghilangkan semua jenis kuman, termasuk norovirus dan Clostridium difficile,
patogen umum yang dapat menyebabkan diare [35,36]. Meskipun sebagian besar
orang lebih suka menggunakan pembersih karena praktis, dan menganggap bahwa
pembersih mungkin tidak seefektif sabun dalam membunuh kuman, hal ini karena
orang mungkin tidak menggunakan pembersih dalam jumlah yang cukup untuk
membersihkan tangan [37,38 ]. Cairan dapat menguap sebelum digosok secara
merata ke seluruh tangan, oleh karena itu mengurangi keefektifan pembersih
[37,39]. Selain itu, pembersih mungkin tidak bekerja dengan baik saat tangan sangat kotor atau terkontaminasi
bahan kimia berbahaya [40].
Meskipun pembersih tangan mungkin kurang efektif dibandingkan sabun
dalam beberapa situasi, tidak dapat disangkal bahwa ini adalah bentuk
kebersihan tangan yang lebih disukai dalam pengaturan perawatan kesehatan. Penggunaan
pembersih berbasis alkohol dapat meningkatkan kepatuhan petugas kesehatan
terhadap praktik kebersihan tangan karena dapat diakses dengan mudah dan
membutuhkan waktu lebih sedikit. Sekitar 2,5–3 mL cairan (setara dengan dua
pompa dari dispenser) diendapkan di telapak tangan dan digosok ke seluruh
permukaan kedua tangan selama 25–30 detik untuk memaksimalkan kemanjuran
pembersih [41].
3.3. Bahan Farmasi dan Fungsinya
ABHS mengandung etanol, isopropanol, atau n-propanol. Konsentrasi 60%
-95% alkohol menurut volume menunjukkan aktivitas bakterisidal yang optimal
[42,43]. Efek antimikroba alkohol dikaitkan dengan kemampuannya untuk
melarutkan membran lipid dan mengubah sifat protein mikroba. Alkohol memiliki
aktivitas antimikroba spektrum luas terhadap sebagian besar bentuk vegetatif
bakteri (termasuk Mycobacterium tuberculosis), jamur, dan virus yang
menyelimuti (human immunodeficiency virus
[HIV] dan virus herpes simpleks). Namun, mereka tidak efektif melawan spora
bakteri yang paling sering ditemukan pada bahan mentah. Penambahan hidrogen
peroksida (3%) dapat menjadi solusi untuk masalah ini, tetapi penanganan dengan
hati-hati selama produksi diperlukan karena sifat korosifnya [41]. Untuk produk
bebas alkohol, berbagai antiseptik telah menggantikan alkohol sebagai bahan
aktif utama. Mekanisme kerja senyawa alkohol dan non alkohol telah dirangkum
pada Tabel 4 dibawah ini.
3.3.1. Klorheksidin
Mirip dengan alkohol, klorheksidin bekerja dengan mengganggu pengaturan
membran sitoplasma, sehingga menyebabkan pengendapan isi sel [44]. Ini paling
efektif melawan bakteri Gram-positif dan memiliki aktivitas sedang melawan
bakteri Gram-negatif, serta virus yang menyelimuti [44,45]. Karena klorheksidin
bersifat kationik, disarankan untuk menghindari penggunaan produk yang
mengandung klorheksidin dengan sabun alami dan krim tangan yang mengandung agen
pengemulsi anionik karena dapat menyebabkan inaktivasi atau pengendapan
klorheksidin, sehingga mengurangi kemanjurannya [44-46]. Klorheksidin glukonat
0,12% kemungkinan memiliki aktivitas antivirus melawan virus korona seperti
halnya terhadap virus lain [47].
3.3.2. Kloroksilenol
Kloroksilenol adalah agen umum sebagai pengawet kosmetik atau sebagai
agen antimikroba dalam sabun. Efek antimikroba dari kloroksilenol disebabkan
kemampuannya untuk menonaktifkan sistem enzim dan mengubah sintesis dinding sel
pada mikroba. Ini bagus dalam membunuh bakteri dan virus yang diselubungi
tetapi kurang aktif melawan Pseudomonas aeruginosa [48,49].
3.3.3. Yodium / yodium
Yodium pernah menjadi antiseptik efektif yang digunakan untuk desinfeksi
kulit. Dapat menembus dinding sel mikroba dan membentuk kompleks dengan asam
amino atau asam lemak tak jenuh untuk merusak sintesis komponen seluler.
Meskipun demikian, karena berpotensi menyebabkan iritasi dan perubahan warna
kulit, yodium berperan menggantikan yodium sebagai bahan aktif dalam
antiseptik. FDA belum membersihkan cairan kimia pensteril atau disinfektan
tingkat tinggi dengan iodophors sebagai bahan aktif utama [50]. Iodofor adalah
kombinasi yodium, iodida atau triiodida, dan pembawa polimer dengan berat
molekul tinggi seperti polivinil pirolidon. Pembawa ini bertanggung jawab untuk
meningkatkan kelarutan yodium, meningkatkan pelepasan yodium yang
berkelanjutan, dan meminimalkan iritasi kulit [51]. Derajat aktivitas
antimikroba ditentukan berdasarkan jumlah yodium bebas yang ada dalam struktur.
Karena itu, formulasi dengan konsentrasi iodophor yang lebih rendah mungkin
memiliki aktivitas antimikroba yang signifikan juga karena jumlah yodium bebas
cenderung meningkat setelah pengenceran [52].
Baik yodium dan iodophors menunjukkan aktivitas kuman terhadap bakteri
Gram-positif, Gram-negatif, dan pembentuk spora, serta berbagai jamur dan virus
[53-55]. Namun, konsentrasi iodofor yang digunakan dalam antiseptik (misalnya
povidone-iodine 5% -10%) biasanya tidak cukup untuk mencapai aksi sporisida.
Selain itu, formulasi povidone-iodine nasal telah menunjukkan tolerabilitas
yang dapat diterima dan profil risiko / manfaat yang menguntungkan untuk
membantu mengurangi penyebaran COVID-19 perioperatif pada dekolonisasi pasien
[56].
