Klamidia: Infeksi Menular Seksual "Diam-Diam" yang Bisa Sebabkan Infertilitas Tanpa Gejala!

 

Penyakit menular seksual sering kali dianggap mudah dikenali karena adanya gejala khas, namun Chlamydia trachomatis justru menjadi pengecualian yang berbahaya. Infeksi ini dijuluki sebagai “silent infection” karena sebagian besar penderitanya tidak menunjukkan tanda-tanda klinis apa pun, tetapi diam-diam dapat menyebabkan kerusakan serius pada sistem reproduksi, bahkan menimbulkan infertilitas permanen. Di balik diamnya infeksi ini tersembunyi ancaman global: jutaan orang terinfeksi setiap tahun tanpa disadari, dan banyak di antaranya baru mengetahui saat komplikasi berat seperti penyakit radang panggul atau kehamilan ektopik muncul. Kondisi ini menjadikan klamidia bukan hanya masalah individu, tetapi juga tantangan besar bagi kesehatan masyarakat dunia. Oleh karena itu, mengenali gejala klinis, memahami perjalanan infeksi, serta mengetahui metode diagnosis yang akurat menjadi langkah penting dalam mencegah dampak jangka panjang yang sering kali tidak terdeteksi hingga terlambat.

Banyak pasien penderita klamidia tidak menunjukkan gejala, namun sebagian kecil orang mengalami gejala bergantung pada bagian tubuh yang terinfeksi. Setiap wanita, pria, dan bayi baru lahir yang terinfeksi dapat menunjukkan gejala-khasnya masing-masing.

 

Chlamydia trachomatis merupakan penyebab paling umum infeksi menular seksual di dunia. Data epidemiologis dan klinis mengenai tingkat infeksi klamidia sulit dipastikan karena keterbatasan dalam skrining dan pelaporan infeksi. Tindakan skrining besar-besaran belum diterapkan di seluruh dunia, terutama di negara-negara berkembang, sehingga menyebabkan ketidak-akuratan dalam menghitung tingkat prevalensi dan kejadian [40].

 

Selain itu, individu tanpa gejala tanpa sadar dapat menyebarkan penyakit ini ke pasangan seksualnya, dan meskipun sudah diobati, infeksi ulang sering terjadi [32]. Diperkirakan sekitar 75% wanita dan 50% pria tidak menunjukkan gejala [40]. Dalam keadaan seperti ini, sulit untuk memperoleh data yang dapat diandalkan mengenai tingkat infeksi. Tingkat prevalensi mungkin lebih tinggi daripada yang tercatat dalam literatur.

 

Gejala pada Wanita

 

Pada wanita, leher rahim merupakan tempat yang paling sering terinfeksi C. trachomatis [27]. Akibatnya, servisitis dapat terjadi pada wanita dengan gejala ringan seperti keputihan, pendarahan, sakit perut, dan disuria [14]. Beberapa wanita mungkin mengalami servisitis mukopurulen, perdarahan endoserviks, dan perdarahan pascakoitus atau intermenstrual. Jika infeksi naik dari leher rahim ke saluran reproduksi bagian atas, pasien akan mengalami nyeri perut atau panggul, dan infeksi akan berkembang menjadi Pelvic inflammatory disease (PID) [27]. Selain nyeri, gejala lain juga telah dilaporkan yaitu mual, muntah, demam, menggigil, nyeri punggung bawah, disuria, dispareunia atau nyeri saat berhubungan seksual, dan perdarahan setelah berhubungan seksual [24].

 

Pasien yang didiagnosis PID dapat mengalami Fitz-Hugh-Curtis syndrome (FHCS), atau perihepatitis, suatu kondisi di mana hati dan permukaan peritoneum di sekitarnya mengalami peradangan, yang menyebabkan nyeri kuadran kanan atas (Right upper quadrant / RUQ) atau nyeri pleuritik [27]. FHCS sering dikaitkan dengan gejala PID seperti demam, nyeri perut bagian bawah dan keputihan [33]; namun, hal ini dapat menjadi gawat karena menimbulkan gejala seperti infertilitas, kehamilan ektopik, dan nyeri panggul kronis [3]. Selain itu, PID terutama jika tidak diobati, dapat menyebabkan jaringan parut tuba fallopi akibat respon inflamasi yang intens dan kronis [17]. Jaringan parut tuba fallopi dapat menyebabkan Tubal factor infertility (TFI) [16].

 

Komplikasi lain dari infeksi klamidia yang tidak diobati atau sudah berlangsung lama pada saluran reproduksi, khususnya saluran tuba fallopi, dapat menyebabkan infertilitas dan kehamilan ektopik [38]. Pada wanita hamil, infeksi klamidia telah dikaitkan dengan akhir kehamilan yang tidak diharapkan seperti ketuban pecah dini (Prelabor Rupture of membrane / PROM), kelahiran prematur, berat badan lahir rendah, hambatan pertumbuhan yang menyebabkan bayi kecil dan kematian neonatal [1].

 

Meskipun jarang terjadi, wanita yang terinfeksi C. trachomatis dapat mengalami uretritis, di mana frekuensi buang air kecil dan disuria menjadi keluhan utama [27].

 

Gejala pada Pria

 

Pria yang bergejala mungkin menunjukkan kombinasi manifestasi urogenital dan ekstragenital. Infeksi urogenital pada pria dapat muncul dengan epididimitis, merasakan nyeri testis unilateral yang disertai pembengkakan epididimis. Uretritis juga merupakan tanda umum infeksi klamidia pada pria; pasien mengalami disuria dan sering teramati keluarnya cairan dari uretra berwarna putih abu-abu. Prostatitis ditandai dengan disuria, nyeri panggul, disfungsi saluran kemih, dan disorgasmia [27].