3.3.4. Kuarter
Senyawa Amonium Senyawa amonium kuarter terdiri dari empat gugus alkil
yang terhubung ke atom nitrogen di tengahnya. Contoh tipikal termasuk benzalkonium
klorida, benzetonium klorida, dan setil peridium klorida. Mereka bertindak
dengan mengadsorpsi ke membran sitoplasma, sehingga menyebabkan kebocoran
konstituen. Mereka lebih aktif melawan bakteri Gram-positif dan virus
lipofilik. Aktivitas melawan jamur, mikobakteri, dan basil Gram-negatif relatif
lemah [15].
3.3.5. Triclosan
Pada konsentrasi rendah, triclosan bersifat bakteriostatik karena
efeknya yang berbahaya bagi enzim bakteri yang bertanggung jawab atas komposisi
asam lemak dari dinding dan membran sel. Pada konsentrasi tinggi, triclosan
mengganggu membran bakteri, menyebabkan kematian [8,57,58]. Ini memiliki
aktivitas yang baik melawan bakteri Gram-positif, termasuk Staphylococcus
aureus yang resisten methicillin, Candida spp. dan mikobakteri. Kemanjuran
triclosan dapat dipengaruhi oleh pH, penggunaan emolien, dan sifat ionik dari
formulasi kulit tertentu [58].
Banyak pembersih juga mengandung humektan, misalnya gliserin, dalam
formulasi untuk mengurangi timbulnya kulit kering yang terkait dengan
penggunaan produk berbasis alkohol karena alkohol dapat menghilangkan sebum
yang membantu menjaga kelembapan kulit. Meskipun pewangi dan pewarna
ditambahkan untuk meningkatkan estetika, umumnya tidak disarankan untuk
melakukannya karena risiko reaksi alergi [41,43].
3.4. Fisiologi Kulit Tangan
Kulit terdiri dari tiga lapisan utama: epidermis superfisial (50–100
µm), dermis tengah (≈2 mm), dan hipodermis paling dalam (1–2 mm). Ini merupakan
garis pertahanan pertama melawan serangan mikroorganisme sambil memberikan
perlindungan terhadap dampak mekanis dan mencegah kehilangan air yang
berlebihan dari tubuh.
Fungsi penghalang vital kulit terletak terutama di lapisan epidermis
paling atas, stratum korneum (SC). SC berisi lapisan corneocytes yang dibedakan
secara terminal dari keratinosit yang membentuk lapisan basal epidermis
[15,59]. Corneocytes yang berdekatan saling berhubungan dengan sambungan
membran yang disebut corneodesmosomes untuk meningkatkan kohesi SC [60]. Lipid
yang berasal dari eksositosis badan lamelar selama diferensiasi terminal
keratinosit akan mengisi ruang antar sel antara corneocytes, dan mereka
berperan dalam mempertahankan fungsi penghalang kulit [61]. Lapisan di bawah SC
dikenal sebagai epidermis berlapis keratin. Ini terdiri dari melanosit yang
menghasilkan melanin, pigmen kulit yang memberi warna pada kulit dan melindungi
kulit dari radiasi ultraviolet. Selain itu, sel Langerhan, yang terlibat dalam
respon imun dan sel Merkel yang bertanggung jawab atas sensasi sentuhan ringan,
juga dapat ditemukan di dalam lapisan ini [62,63].
Meskipun kulit berfungsi sebagai penghalang yang melindungi seseorang
dari mikroorganisme berbahaya, kulit menjadi tuan rumah bagi beragam bakteri
menguntungkan seperti Staphylococcus epidermis, Staphylococcus aureus,
Micrococcus spp., Propionibacterium spp. dan Corynebacterium spp. [64,65].
Bakteri ini dapat membantu mencegah kolonisasi mikroba patogen dengan bersaing
dengan mereka untuk mendapatkan nutrisi atau menstimulasi sistem pertahanan
kulit. Dalam keadaan normal, mereka menunjukkan patogenisitas yang rendah.
Namun, ketika distribusi flora kulit terganggu, misalnya, karena penggunaan
antibiotik topikal jangka panjang atau sering mencuci tangan, mereka dapat
menjadi virulen [66,67]. Untuk mengurangi kejadian infeksi, keseimbangan
mikrobiota dipulihkan dan dipertahankan melalui regenerasi kulit yang konstan.
Keseluruhan proses memakan waktu sekitar 28 hari, dimulai dari pembelahan
mitosis epitel basal hingga deskuamasi. Ketika keratinosit mati di SC terkelupas,
mikroba yang berada di permukaan kulit akan hilang. Proses berkelanjutan ini
secara signifikan membatasi invasi bakteri sambil mencapai pertumbuhan yang
seimbang di antara populasi mikroba.
3.5. Khasiat Hand Sanitizer Berbasis Alkohol
melawan Coronavirus
Virus SARS-CoV-2 disebut karena kemiripan urutan genomnya dengan SARS
Coronavirus (SARS-CoV) [68,69]. CoVs milik genus Beta coronavirus yang sama,
berbagi morfologi serupa dalam bentuk amplop, virus RNA untai tunggal positif
[70,71]. Virus ini dapat dinonaktifkan dengan pelarut lipid tertentu seperti
etanol, eter (75%), disinfektan yang mengandung klorin, dan kloroform, kecuali
klorheksidin [70]. Etil alkohol, pada konsentrasi 60% -80%, adalah agen
viricidal kuat yang menonaktifkan semua virus lipofilik (misalnya, virus
influenza, herpes, dan vaksinia) dan banyak virus hidrofilik (misalnya,
adenovirus, enterovirus, rhinovirus, dan rotavirus tetapi bukan hepatitis Virus
(HAV) atau poliovirus) [32]. The 2015 WHO Model List of Essential
merekomendasikan etanol pada 80% (v / v) dan isopropyl alcohol pada 75% (v / v)
di bawah kategori 'Disinfektan: Pembersih tangan berbasis alkohol' [72]. Etanol
(60% -85%) tampaknya paling efektif melawan virus dibandingkan dengan
isopropanol (60% -80%) dan n-propanol (60% -80%) [23]. Studi yang dilakukan
dengan formulasi berbasis alkohol yang direkomendasikan WHO menunjukkan efek
virucidal yang kuat terhadap patogen yang muncul, termasuk ZIKV, EBOV,
SARS-CoV, dan MERS-CoV [73]. Studi lain yang dilakukan di Jerman menemukan
bahwa etanol dengan konsentrasi 42,6% (w / w) mampu menghancurkan virus corona
SARS dan virus corona MERS dalam waktu 30 detik [74]. Kemanjuran berbagai
pembersih berbasis alkohol pada konsentrasi yang berbeda juga diteliti dalam
beberapa penelitian, seperti yang ditunjukkan pada Tabel 5.
3.6. Efek Merugikan dari Pembersih Berbasis Alkohol atau Sabun Cuci
Tangan
Reaksi kulit yang paling sering dilaporkan dengan penggunaan ABHS adalah
dermatitis kontak iritan (ICD) dan dermatitis kontak alergi (ACD) [76,77].
Gejala ICD dapat berkisar dari ringan hingga melemahkan dengan manifestasi
seperti kekeringan, pruritus, eritema dan perdarahan, jika parah. Adapun ACD,
gejalanya bisa ringan dan terlokalisasi atau parah dan umum, dengan bentuk ACD
yang paling parah dimanifestasikan sebagai gangguan pernapasan atau gejala
anafilaksis lainnya [78,79]. Terkadang, sulit untuk membedakan antara ICD dan
ACD karena tumpang tindih dan kesamaan gejala. Produk kebersihan tangan seperti
pembersih dan sabun dapat merusak kulit melalui beberapa mekanisme: denaturasi
protein stratum korneum, perubahan lipid antarsel, penurunan kohesi kornea dan
penurunan kapasitas pengikatan air stratum korneum [80,81]. Kekhawatiran
terbesar adalah penipisan penghalang lipid, terutama dengan paparan berulang
deterjen pengemulsi lipid dan alkohol pelarut lipid karena dapat menembus lebih
dalam ke lapisan kulit dan mengubah flora kulit, mengakibatkan kolonisasi lebih
sering oleh bakteri [82– 84]. Urutan penurunan frekuensi ICD termasuk sabun
cuci tangan adalah produk berbahan dasar iodophors, chlorhexidine,
chloroxylenol, triclosan dan alkohol. Di antara formulasi berbasis alkohol,
etanol memiliki sifat iritan kulit paling sedikit dibandingkan dengan
n-propanol dan isopropanol [21]. Namun, ada faktor lain yang berkontribusi yang
meningkatkan risiko ICD seperti kurangnya penggunaan emolien tambahan, gesekan
karena pemakaian dan pelepasan sarung tangan dan kelembaban relatif yang rendah
[85-87]. ABHS juga memiliki efek pengeringan pada tangan yang selanjutnya dapat
menyebabkan kulit pecah-pecah atau mengelupas [88-90].
Di sisi lain, ACD disebabkan oleh reaksi alergi terhadap agen tertentu
dalam formulasi seperti iodophors, chlorhexidine, triclosan, chloroxylenol dan
alkohol [91]. Individu dengan reaksi alergi terhadap sediaan berbasis alkohol
mungkin memiliki alergi yang sebenarnya terhadap alkohol atau alergi terhadap
pengotor, metabolit aldehida atau eksipien lain seperti wewangian, benzil
alkohol, paraben atau benzalkonium klorida [29,92,93].
3.7. Rekomendasi untuk Meminimalkan Efek
Merugikan Kulit
Efek merugikan yang disebabkan oleh pembersih atau sabun cuci tangan
dapat dengan mudah dicegah dengan mengidentifikasi pemicunya dan diatasi dengan
tindakan yang tepat menggunakan salah satu atau kombinasi metode berikut:
memilih produk dengan agen yang tidak terlalu mengiritasi, melembabkan kulit
setelah sanitasi tangan dan menghindari kebiasaan yang dapat menyebabkan
iritasi. atau memperburuk iritasi kulit [29,41,93,94]. Ketika pembersihan
tangan yang sering diharapkan, misalnya, di antara petugas kesehatan, lebih
disukai untuk memilih produk yang memiliki keseimbangan yang baik antara
keefektifan, keamanan dan kompatibilitas dengan semua jenis kulit. Kekhawatiran
tentang pengeringan dan efek iritan alkohol atau sabun antiseptik tertentu
dapat menghambat penerimaan dan penggunaan akhir dari sediaan ini [52]. Oleh
karena itu, untuk mengurangi masalah ini, ABHS yang mengandung humektan atau
emolien dapat digunakan [95]. Dalam beberapa tahun terakhir, lotion antiseptik
berbasis air baru juga sedang dipelajari seperti penggunaan benzethonium
chloride, yang tidak hanya membahas masalah efek samping kulit tetapi juga
memperluas kemanjuran terhadap virus dan mengatasi kekhawatiran tentang mudah
terbakar yang terkait dengan ABHS konvensional [76]. Suhu dan kelembapan
dianggap sebagai kontributor signifikan terhadap faktor risiko dermatitis.
Retensi kelembaban kulit lebih lama di negara tropis dan tempat-tempat dengan
kelembaban relatif lebih tinggi dibandingkan dengan lingkungan yang dingin dan
kering [96]. Aspek ini membutuhkan berbagai kebutuhan emolien yang berkenaan
dengan kondisi lingkungan dan iklim masing-masing menurut lokasi geografis.
Beberapa individu, seperti lansia dan petugas kesehatan yang sering memakai
sarung tangan oklusif, lebih rentan terhadap kulit kering. Oleh karena itu,
merupakan praktik yang baik bagi individu berisiko tinggi untuk menggunakan
pelembab yang mengandung humektan, lemak atau minyak untuk meningkatkan
kelembapan kulit dan meningkatkan fungsi pelindung kulit [96].
3.8.