 

Temuan ekstragenital yaitu proktitis dan artritis reaktif. Proktitis, atau peradangan rektum, terasa nyeri jika disebabkan oleh serovar L1–L3, dan pasien menderita keluarnya cairan dari rektum, pendarahan, demam, dan malaise. Kondisi ini hampir secara eksklusif terbatas pada pria yang berhubungan seks dengan pria [27]. Artritis reaktif adalah manifestasi lain dari infeksi klamidia. Diperkirakan 1% pria dengan uretritis yang disebabkan oleh C. trachomatis mengalami arthritis reaktif [22]. Pada pemeriksaan fisik, ditemukan oligoartritis asimetris, biasanya pada ekstremitas bawah, dan nyeri pada jari tangan, kaki, atau tumit. Pasien juga dapat mengalami trias arthritis, uretritis, dan uveitis, suatu kondisi yang sebelumnya dikenal sebagai sindrom Reiter [10].

 

Limfogranuloma Venereum (LGV)

 

LGV merupakan manifestasi klinis dari infeksi klamidia yang terlihat pada wanita maupun pria. LGV diklasifikasikan sebagai penyakit ulseratif pada daerah genital [34]. Penyakit ini mengikuti perjalanan tiga tahap [12]. Terbentuknya ulkus genital yang tidak menimbulkan rasa sakit menandai tahap pertama atau primer. Penyakit ini sering kali luput dari perhatian karena ukuran dan lokasinya serta dapat sembuh secara spontan.

 

Perkembangan limfadenopati inguinal dan/atau femoralis biasanya terjadi setelah memalui tahap infeksi sekunder. Selama tahap ini, pasien mungkin mengalami penyakit mirip proktokolitis yang ditandai dengan disuria, diskezia atau kesulitan buang air besar, nyeri perut, dubur, dan dubur, dan tenesmus, atau sering ingin buang air besar. Telah diketahui gejala konstitusional seperti demam, sakit kepala dan nyeri tubuh.

 

Tahap akhir infeksi muncul ketika penyakit ini tidak diobati dan ditandai dengan penyempitan, fibrosis, pembentukan fistula di daerah anogenital, dan nekrosis serta pecahnya kelenjar getah bening yang terkena [12]. Pada pria secara keseluruhan tampak pada awal perjalanan penyakit ketika gejala akut muncul, sedangkan pada wanita tampak pada tahap akhir infeksi ketika timbul komplikasi [9].

 

Gejala Trakhoma

 

Trachoma merupakan penyebab utama kebutaan di dunia saat ini. Gambaran umum pada gejala awal yaitu kemerahan, gatal dan iritasi pada mata dan kelopak mata [18]. Juga terlihat keluar cairan, bengkak, nyeri dan fotofobia. Dua bentuk trachoma telah diketahui yaitu bentuk aktif dan bentuk sikatrik kronis.

 

Trachoma aktif lebih sering terjadi pada anak-anak dan ditandai dengan konjungtivitis folikular dan papiler campuran. Kondisi ini terlihat adanya sekret mukopurulen, keratitis epitel superior, dan vaskularisasi kornea. Dalam kasus yang parah dapat terjadi hipertrofi papiler.

 

Infeksi berulang menimbulkan bentuk trakoma sikatrik, yang terlihat pada orang dewasa paruh baya. Tahap kronis ini ditandai dengan jaringan parut, terutama di lempeng tarsal atas, disertai vaskularisasi kornea, trikiasis, dan distichiasis. Seiring waktu, rusaknya sel goblet di konjungtiva dan duktus kelenjar lakrimal memicu kekeringan pada mata. Proses ini berkembang akan menimbulkan kekeruhan kornea dan kebutaan merupakan tanda kerusakan permanen [2].

 

Gejala pada Neonatus

 

Neonatus (bayi bulan pertama kelahiran) dapat terinfeksi C. trachomatis dari ibunya ketika melewati saluran vagina saat dilahirkan. Interaksi dengan sekret genital yang terinfeksi dapat menyebabkan konjungtivitis, atau oftalmia neonatorum, pada bayi baru lahir, ditandai dengan eritema dan edema pada kelopak mata, konjungtiva palpebra, dan sekret konjungtiva [46]. Konjungtivitis dianggap sebagai manifestasi klinis klamidia yang paling umum pada bayi baru lahir [27]. Gejala biasanya muncul pada satu mata 5 – 14 hari setelah diahirkan dan mata kedua biasanya meradang setelah 2 – 7 hari [7]. Keluarnya cairan pada awalnya encer tetapi kemudian menjadi bernanah setelah beberapa hari [45]. Jika tidak diobati, timbulnya jaringan parut pada kornea dan konjungtiva telah dilaporkan [4].

 

Aspirasi sekret genital yang terinfeksi saat melahirkan dapat menyebabkan pneumonia pada bayi baru lahir [7]. Gejala muncul pada bayi usia antara 4 dan 12 minggu. Pasien biasanya tidak demam, menimbulkan batuk staccato paroksismal, dan mungkin mengalami takipnea [27]. Selain tanda-tanda klinis ini, hidung tersumbat dan sekret hidung kental juga sering terjadi [39]. Rontgen dada akan menunjukkan infiltrat paru yang menyebar disertai hiperinflasi [45]. Rales juga dapat terdengar pada auskultasi selama pemeriksaan fisik [27]. Jika tidak diobati, bayi lebih rentan terkena penyakit paru kronis, termasuk asma [45].