Rekomendasi Kebersihan Tangan dari Peraturan CDC (AS), WHO dan Malaysia
Membersihkan tangan
dengan benar dengan mencuci tangan atau menggunakan pembersih berbasis alkohol
adalah salah satu tindakan paling penting untuk mencegah penularan langsung
atau tidak langsung COVID-19 karena dapat mengurangi jumlah virus SARS-CoV-2 yang
layak pada tangan yang terkontaminasi. Ada lima contoh yang menyerukan
kebersihan tangan: sebelum dan sesudah melakukan kontak langsung dengan pasien,
sebelum menangani perangkat invasif untuk perawatan pasien, setelah terpapar
cairan atau ekskresi tubuh, setelah kontak dengan benda-benda termasuk
peralatan medis yang berada di dekat pasien, dan sebelum memulai tugas aseptik
apapun [96]. CDC merekomendasikan mencuci tangan dengan sabun dan air jika
memungkinkan karena mencuci tangan mengurangi jumlah semua jenis kuman dan
bahan kimia di tangan [97]. Jika sabun dan air tidak tersedia, menggunakan
pembersih tangan dengan konsentrasi akhir setidaknya 60% etanol atau 70%
isopropil alkohol menonaktifkan virus yang secara genetik terkait dengan, dan
dengan sifat fisik yang mirip dengan, COVID-19. Tindakan mencuci tangan secara
mekanis dapat menghilangkan mikroorganisme, tetapi menghilangkan patogen yang
menetap lebih efektif bila tangan dicuci dengan sediaan yang mengandung agen
anti-mikroba [96]. Menurut Kebijakan dan Prosedur CDC, WHO dan Pengendalian
Infeksi oleh Kementerian Kesehatan Malaysia, durasi yang disarankan untuk
seluruh prosedur cuci tangan berkisar antara 40 hingga 60 detik dengan
menggunakan teknik standar 7 langkah. Relatif, pembersih yang mengandung
setidaknya 60% alkohol lebih efektif dalam menghancurkan mikroorganisme
daripada mencuci tangan dengan sabun anti-mikroba karena kemampuannya untuk
menonaktifkan dan menghancurkan mikroba [96]. Namun, perlu dicatat bahwa ABHS
mungkin tidak efektif jika tangan terlihat kotor, kotor atau berminyak, jadi
mencuci tangan dengan sabun dan air lebih disukai dalam keadaan ini. Durasi
untuk menggosok pembersih ke seluruh permukaan tangan kira-kira 20 sampai 30
detik [96].
IV.
Kesimpulan dan Rekomendasi
1. Kebersihan
tangan sangat penting karena
dapat dengan mudah terkontaminasi dari kontak langsung dengan tetesan
mikroorganisme di udara dari batuk dan bersin. Khususnya dalam situasi seperti
wabah pandemi, sangat penting untuk menghentikan rantai penularan virus dengan
praktik sanitasi tangan yang benar. Ini dapat dicapai dengan isolasi kontak dan
alat pengendalian infeksi yang ketat seperti menjaga kebersihan tangan yang
baik di lingkungan rumah sakit dan di tempat umum.
K Keberhasilan sanitasi tangan
semata-mata bergantung pada penggunaan agen desinfektan tangan yang efektif
yang diformulasikan dalam berbagai jenis dan bentuk seperti sabun antimikroba,
pembersih tangan berbasis air atau alkohol, yang belakangan digunakan secara
luas di lingkungan rumah sakit. Hingga saat ini, sebagian besar produk
pembersih tangan yang efektif adalah formulasi berbasis alkohol yang mengandung
62% -95% alkohol karena dapat mengubah sifat protein mikroba dan kemampuan
untuk menonaktifkan virus.
2. Data yang tersedia di Pubmed dapat digunakan
untuk penyelidikikan berbagai pembersih tangan yang tersedia dan efektivitasnya
serta aspek formulasi, efek samping, dan rekomendasi untuk meningkatkan
efisiensi dan keamanan formulasi.
3. Dapat disimpulkan khasiat pembersih tangan
berbahan dasar alkohol untuk melawan virus corona.
4. Kebersihan
tangan yang benar adalah salah satu strategi pengendalian infeksi yang penting
karena tidak dapat disangkal dapat menurunkan kemungkinan penularan
mikroorganisme secara langsung atau tidak langsung.
5. Penggunaan
ABHS menjadi lebih umum karena tindakan cepat dan efisiensinya dalam membunuh
mikroorganisme, terutama ketika mencuci tangan menggunakan sabun dan air tidak
praktis atau tidak nyaman.
6. Beberapa
situasi di mana mencuci tangan lebih disukai karena ABHS kurang efektif ketika
tangan terlihat kotor atau bernoda dan tidak dapat menutupi jenis patogen
tertentu.
7. Sangat
penting untuk memilih ABHS dengan jumlah alkohol yang sesuai dan mempraktikkan
teknik kebersihan tangan yang benar saat membersihkan tangan untuk memastikan
semua mikroorganisme terbunuh secara efektif.
DAFTAR PUSTAKA
1.
COVID-19 Coronavirus 2019-nCov Statistics Update (Live): 4,122,912 Cases and
280,337 Deaths. Available online: https://virusncov.com/ (accessed on 8 May
2020).
2. Situation Update Worldwide, as of 7 May 2020. Available online:
https://www.ecdc.europa.eu/en/ geographical-distribution-2019-ncov-cases
(accessed on 7 May 2020).
3.
Kampf, G.; Todt, D.; Pfaender, S.; Steinmann, E. Persistence of coronaviruses
on inanimate surfaces and their inactivation with biocidal agents. J. Hosp.
Infect. 2020, 104, 246–251. [CrossRef] [PubMed]
4.
Chan, J.F.W.; Yuan, S.; Kok, K.H.; To, K.K.W.; Chu, H.; Yang, J.; Xing, F.;
Liu, J.; Yip, C.C.Y.; Poon, R.W.S.; et al. A familial cluster of pneumonia
associated with the 2019 novel coronavirus indicating person-to-person
transmission: A study of a family cluster. Lancet 2020, 395, 514–523.
[CrossRef]
5.
Van Doremalen, N.; Bushmaker, T.; Morris, D.H.; Holbrook, M.G.; Gamble, A.;
Williamson, B.N.; Tamin, A.; Harcourt, J.L.; Thornburg, N.J.; Gerber, S.I.; et
al. Aerosol and Surface Stability of SARS-CoV-2 as Compared with SARS-CoV-1. N.
Engl. J. Med. 2020, 382, 1564–1567. [CrossRef] [PubMed]
6.
Thomas, Y.; Boquete-Suter, P.; Koch, D.; Pittet, D.; Kaiser, L. Survival of
influenza virus on human fingers. Clin. Microbiol. Infect. 2014, 20, O58–O64.
[CrossRef] [PubMed]
7.
Seto, W.H.; Tsang, D.; Yung, R.W.H.; Ching, T.Y.; Ng, T.K.; Ho, M.; Ho, L.M.;
Peiris, J.S.M. Advisors of Expert SARS group of Hospital Authority
Effectiveness of precautions against droplets and contact in prevention of
nosocomial transmission of severe acute respiratory syndrome (SARS). Lancet
2003, 361, 1519–1520. [CrossRef]
8.
Kampf, G.; Kramer, A. Epidemiologic background of hand hygiene and evaluation
of the most important agents for scrubs and rubs. Clin. Microbiol. Rev. 2004,
17, 863–893. [CrossRef]
9.
Hare, R.-M. Preferences of Possible People. In Preferences; Fehige, C., Ed.; W.
de Gruyter: Berlin, Germany, 1998; Volume 29, pp. 399–405.
10.
Hulkower, R.L.; Casanova, L.M.; Rutala, W.A.; Weber, D.J.; Sobsey, M.D.
Inactivation of surrogate coronaviruses on hard surfaces by health care
germicides. Am. J. Infect. Control 2011, 39, 401–407. [CrossRef]
11.
Yu, I.T.; Xie, Z.H.; Tsoi, K.K.; Chiu, Y.L.; Lok, S.W.; Tang, X.P.; Hui, D.S.;
Lee, N.; Li, Y.M.; Huang, Z.T.; et al. Why Did Outbreaks of Severe Acute
Respiratory Syndrome Occur in Some Hospital Wards but Not in Others? Clin.
Infect. Dis. 2007, 44, 1017–1025. [CrossRef]
12.
Centers for Disease Control and Prevention. Prevention of Coronavirus Disease
2019 (COVID-19). Available online:
https://www.cdc.gov/coronavirus/2019-ncov/prepare/prevention.html (accessed on
8 May 2020).
13.
Manocha, S.; Walley, K.R.; Russell, J.A. Severe acute respiratory distress
syndrome (SARS): A critical care perspective. Crit. Care Med. 2003, 31,
2684–2692. [CrossRef]
14.
Fendler, E.; Groziak, P. Efficacy of Alcohol-Based Hand Sanitizers Against
Fungi and Viruses. Infect. Control Hosp. Epidemiol. 2002, 23, 61–62. [CrossRef]
15. Gerberding J.L., Fleming
M.W., Snider D.E., Jr., Thacker S.B., Ward J.W., Hewitt S.M., Wilson R.J.,
Heilman M.A., Doan Q.M. Morbidity and
Mortality Weekly Report Guideline for Hand Hygiene in Health-Care Settings. Volume 51 Centers for Disease Control; Atlanta,
GA, USA: 2002. Recommendations of the Healthcare Infection Control Practices
Advisory Committee and the HICPAC/SHEA/APIC/IDSA Hand Hygiene Task Force. [Google Scholar]
16. Ionidis G., Hübscher J.,
Jack T., Becker B., Bischoff B., Todt D., Hodasa V., Brill F.H.H., Steinmann
E., Steinmann J. Development and virucidal activity of a novel alcohol-based
hand disinfectant supplemented with urea and citric acid. BMC Infect. Dis. 2016;16:77. doi:
10.1186/s12879-016-1410-9. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
17. Ansari S.A., Springthorpe
V.S., Sattar S.A., Rivard S., Rahman M. Potential role of hands in the spread
of respiratory viral infections: Studies with human parainfluenza virus 3 and
rhinovirus 14. J. Clin. Microbiol. 1991;29:2115–2119. doi: 10.1128/JCM.29.10.2115-2119.1991. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
18. Sattar S.A. Microbicides and
the environmental control of nosocomial viral infections. J. Hosp. Infect. 2004;56:64–69. doi:
10.1016/j.jhin.2003.12.033. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
19. Dixit A., Pandey P., Mahajan
R., Dhasmana D.C. Alcohol based hand sanitizers: Assurance and apprehensions
revisited. Res. J. Pharm. Biol. Chem.
Sci. 2014;5:558–563. [Google Scholar]
20. Kramer A., Galabov A.S.,
Sattar S.A., Döhner L., Pivert A., Payan C., Wolff M.H., Yilmaz A., Steinmann
J. Virucidal activity of a new hand disinfectant with reduced ethanol content:
Comparison with other alcohol-based formulations. J. Hosp. Infect. 2006;62:98–106. doi:
10.1016/j.jhin.2005.06.020. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
21. Erasmus V., Daha T.J., Brug
H., Richardus J.H., Behrendt M.D., Vos M.C., van Beeck E.F. Systematic Review
of Studies on Compliance with Hand Hygiene Guidelines in Hospital Care. Infect. Control Hosp. Epidemiol. 2010;31:283–294. doi: 10.1086/650451. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
22. Moher D., Liberati A.,
Tetzlaff J., Altman D.G. Preferred Reporting Items for Systematic Reviews and
Meta-Analyses: The PRISMA Statement. PLoS
Med. 2009;6:e1000097. doi: 10.1371/journal.pmed.1000097. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
23. Gold N.A., Avva U. Alcohol Sanitizer. StatPearls
Publishing; St. Petersburg, FL, USA: 2018. [Google Scholar]
24. Mcdonnell G., Russell A.D.
Antiseptics and disinfectants: Activity, action, and resistance. Clin. Microbiol. Rev. 1999;12:147–179. doi: 10.1128/CMR.12.1.147. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
25. Van Asselt A.J., Te Giffel
M.C. Understanding Pathogen Behaviour. Elsevier Ltd.; Amsterdam, The Netherlands: 2005.
Pathogen resistance and adaptation to disinfectants and sanitisers; pp.