 

Komplikasi Klinis

 

Setiap infeksi yang terdiagnosis harus diobati karena kurangnya penatalaksanaan terapeutik dapat mengakibatkan perkembangan penyakit dan komplikasi yang ditandai dengan gejala yang bertahan lama.

 

Komplikasi yang paling parah berhubungan dengan penanganan dan pengobatan infeksi klamidia yang tidak efektif. Misalnya, prevalensi Pelvic inflammatory disease (PID) setelah infeksi klamidia ditemukan antara 3,0% dan 30,0% [35]. Kehamilan ektopik juga dilaporkan antara 0,2% hingga 2,7% pada wanita yang terinfeksi [13], sedangkan TFI terdeteksi pada 0,1% hingga 6,0% pada wanita yang terinfeksi [21].

 

Skrining untuk Klamidia

 

Satuan Tugas Layanan Pencegahan Amerika Serikat (USPSTF) merekomendasikan agar semua wanita yang aktif secara seksual berusia 24 tahun atau lebih muda menjalani pemeriksaan klamidia setiap tahun. Protokol serupa harus diterapkan pada wanita berusia 25 tahun ke atas yang memiliki risiko lebih tinggi terhadap infeksi (pasangan seksual baru, lebih dari satu pasangan seksual, pasangan seksual dengan beberapa pasangan seksual secara bersamaan, atau pasangan seksual dengan diagnosis Premenstrual syndrome (PMS) [41].

 

Selain itu, wanita hamil di bawah usia 25 tahun dan mereka yang berusia di atas 25 tahun yang memiliki peningkatan risiko infeksi (pasangan seksual baru, lebih dari satu pasangan seksual, pasangan seksual dengan beberapa pasangan seksual bersamaan, atau pasangan seksual dengan diagnosis PMS) harus diskrining pada kunjungan prenatal pertama mereka. Mereka yang berisiko tinggi pada saat itu harus menjalani tes ulang pada trimester ketiga [43].

 

Pusat Pengendalian dan Pencegahan Penyakit (CDC) juga merekomendasikan skrining pada populasi pria tertentu, terutama pria yang aktif secara seksual di wilayah dan populasi dengan prevalensi tinggi. Skrining tahunan harus dilakukan pada pria yang berhubungan seks dengan pria; namun, pengujian yang lebih sering disarankan pada kelompok yang melakukan perilaku seksual berisiko tinggi atau jika pasangan seksual diketahui memiliki banyak pasangan. Individu transgender harus diskrining berdasarkan partisipasi seksual dan anatomi masing-masing. Selain itu, CDC merekomendasikan skrining untuk wanita di bawah usia 35 tahun dan laki-laki di bawah usia 30 tahun pada saat memasuki lembaga pemasyarakatan [43].

 

Dalam semua situasi yang disebutkan di atas, pasien juga harus diskrining untuk mengetahui adanya gonore, yang sering terjadi bersamaan dengan klamidia [41]. Dalam kasus infeksi klamidia atau gonokokus, pasien harus menjalani tes ulang tiga bulan setelah memulai pengobatan, terlepas dari status infeksi pasangan seksualnya [43].

 

Diagnosis dan Pengambilan Sampel

 

Tes amplifikasi asam nukleat (NAAT) adalah tes yang paling sensitif dengan spesifisitas yang mirip dengan kultur sel dan dianggap sebagai metode pilihan untuk deteksi C. trachomatis. [26]. Sejak saat itu, tes tersebut telah menggantikan metode kultur sebagai diagnosis standar emas. Tes antigen, seperti enzim immunoassay, tes antibodi fluoresen langsung (direct fluorescent antibody / DFA), dan tes diagnostik cepat, yang pernah digunakan untuk deteksi dan diagnosis, juga tidak lagi direkomendasikan karena ketidakakuratan dalam prosedur pemeriksaan diagnostik [31].

 

Ada banyak alasan untuk menukar cara diagnosis ini. Pertama, karena Nucleic Acid Amplification Test (NAAT) tidak bergantung pada patogen menular atau patogen yang hidup, spesimen dapat dengan mudah diambil dan dikumpulkan [26].

 

Selain itu, sampel non-invasif seperti urin dapat dianalisis, menskrining infeksi pada individu tanpa gejala yang tidak terdiagnosis dan tidak diobati. Hal ini terbukti menguntungkan karena sebagian besar infeksi klamidia kelompok pada populasi wanita dan kelompok pada populasi pria tidak menunjukkan gejala [23].

 

Terakhir, karena sebagian besar NAAT bergantung pada polymerase chain reaction (PCR) dan probe berlabel fluoresensi untuk menemukan rangkaian DNA yang diperkuat secara real-time, sehingga proses pengujian menjadi lebih efisien, dan waktu durasi pengujian berkurang. Hasilnya dapat dipastikan dengan cepat dan bahkan seringkali diperoleh dalam beberapa jam [26].

 

Untuk mendiagnosis klamidia genital menggunakan NAAT, sampel usap vagina dikumpulkan pada wanita dan urin dikumpulkan pada pria. Untuk infeksi klamidia rektal atau faring, pengujian di lokasi paparan diperlukan [8]. Oftalmia klamidia pada neonatus harus didiagnosis melalui tes kultur jaringan dan nonkultur misalnya tes DFA dan NAAT.