484–506. [Google Scholar]
26. Bloomfield S.F., Arthur M.
Mechanisms of inactivation and resistance of spores to chemical biocides. J. Appl. Bacteriol. 1994;76:91S–104S. doi:
10.1111/j.1365-2672.1994.tb04361.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
27. Visscher M., Davis J.,
Wickett R. Effect of topical treatments on irritant hand dermatitis in health
care workers. Am. J. Infect. Control. 2009;37:e1–e842. doi: 10.1016/j.ajic.2009.05.004. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
28. Pittet D. Compliance with
hand disinfection and its impact on hospital-acquired infections. J. Hosp. Infect. 2001;48:S40–S46. doi:
10.1016/S0195-6701(01)90012-X. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
29. Winnefeld M., Richard M.A.,
Drancourt M., Grob J.J. Skin tolerance and effectiveness of two hand
decontamination procedures in everyday hospital use. Br. J. Dermatol. 2000;143:546–550. doi:
10.1111/j.1365-2133.2000.03708.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
30. Greenaway R.E., Ormandy K.,
Fellows C., Hollowood T. Impact of hand sanitizer format (gel/foam/liquid) and
dose amount on its sensory properties and acceptability for improving hand
hygiene compliance. J. Hosp. Infect. 2018;100:195–201. doi: 10.1016/j.jhin.2018.07.011. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
31. Food and Drug
Administration. HHS Safety and Effectiveness of Health Care Antiseptics;
Topical Antimicrobial Drug Products for Over-the-Counter Human Use. [(accessed
on 8 May 2020)]; Final Rule. Available online: https://www.fda.gov/media/109956/download.
32. Compounding Expert Committee
Compounding Alcohol-Based Hand Sanitizer during COVID-19 Pandemic. [(accessed
on 8 May 2020)]; Available online: https://www.usp.org/sites/default/files/usp/document/about/public-policy/usp-covid19-handrub.pdf.
33. Song X., Vossebein L., Zille
A. Efficacy of disinfectant-impregnated wipes used for surface disinfection in
hospitals: A review. Antimicrob. Resist.
Infect. Control. 2019;8:139. doi:
10.1186/s13756-019-0595-2. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
34. Centers for Disease Control
and Prevention . Hand Hygiene in Healthcare
Settings. Centers for Disease Control
and Prevention; Atlanta, GA, USA: 2019. [Google Scholar]
35. Blaney D.D., Daly E.R.,
Kirkland K.B., Tongren J.E., Kelso P.T., Talbot E.A. Use of alcohol-based hand
sanitizers as a risk factor for norovirus outbreaks in long-term care
facilities in northern New England: December 2006 to March 2007. Am. J. Infect. Control. 2011;39:296–301. doi: 10.1016/j.ajic.2010.10.010. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
36. Oughton M.T., Loo V.G.,
Dendukuri N., Fenn S., Libman M.D. Hand Hygiene with Soap and Water Is Superior
to Alcohol Rub and Antiseptic Wipes for Removal of Clostridium difficile. Infect. Control Hosp. Epidemiol. 2009;30:939–944. doi: 10.1086/605322. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
37. Kampf G., Marschall S.,
Eggerstedt S., Ostermeyer C. Efficacy of ethanol-based hand foams using
clinically relevant amounts: A cross-over controlled study among healthy
volunteers. BMC Infect. Dis. 2010;10:78. doi: 10.1186/1471-2334-10-78. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
38. Stebbins S., Cummings
D.A.T., Stark J.H., Vukotich C., Mitruka K., Thompson W., Rinaldo C., Roth L.,
Wagner M., Wisniewski S.R., et al. Reduction in the incidence of influenza A
but not influenza B associated with use of hand sanitizer and cough hygiene in
schools: A randomized controlled trial. Pediatr.
Infect. Dis. J. 2011;30:921–926. doi:
10.1097/INF.0b013e3182218656. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
39. Pinhas A.R. A kinetic study
using evaporation of different types of hand-rub sanitizers. J. Chem. Educ. 2010;87:950–951. doi:
10.1021/ed1003492. [CrossRef] [Google Scholar]
40. Coronado G.D., Holte S.E.,
Vigoren E.M., Griffith W.C., Barr D.B., Faustman E.M., Thompson B. Do workplace
and home protective practices protect farm workers? findings from the “For
Healthy Kids” study. J. Occup. Environ.
Med. 2012;54:1163–1169. doi: 10.1097/JOM.0b013e31825902f5. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
41. World Health Organisation
. WHO Guidelines on Hand Hygiene in Health
Care: First Global Patient Safety Challenge: Clean Care Is Safer Care. World Health Organisation; Geneva, Switzerland:
2009. [Google Scholar]
42. Centers for Disease Control
and Prevention . Chemical
Disinfectants—Guideline for Disinfection and Sterilization in Healthcare
Facilities. Centers for Disease
Control and Prevention; Atlanta, GA, USA: 2016. [Google Scholar]
43. World Health Organization
. Guide To Local Production:
Who-Recommended Handrub Formulations. World
Health Organisation; Geneva, Switzerland: 2015. [Google Scholar]
44. Larson E.L. APIC guidelines
for handwashing and hand antisepsis in health care settings. AJIC Am. J. Infect. Control. 1995;23:251–269. doi: 10.1016/0196-6553(95)90070-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
45. Ison S., Beattie M.
Disinfection, sterilization and preservation (5th ed) Aust. Infect. Control. 2002;7:74. doi: 10.1071/HI02074. [CrossRef] [Google Scholar]
46. Walsh B., Blakemore P.H.,
Drabu Y.J. The effect of handcream on the antibacterial activity of
chlorhexidine gluconate. J. Hosp.
Infect. 1987;9:30–33. doi:
10.1016/0195-6701(87)90091-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
47. Fehr A.R., Perlman S. Coronaviruses: Methods and Protocols. Springer; New York, NY, USA: 2015. Coronaviruses:
An overview of their replication and pathogenesis; pp. 1–23. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
48. Larson E. Guideline for use
of topical antimicrobial agents. AJIC Am.
J. Infect. Control. 1988;16:253–266. doi:
10.1016/S0196-6553(88)80005-1. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
49. Larson E., Talbot G.H. An
approach for selection of health care personnel handwashing agents. Infect. Control. 1986;7:419–424. doi:
10.1017/S0195941700064663. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
50. Centers for Disease Control
and Prevention Guideline for Disinfection and Sterilization in Healthcare
Facilities. [(accessed on 8 May 2020)];2008 Available online: https://www.cdc.gov/infectioncontrol/guidelines/disinfection/disinfection-methods/chemical.html.
51. Teodorescu M., Bercea M.
Poly(vinylpyrrolidone)–A Versatile Polymer for Biomedical and Beyond Medical
Applications. Polym. Plast. Technol.
Eng. 2015;54:923–943. doi: 10.1080/03602559.2014.979506. [CrossRef] [Google Scholar]
52. Anderson R.L. Iodophor
Antiseptics: Intrinsic Microbial Contamination with Resistant Bacteria. Infect. Control Hosp. Epidemiol. 1989;10:443–446. doi: 10.2307/30146832. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
53. Traoré O., Fayard S.F.,
Laveran H. An in-vitro evaluation of the activity of povidone-iodine against
nosocomial bacterial strains. J. Hosp.
Infect. 1996;34:217–222. doi:
10.1016/S0195-6701(96)90069-9. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
54. Goldenheim P.D. In vitro
efficacy of povidone-iodine solution and cream against methicillin-resistant
Staphylococcus aureus. Postgrad. Med.
J. 1993;69(Suppl. 3):S62–S65. [PubMed] [Google Scholar]
55. Davies J.G., Babb J.R.,
Bradley C.R., Ayliffe G.A.J. Preliminary study of test methods to assess the
virucidal activity of skin disinfectants using poliovirus and
bacteriophages. J. Hosp. Infect. 1993;25:125–131. doi: 10.1016/0195-6701(93)90103-7. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
56. Dexter F., Parra M.C., Brown
J.R., Loftus R.W. Perioperative COVID-19 Defense: An Evidence-Based Approach
for Optimization of Infection Control and Operating Room Management. Anesth. Analg. 2020
doi: 10.1213/ANE.0000000000004829. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
57. Jones R.D., Jampani H.B.,
Newman J.L., Lee A.S. Triclosan: A review of effectiveness and safety in health
care settings. Am. J. Infect.
Control. 2000;28:184–196. doi:
10.1067/mic.2000.102378. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
58. Fahimipour A.K., Ben Mamaar
S., McFarland A.G., Blaustein R.A., Chen J., Glawe A.J., Kline J., Green J.L.,
Halden R.U., Van Den Wymelenberg K., et al. Antimicrobial Chemicals Associate
with Microbial Function and Antibiotic Resistance Indoors. Am. Soc. Microbiol. 2018;3:e00200-18. doi:
10.1128/mSystems.00200-18. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
59. Honari G., Maibach H. Applied Dermatotoxicology. Elsevier; Amsterdam, The Netherlands: 2014. Skin
Structure and Function; pp. 1–10. [Google Scholar]
60. Wickett R.R., Visscher M.O.
Structure and function of the epidermal barrier. Am. J. Infect. Control. 2006;34:S98–S110. doi: 10.1016/j.ajic.2006.05.295. [CrossRef] [Google Scholar]
61. Feingold K.R. Lamellar
bodies: The key to cutaneous barrier function. J. Investig. Dermatol. 2012;132:1951–1953. doi: 10.1038/jid.2012.177. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
62. Clayton K., Vallejo A.F.,
Davies J., Sirvent S., Polak M.E. Langerhans cells-programmed by the
epidermis. Front. Immunol. 2017;8:1676. doi: 10.3389/fimmu.2017.01676. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
63. Abraham J., Mathew S. Merkel
Cells: A Collective Review of Current Concepts. Int. J. Appl. Basic Med. Res. 2019;9:9–13. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]
64. Chiller K., Selkin B.A.,
Murakawa G.J. Skin microflora and bacterial infections of the skin. J. Investig. Dermatol. Symp. Proc. 2001;6:170–174. doi: 10.1046/j.0022-202x.2001.00043.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
65. Cogen A.L., Nizet V., Gallo
R.L. Skin microbiota: A source of disease or defence? Br. J. Dermatol. 2008;158:442–455. doi:
10.1111/j.1365-2133.2008.08437.x. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
66. Grice E.A., Segre J.A. The
skin microbiome. Nat. Rev. Microbiol. 2011;9:244–253. doi: 10.1038/nrmicro2537. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
67. Nash A.A., Dalziel R.G.,
Fitzgerald J.R. Mims’ Pathogenesis of
Infectious Disease. Elsevier;
Amsterdam, The Netherlands: 2015. Attachment to and Entry of Microorganisms
into the Body; pp. 9–49. [Google Scholar]
68. Wu F., Zhao S., Yu B., Chen
Y.-M., Wang W., Song Z.-G., Hu Y., Tao Z.-W., Tian J.-H., Pei Y.-Y., et al. A
new coronavirus associated with human respiratory disease in China. Nature. 2020;579:265–269. doi:
10.1038/s41586-020-2008-3. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
69. Zhou P., Yang X.-L., Wang
X.-G., Hu B., Zhang L., Zhang W., Si H.-R., Zhu Y., Li B., Huang C.-L., et al.
A pneumonia outbreak associated with a new coronavirus of probable bat
origin. Nature. 2020;579:270–273. doi: 10.1038/s41586-020-2012-7. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
70. Cascella M., Rajnik M.,
Cuomo A., Dulebohn S.C., Di Napoli R. Features,
Evaluation and Treatment Coronavirus (COVID-19) StatPearls Publishing; St. Petersburg, FL, USA: 2020. [Google Scholar]
71. Goldsmith C.S., Tatti K.M.,
Ksiazek T.G., Rollin P.E., Comer J.A., Lee W.W., Rota P.A., Bankamp B., Bellini
W.J., Zaki S.R. Ultrastructural Characterization of SARS Coronavirus. Emerg. Infect. Dis. 2004;10:320–326. doi: 10.3201/eid1002.030913. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
72. WHO . Annex 1 19th WHO Model List of Essential Medicines. WHO; Geneva, Switzerland: 2015. [Google Scholar]
73. Siddharta A., Pfaender S.,
Vielle N.J., Dijkman R., Friesland M., Becker B., Yang J., Engelmann M., Todt
D., Windisch M.P., et al. Virucidal Activity of World Health
Organization-Recommended Formulations Against Enveloped Viruses, Including
Zika, Ebola, and Emerging Coronaviruses. J.
Infect. Dis. 2017;215:902–906. doi:
10.1093/infdis/jix046. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
74. Kampf G. Efficacy of ethanol
against viruses in hand disinfection. J.
Hosp. Infect. 2018;98:331–338. doi:
10.1016/j.jhin.2017.08.025. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
75. Rabenau H.F., Kampf G.,
Cinatl J., Doerr H.W. Efficacy of various disinfectants against SARS
coronavirus. J. Hosp. Infect. 2005;61:107–111. doi: 10.1016/j.jhin.2004.12.023. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
76. Wilhelm K.-P. Current Problems in Dermatology. Volume 25. Karger Publishers; London, UK: 1996.
Prevention of Surfactant-Induced Irritant Contact Dermatitis; pp. 78–85. [PubMed] [Google Scholar]
77. Ale I.S., Maibach H.I.
Irritant contact dermatitis. Rev. Environ.