 

Kedua metode tersebut sensitif dan spesifik [43]. DFA merupakan satu-satunya tes nonkultur yang disetujui Food and Drug Administration (FDA) untuk mendeteksi klamidia dari usap konjungtiva (NAAT tidak disetujui oleh FDA untuk mendeteksi klamidia dari usap konjungtiva). Untuk kultur dan DFA, spesimen harus mengandung sel konjungtiva (diperoleh dari kelopak mata yang dibalik), bukan eksudat saja [43,46].

 

Selain menggunakan tes NAAT dan DFA, antibodi spesifik klamidia dapat dideteksi dalam serum pasien. Dua antibodi utama dalam sekresi genital yang dapat mencegah penularan C. trachomatis adalah IgG terhadap C. trachomatis, isotipe dominan, dan IgA sekretorik polimer [20].

 

Kedua antibodi tersebut terutama disintesis oleh sel plasma lokal di saluran genital wanita bagian atas (Female genital tract / FGT) [11]. Kedua isotipe antibodi ini mencegah infeksi yang disebabkan oleh C. trachomatis dengan menghalangi masuknya bakteri ke dalam sel inang. Antibodi menjebak bakteri dalam lendir di lumen FGT [42], atau menetralisir patogen intraseluler dalam sel epitel kolumnar selama transportasi [5].

 

Antibodi meningkatkan opsonophagocytosis dan degradasi klamidia, membatasi proses infektif (yang seharusnya bergantung pada sintesis interferon-gamma (IFN-γ)) [28]. Sel plasma yang mensintesis IgG melawan C. trachomatis ditemukan di FGT, namun IgG genital terutama berasal dari sirkulasi [25]. Sebaliknya, sel plasma subepitel menghasilkan IgM dan IgA genital [44], dan hampir 70% IgA diproduksi secara lokal pada wanita [37].

 

Kelas IgA dan IgM diketahui bereaksi cepat terhadap infeksi ulang akut. Lokasi utama produksi IgA sekretori adalah di leher rahim [19]. Demikian pula, IgA sekretorik merupakan isotipe dominan yang disekresikan oleh mukosa usus, namun pada FGT, rasio IgG terhadap IgA sekretorik yang lebih besar telah diamati [29]. Penelitian longitudinal pada manusia menunjukkan bahwa respons IFN-γ sel T CD4 spesifik klamidia (tetapi bukan titer IgG) dapat mengurangi risiko infeksi ulang pada wanita dengan pajanan tinggi [36].

 

Titer IgG yang tinggi merupakan penanda paparan klamidia berulang dan/atau berkepanjangan, namun tidak dapat melindungi terhadap infeksi ulang [15]. Titer serum anti-EB IgG berkaitan dengan penurunan keparahan serviks dan penurunan risiko infeksi endometrium [36]. Peran antibodi anti-IgG tidak dapat disimpulkan. Beberapa data menunjukkan bahwa anti-EB IgG tidak efektif dalam menurunkan risiko infeksi endometrium [30]. Sebaliknya, penelitian lain melaporkan bahwa IgA anti-klamidia (tetapi bukan IgG) dapat menurunkan risiko infeksi endometrium dan mencegah pembentukan salpingitis [6].

 

DAFTAR PUSTAKA

 

1.Adachi, K.N.; Nielsen-Saines, K.; Klausner, J.D. Chlamydia trachomatis Screening and Treatment in Pregnancy to Reduce Adverse Pregnancy and Neonatal Outcomes: A Review. Front. Public Health. 2021, 9, 531073.

2.Ahmad, B.; Patel, B.C. Trachoma. In StatPearls; StatPearls Publishing: Treasure Island, FL, USA, 2022.

3.Bebear, C.; de Barbeyrac, B. Genital Chlamydia trachomatis infections. Clin. Microbiol. Infect. 2009, 15, 4–10.

4.Bialasiewicz, A.A.; Junkenitz, A.; Jahn, G.J. Corneal symptoms in keratoconjunctivitis caused by Chlamydia. Klin. Mon. Fur Augenheilkd. 1985, 187, 36–39.

5.Bidgood, S.R.; Tam, J.C.H.; McEwan, W.A.; Mallery, D.L.; James, L.C. Translocalized IgA mediates neutralization and stimulates innate immunity inside infected cells. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2014, 111, 13463–13468.

6.Brunham, R.C.; Peeling, R.; Maclean, I.; McDowell, J.; Persson, K.; Osser, S. Postabortal Chlamydia trachomatis salpingitis: Correlating risk with antigen-specific serological responses and with neutralization. J. Infect. Dis. 1987, 155, 749–755.

7.Carol, P.; Pratt, R.J. Neonatal conjunctivitis and pneumonia due to chlamydia infection. Infant 2006, 2, 16–17.

8.Centers for Disease Control and Prevention. Chlamydia—CDC Fact Sheet (Detailed). 2021. Available online: https://www.cdc.gov/std/chlamydia/stdfact-chlamydia-detailed.htm (accessed on 7 December 2022).

9.Ceovic, R.; Gulin, S.J. Lymphogranuloma venereum: Diagnostic and treatment challenges. Infect. Drug Resist. 2015, 8, 39–47.

10.Cheeti, A.; Chakraborty, R.K.; Ramphul, K. Reactive arthritis. In StatPeals; StatPearls Publishing: Treasure Island, FL, USA, 2018.

11.Crowley-Nowick, P.A.; Bell, M.; Edwards, R.P.; Mccallister, D.; Gore, H.; Kanbour-Shakir, A.; Mestecky, J.; Partridge, E.E. Normal uterine cervix: Characterization of isolated lymphocyte phenotypes and immunoglobulin secretion. Am. J. Reprod. Immunol. 1995, 34, 241–247.

12.Dal Conte, I.; Mistrangelo, M.; Cariti, C.; Chiriotto, M.; Lucchini, A.; Vigna, M.; Morino, M.; Di Perri, G. Lymphogranuloma venereum: An old, forgotten re-emerging systemic disease. Panminerva Med. 2014, 56, 73–83.

13.Davies, B.; Turner, K.M.; Frølund, M.; Ward, H.; May, M.T.; Rasmussen, S.; Benfield, T.; Westh, H. Risk of reproductive complications following chlamydia testing: A population-based retrospective cohort study in Denmark. Lancet Infect. Dis. 2016, 16, 1057–1064.

14.Detels, R.; Green, A.M.; Klausner, J.D.; Katzenstein, D.; Gaydos, C.; Handsfield, H.; Pequegnat, W.; Mayer, K.; Hartwell, T.D.; Quinn, T.C. The incidence and correlates of symptomatic and asymptomatic Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae infections in selected populations in five countries. Sex. Transm. Dis. 2011, 38, 503–509.

15.El Hakim, E.A.; Gordon, U.D.; Akande, V.A. The relationship between serum Chlamydia antibody levels and severity of disease in infertile women with tubal damage. Arch. Gynecol. Obstet. 2010, 281, 727–733.

16.Hafner, L.M. Pathogenesis of fallopian tube damage caused by Chlamydia trachomatis infections. Contraception 2015, 92, 108–115.

17.Haggerty, C.L.; Gottlieb, S.L.; Taylor, B.D.; Low, N.; Xu, F.; Ness, R.B. Risk of sequelae after Chlamydia trachomatis genital infection in women. J. Infect. Dis. 2010, 201 (Suppl. S2), S134–S155.

18.Handley, B.L.; Roberts, C.H.; Butcher, R. A systematic review of historical and contemporary evidence of trachoma endemicity in the Pacific Islands. PLoS ONE 2018, 13, e0207393.

19.Iwasaki, A. Antiviral immune responses in the genital tract: Clues for vaccines. Nat. Rev. Immunol. 2010, 10, 699–711.

20.Johansson, M.; Lycke, N. Immunology of the human genital tract. Curr. Opin. Infect. Dis. 2003, 16, 43–49.

21.Kavanagh, K.; Wallace, L.A.; Robertson, C.; Wilson, P.; Scoular, A. Estimation of the risk of tubal factor infertility associated with genital chlamydial infection in women: A statistical modelling study. Int. J. Epidemiol. 2013, 42, 493–503.

22.Kobayashi, S.; Kida, I. Reactive arthritis: Recent advances and clinical manifestations. Intern. Med. 2005, 44, 408–412.

23.Malhotra, M.; Sood, S.; Mukherjee, A.; Muralidhar, S.; Bala, M. Genital Chlamydia trachomatis: An update. Indian J. Med. Res. 2013, 138, 303–316.

24.Margaret, G. Pelvic inflammatory disease. Am. Fam. Physician 2012, 85, 791–796.

25.Mestecky, J.; Alexander, R.C.; Wei, Q.; Moldoveanu, Z. Methods for evaluation of humoral immune responses in human genital tract secretions. Am. J. Reprod. Immunol. 2011, 65, 361–367.

26.Meyer, T. Diagnostic Procedures to Detect Chlamydia trachomatis Infections. Microorganisms 2016, 4, 25.

27.Mohseni, M.; Sung, S.; Takov, V. Chlamydia. In StatPearls; StatPearls Publishing: Treasure Island, FL, USA, 2022; [Updated 18 September 2022]. Available online: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK537286/ (accessed on 18 November 2022).

28.Naglak, E.K.; Morrison, S.G.; Morrison, R.P. IFNgamma is required for optimal antibody-mediated immunity against genital Chlamydia infection. Infect. Immun. 2016, 84, 3232–3242.

29.Naz, R.K. Female genital tract immunity: Distinct immunological challenges for vaccine development. J. Reprod. Immunol. 2012, 93, 1–8.

30.Norrby-Teglund, A.; Ihendyane, N.; Kansal, R.; Basma, H.; Kotb, M.; Andersson, J.; Hammarström, L. Relative neutralizing activity in polyspecific IgM, IgA, and IgG preparations against group A streptococcal superantigens. Clin. Infect. Dis. 2000, 31, 1175–1182.

31.Nwokolo, N.C.; Dragovic, B.; Patel, S.; Tong, C.Y.; Barker, G.; Radcliffe, K. 2015 UK national guideline for the management of infection with Chlamydia trachomatis. Int. J. STD AIDS 2016, 27, 251–267.

32.O’Connell, C.M.; Ferone, M.E. Chlamydia trachomatis Genital Infections. Microb. Cell 2016, 3, 390–403.

33.Onoh, R.C.; Mgbafuru, C.C.; Onubuogu, S.E.; Ugwuoke, I. Fitz-Hugh-Curtis syndrome: An incidental diagnostic finding in an infertility workup. Niger. J. Clin. Pract. 2016, 19, 834–836.

34.Prashanth, R.; Thandra, K.C.; Limaiem, F. Lymphogranuloma Venereum. In StatPeals; StatPearls Publishing: Treasure Island, FL, USA, 2019.

35.Price, M.J.; Ades, A.; Soldan, K.; Welton, N.J.; Macleod, J.; Simms, I.; DeAngelis, D.; Turner, K.M.; Horner, P.J. The natural history of Chlamydia trachomatis infection in women: A multi-parameter evidence synthesis. Health Technol. Assess. 2016, 20, 1–250.