Health. 2014;29:195–206. doi:
10.1515/reveh-2014-0060. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
78. Misteli H., Weber W.P., Reck
S., Rosenthal R., Zwahlen M., Fueglistaler P., Bolli M.K., Oertli D., Widmer
A.F., Marti W.R. Surgical glove perforation and the risk of surgical site
infection. Arch. Surg. 2009;144:553–558. doi: 10.1001/archsurg.2009.60. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
79. Larson E.L., Hughes C.A.,
Pyrek J.D., Sparks S.M., Cagatay E.U., Bartkus J.M. Changes in bacterial flora
associated with skin damage on hands of health care personnel. Am. J. Infect. Control. 1998;26:513–521. doi: 10.1016/S0196-6553(98)70025-2. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
80. Löffler H., Kampf G.,
Schmermund D., Maibach H.I. How irritant is alcohol? Br. J. Dermatol. 2007;157:74–81. doi:
10.1111/j.1365-2133.2007.07944.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
81. Graham M., Nixon R., Burrell
L.J., Bolger C., Johnson P.D.R., Grayson M.L. Low rates of cutaneous adverse
reactions to alcohol-based hand hygiene solution during prolonged use in a
large teaching hospital. Antimicrob. Agents
Chemother. 2005;49:4404–4405. doi:
10.1128/AAC.49.10.4404-4405.2005. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
82. Angelova-Fischer I., Dapic
I., Hoek A.K., Jakasa I., Fischer T.W., Zillikens D., Kezic S. Skin barrier
integrity and natural moisturising factor levels after cumulative dermal
exposure to alkaline agents in atopic dermatitis. Acta Derm. Venereol. 2014;94:640–644. doi: 10.2340/00015555-1815. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
83. Emilson A., Lindberg M.,
Forslind B. The temperature effect of in vitro penetration of sodium lauryl
sulfate and nickel chloride through human skin. Acta Derm. Venereol. 1993;73:203–207. [PubMed] [Google Scholar]
84. Øhlenschlæger J., Friberg
J., Ramsing D., Agner T. Temperature dependency of skin susceptibility to water
and detergents. Acta Derm. Venereol. 1996;76:274–276. [PubMed] [Google Scholar]
85. Rosenberg A., Alatary S.D.,
Peterson A.F. Safety and efficacy of the antiseptic chlorhexidine
gluconate. Surg. Gynecol. Obstet. 1976;143:789–792. [PubMed] [Google Scholar]
86. Ophaswongse S., Maibach H.I.
Alcohol dermatitis: Allergic contact dermatitis and contact urticaria syndrome:
A review. Contact Dermat. 1994;30:1–6. doi: 10.1111/j.1600-0536.1994.tb00719.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
87. Cimiotti J.P., Marmur E.S.,
Nesin M., Hamlim-Cook P., Larson E.L. Adverse reactions associated with an
alcohol-based hand antiseptic among nurses in a neonatal intensive care
unit. Am. J. Infect. Control. 2003;31:43–48. doi: 10.1067/mic.2003.42. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
88. Guin J.D., Goodman J.
Contact urticaria from benzyl alcohol presenting as intolerance to saline
soaks. Contact Dermat. 2001;45:182–183. doi:
10.1034/j.1600-0536.2001.045003182.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
89. De Groot A.C. Contact
allergy to cosmetics: Causative ingredients. Contact Dermat. 1987;17:26–34. doi:
10.1111/j.1600-0536.1987.tb02640.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
90. Podda M., Zollner T.,
Grundmann-Kollmann M., Kaufmann R., Boehncke W.H. Allergic contact dermatitis
from benzyl alcohol during topical antimycotic treatment. Contact Dermat. 1999;41:302–303. doi:
10.1111/j.1600-0536.1999.tb06175.x. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
91. Bissett L. Skin care: An
essential component of hand hygiene and infection control. Br. J. Nurs. 2007;16:976–981. doi:
10.12968/bjon.2007.16.16.27075. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
92. Larson E., Leyden J.J.,
McGinley K.J., Grove G.L., Talbot G.H. Physiologic and microbiologic changes in
skin related to frequent handwashing. Infect.
Control. 1986;7:59–63. doi:
10.1017/S019594170006389X. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
93. Larson E.L., Aiello A.E.,
Bastyr J., Lyle C., Stahl J., Cronquist A., Lai L., Della-Latta P. Assessment
of two hand hygiene regimens for intensive care unit personnel. Crit. Care Med. 2001;29:944–951. doi:
10.1097/00003246-200105000-00007. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
94. Boyce J.M., Kelliher S.,
Vallande N. Skin Irritation and Dryness Associated With Two Hand-Hygiene
Regimens: Soap-and-Water Hand Washing Versus Hand Antisepsis With an Alcoholic
Hand Gel. Infect. Control Hosp.
Epidemiol. 2000;21:442–448. doi:
10.1086/501785. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
95. Kantor R., Silverberg J.I.
Environmental risk factors and their role in the management of atopic
dermatitis. Expert Rev. Clin.
Immunol. 2017;13:15–26. doi:
10.1080/1744666X.2016.1212660. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]
96. Quality Medical Care
Section. Medical Development Division. Ministry of Health Malaysia Policies and
Procedures on Infection Control. [(accessed on 23 March 2020)];2009 Available
online: https://www.moh.gov.my/moh/images/gallery/Polisi/infection_control.pdf.
97. Hadaway A. Handwashing:
Clean Hands Save Lives. J. Consum. Health
Internet. 2020;24:43–49. doi:
10.1080/15398285.2019.1710981. [CrossRef] [Google Scholar]
Sumber:
Jane Lee Jia Jing, Thong Pei Yi, Rajendran J. C. Bose, Jason R.
McCarthy, Nagendran Tharmalingam and Thiagarajan Madheswaran. 2020. Hand Sanitizers: titik dua A Review on
Formulation Aspects, Adverse Effects, and Regulations. Int. J. Environ. Res. Public Health 2020, 17,
3326; doi:10.3390/ijerph17093326