36.Russell, A.N.; Zheng, X.; O’Connell, C.M.; Wiesenfeld, H.C.; Hillier, S.L.; Taylor, B.D.; Picard, M.D.; Flechtner, J.B.; Zhong, W.; Frazer, L.C.; et al. Identification of Chlamydia trachomatis antigens recognized by T Cells from highly exposed women who limit or resist genital tract infection. J. Infect. Dis. 2016, 214, 1884–1892.

37.Russell, M.W.; Mestecky, J. Humoral immune responses to microbial infections in the genital tract. Microbes Infect. 2002, 4, 667–677.

38.Steiner, A.Z.; Diamond, M.P.; Legro, R.S.; Schlaff, W.D.; Barnhart, K.T.; Casson, P.R.; Christman, G.M.; Alvero, R.; Hansen, K.R.; Geisler, W.M.; et al. Chlamydia trachomatis immunoglobulin G3 seropositivity is a predictor of reproductive outcomes in infertile women with patent fallopian tubes. Fertil Steril. 2015, 104, 1522–1526.

39.Tipple, M.A.; Beem, M.O.; Saxon, E.M. Clinical characteristics of the afebrile pneumonia associated with Chlamydia trachomatis infection in infants less than 6 months of age. Pediatrics 1979, 63, 192–197.

40.Tjahyadi, D.; Ropii, B.; Tjandraprawira, K.D.; Parwati, I.; Djuwantono, T.; Permadi, W.; Li, T. Female urogenital chlamydia: Epidemiology, Chlamydia on pregnancy, current diagnosis, and treatment. Ann. Med. Surg. 2022, 75, 103448.

41.US Preventive Services Task Force. Screening for Chlamydia and Gonorrhea: US Preventive Services Task Force Recommendation Statement. JAMA 2021, 326, 949–956.

42.Wang, Y.-Y.; Kannan, A.; Nunn, K.L.; Murphy, M.A.; Subramani, D.B.; Moench, T.; Cone, R.; Lai, S.K. IgG in cervicovaginal mucus traps HSV and prevents vaginal herpes infections. Mucosal Immunol. 2014, 7, 1036–1044.

43.Workowski, K.A.; Bachmann, L.H.; Chan, P.A.; Johnston, C.M.; Muzny, C.A.; Park, I.; Reno, H.; Zenilman, J.M.; Bolan, G.A. Sexually transmitted infections treatment guidelines, 2021. MMWR Recomm. Rep. 2021, 70, 1–187.

44.Wright, P.F. Inductive/effector mechanisms for humoral immunity at mucosal sites. Am. J. Reprod. Immunol. 2011, 65, 248–252.

45.Zar, H.J. Neonatal chlamydial infections. Pediat. Drugs 2005, 7, 103–110.

46.Zikic, A.; Schünemann, H.; Wi, T.; Lincetto, O.; Broutet, N.; Santesso, N. Treatment of Neonatal Chlamydial Conjunctivitis: A Systematic Review and Meta-analysis. J. Pediatric Infect. Dis. Soc. 2018, 7, e107–e115.

 

SUMBER:

Pudjiatmoko dan Romadona Triada. Mengenali Gejala Klinis Infeksi Chlamydia trachomatis dan Uji Diagnosisnya. Buletin Penyakit Zoonosa Edisi 39, hal 3-10. Oktober 2023.

#Klamidia 

#ChlamydiaTrachomatis 

#InfeksiMenularSeksual 

#KesehatanReproduksi 

#DiagnosisKlamidia

Rahasia di Balik Diagnosis Akurat Chlamydia trachomatis: Teknologi Modern Ungkap Infeksi Tersembunyi.

 

Prosedur Diagnosis untuk Mendeteksi Infeksi Chlamydia trachomatis

 

1.  Pendahuluan

 

Infeksi menular seksual (IMS) seperti Chlamydia trachomatis (CT) mengalami peningkatan di seluruh dunia. Berdasarkan laporan Organisasi Kesehatan Dunia (WHO), CT merupakan salah satu bakteri penyebab IMS yang paling sering dilaporkan, dengan sekitar 106 juta infeksi baru setiap tahun. Di Amerika Serikat, pada tahun 2014 tercatat lebih dari 1,4 juta kasus CT, jumlah tertinggi dalam sejarah pencatatan. Di Eropa, insiden infeksi CT juga meningkat, dengan 385.000 kasus pada tahun 2013, hampir dua kali lipat dibandingkan pada 2004 [2].

 

Peningkatan jumlah kasus ini mungkin lebih tinggi lagi karena banyak infeksi yang tidak menunjukkan gejala (asimtomatik) dan tidak terdeteksi [8,9]. Berbagai faktor seperti perubahan perilaku seksual, kurangnya edukasi pencegahan, dan peningkatan frekuensi pengujian berkontribusi pada angka ini. Salah satu kemajuan besar dalam pengujian IMS adalah penggunaan teknik molekuler, seperti tes amplifikasi asam nukleat (NAAT), yang memiliki sensitivitas dan spesifisitas lebih tinggi dibandingkan metode pengujian sebelumnya.

 

Artikel ini bertujuan untuk mempermudah pemahaman prinsip dasar diagnostik yang digunakan untuk mendeteksi infeksi Chlamydia trachomatis. Pemilihan tes dan hasil diagnostik yang tepat bergantung pada karakteristik biologis bakteri penyebab dan tanda klinis infeksi yang muncul pada penderita.

 

2.  Patogenesis, Genotipe, dan Manifestasi Klinis Infeksi Chlamydia trachomatis

 

Chlamydia trachomatis (CT) adalah bakteri yang hidup di dalam sel inang dan berkembang biak melalui dua bentuk: bentuk elemen ekstraseluler (EB) yang menginfeksi sel baru, dan bentuk retikulat intraseluler (RB) yang berkembang biak di dalam sel. Proses infeksi dimulai ketika EB menempel pada sel inang dan memasuki sel melalui interaksi dengan protein spesifik pada permukaan bakteri. Setelah masuk, EB berkembang menjadi RB yang kemudian bereplikasi dan berubah kembali menjadi EB untuk menyebar ke sel lainnya [4].

 

Infeksi Chlamydia seringkali tidak menimbulkan gejala, karena respon kekebalan tubuh yang terbentuk tidak terlalu kuat. Hal ini memungkinkan bakteri bertahan dalam tubuh, bahkan dalam bentuk yang tidak aktif. Pada beberapa kondisi, bakteri ini bisa menyebabkan infeksi kronis, terutama jika sistem kekebalan tubuh terhambat.

 

CT memiliki beberapa genotipe yang menyebabkan berbagai jenis infeksi. Genotipe A–C sering menyebabkan infeksi pada mata (trakhoma), yang lebih umum di Afrika dan Asia dan dapat menyebabkan kebutaan jika tidak diobati. Genotipe D–K biasanya menginfeksi saluran genital, rektum, dan tenggorokan, dan dapat menyebabkan komplikasi serius pada wanita, seperti penyakit radang panggul (PID) yang berisiko menyebabkan kemandulan [7].

 

Infeksi dengan genotipe L1, L2, dan L3 bisa lebih serius karena dapat menyebar melalui sistem limfatik, menyebabkan lymphogranuloma venereum (LGV), penyakit yang lebih umum di beberapa wilayah Afrika dan Asia. Meskipun kasus LGV cukup langka di negara industri, wabah LGV telah dilaporkan di kalangan pria yang berhubungan seks dengan pria di Eropa, Amerika Utara, dan Australia.

 

Untuk mengurangi infeksi CT, banyak negara telah mengimplementasikan program skrining untuk mendeteksi infeksi yang tidak bergejala dan memberikan pengobatan kepada pasien dan pasangan mereka [10].

 

3.  Prosedur Diagnosis untuk Infeksi Chlamydia trachomatis

 

Pengujian Chlamydia trachomatis (CT) diperlukan untuk pasien dengan gejala infeksi saluran kemih, anorektal, atau mata, serta bagi mereka yang memiliki riwayat kontak seksual dengan orang yang terinfeksi [8,9]. Selain itu, pengujian ini juga dilakukan untuk skrining pada individu yang berisiko tinggi terinfeksi.

 

Ada dua jenis prosedur diagnostik untuk mendeteksi infeksi CT: metode langsung dan tidak langsung.

 

Metode langsung digunakan untuk mendeteksi patogen langsung di area yang terinfeksi, seperti dengan kultur, tes antigen (misalnya EIA, antibodi fluoresens langsung), atau tes amplifikasi asam nukleat (NAAT), yang sangat sensitif dalam mendeteksi infeksi aktif.

 

Metode tidak langsung, seperti tes serologi, digunakan untuk mendeteksi antibodi terhadap bakteri ini. Tes ini lebih berguna untuk mendeteksi infeksi kronis atau komplikasi yang terjadi setelah infeksi, seperti radang sendi reaktif (SARA). Namun, tes serologi tidak dapat diandalkan untuk mendiagnosis infeksi akut, karena antibodi hanya dapat terdeteksi setelah beberapa minggu atau bahkan bulan setelah infeksi terjadi.

 

4.  Isolasi Chlamydia trachomatis dalam Kultur Sel

 

Untuk mendeteksi CT, salah satu metode yang digunakan adalah isolasi bakteri dalam kultur sel. Beberapa garis sel yang umum digunakan untuk ini antara lain sel McCoy, HeLa 229, dan BGMK [10]. Spesimen yang diambil dari lokasi seperti leher rahim, uretra, kanal anus, atau konjungtiva mata kemudian dikumpulkan dengan menggunakan alat dan media transportasi khusus.

 

Setelah spesimen dikumpulkan, sel-sel bakteri diperkenalkan ke dalam lapisan sel di laboratorium, dan setelah 48-72 jam, bakteri yang berkembang akan menunjukkan inklusi khas yang dapat dilihat dengan pewarnaan khusus. Salah satu pewarnaan yang paling spesifik menggunakan antibodi yang mengikat protein spesifik bakteri (MOMP), yang membuat deteksi menjadi lebih akurat.

 

Namun, meskipun metode kultur sel ini sangat spesifik, tingkat keberhasilannya hanya sekitar 60%-80%, karena kultur ini membutuhkan organisme yang masih hidup dan dapat dipengaruhi oleh berbagai faktor, seperti kualitas spesimen, penyimpanan yang buruk, atau adanya mikroba lain yang mengganggu. Selain itu, proses kultur membutuhkan waktu yang lama dan cukup rumit, sehingga kini jarang digunakan sebagai metode utama di laboratorium diagnostik. Meskipun demikian, metode ini masih digunakan di laboratorium referensi untuk memantau resistensi antibiotik atau ketika dibutuhkan hasil yang sangat spesifik, seperti dalam kasus dugaan kekerasan seksual [10].

 

5.  Uji Amplifikasi Asam Nukleat (NAAT) untuk Mendeteksi Chlamydia trachomatis

 

Uji Amplifikasi Asam Nukleat (NAAT) merupakan metode yang sangat sensitif dan spesifik untuk mendeteksi infeksi CT. Keunggulannya dibandingkan kultur adalah tidak memerlukan bakteri yang masih hidup, sehingga memudahkan pengangkutan spesimen. Karena itu, NAAT kini menjadi metode utama untuk mendeteksi Chlamydia dan menggantikan kultur sebagai standar emas diagnosis [7].

 

Sebagian besar uji NAAT menggunakan teknologi Polymerase Chain Reaction (PCR) yang dapat mendeteksi DNA bakteri dengan cepat, hanya dalam beberapa jam. Meskipun sangat akurat, ada beberapa hal yang dapat memengaruhi hasilnya, seperti variasi dalam genom Chlamydia dan efisiensi dalam pengambilan sampel. Beberapa varian Chlamydia, seperti varian Swedia, mungkin tidak terdeteksi karena perubahan genetik yang terjadi pada bakteri. Untuk itu, beberapa uji NAAT terbaru menggunakan dua wilayah genetik untuk memastikan deteksi varian baru.

 

Selain itu, sistem ekstraksi asam nukleat otomatis yang lebih baik juga meningkatkan kualitas dan kuantitas hasil yang diperoleh. Uji NAAT juga dapat dilakukan secara bersamaan dengan tes lain, seperti untuk gonococcus, dengan sensitivitas dan spesifisitas yang tinggi.

 

Namun, dalam populasi dengan prevalensi rendah Chlamydia, hasil positif dari uji NAAT dapat memiliki nilai prediktif yang rendah, dan oleh karena itu, perlu konfirmasi dengan tes kedua untuk menghindari pengobatan yang tidak perlu. Walaupun begitu, penelitian lebih lanjut menunjukkan bahwa hasil positif yang tidak dikonfirmasi pada umumnya bukanlah hasil palsu. Konfirmasi tetap diperlukan dalam kasus hukum, seperti investigasi kekerasan seksual, untuk memastikan keakuratan hasil.

 

Secara keseluruhan, NAAT adalah metode diagnostik yang sangat efektif dan lebih sensitif daripada kultur, tetapi dalam beberapa situasi, seperti di kasus kekerasan seksual, konfirmasi dengan uji lain sangat penting untuk menghindari kesalahan diagnosis yang bisa berakibat serius.

 

6.  Spesimen Klinis untuk Pengujian Chlamydia

 

Untuk mendeteksi infeksi CT, berbagai jenis sampel klinis dapat digunakan, termasuk usap dari uretra, serviks, vulva, anus, mata, urin aliran pertama, sperma, atau jaringan tubuh. Metode Amplifikasi Asam Nukleat (NAAT) telah disetujui oleh FDA untuk digunakan pada spesimen seperti urin aliran pertama, usap uretra, serviks, dan vagina. Spesimen non-invasif, seperti urin dan usap, lebih disukai untuk skrining, terutama pada individu tanpa gejala.

 

Pada pria, urin aliran pertama dan usap uretra memiliki kinerja deteksi yang serupa, namun urin lebih diterima dan lebih mudah dikumpulkan. Penting untuk menggunakan urin pertama (sekitar 20 mL) karena konsentrasi Chlamydia lebih tinggi di bagian tersebut. Pada wanita, konsentrasi Chlamydia pada usap genital lebih tinggi dibandingkan urin, sehingga usap vagina menjadi sampel yang direkomendasikan. Penelitian menunjukkan bahwa usap vagina, yang bisa dikumpulkan sendiri atau oleh tenaga medis, memberikan hasil deteksi NAAT yang lebih tinggi dibandingkan urin atau usap serviks [1].

 

Untuk mendeteksi infeksi Chlamydia di lokasi ekstra-genital, seperti konjungtivitis, infeksi anorektal, atau faring, diperlukan swab atau sampel jaringan yang sesuai. Infeksi pada pria yang berhubungan seks dengan pria (MSM) sering terlokalisasi di rektum atau faring tanpa gejala, dan urin saja tidak cukup untuk mendeteksinya. Oleh karena itu, swab oral dan anal diperlukan untuk diagnosis yang lebih akurat.

 

Meskipun NAAT komersial umumnya tidak disetujui untuk sampel non-genital, beberapa penelitian menunjukkan bahwa pengujian pada sampel tersebut lebih efektif dibandingkan kultur atau tes antigen. Pengujian pada sampel jaringan, seperti biopsi endometrium atau kelenjar getah bening, juga bisa dilakukan pada pasien dengan penyakit radang panggul (PID) atau limfogranuloma venereum (LGV). Konfirmasi infeksi LGV memerlukan identifikasi genotipe tertentu (L1, L2, atau L3), yang mempengaruhi pilihan pengobatan antibiotik. Tes genotipe ini dapat dilakukan melalui PCR spesifik atau sekuens gen yang relevan [10].

 

7.  Tes Diagnostik Cepat (RDT) untuk Chlamydia

 

Selain akurasi yang penting dalam pengujian CT, waktu untuk mendapatkan hasil tes juga sangat krusial untuk memulai pengobatan dengan tepat. Biasanya, tes berbasis NAAT (Amplifikasi Asam Nukleat) dilakukan di laboratorium pusat dan membutuhkan waktu untuk transportasi sampel dan pengiriman hasil ke dokter. Hal ini bisa menyebabkan penundaan pengobatan atau bahkan pasien tidak kembali untuk mendapatkan hasilnya, sehingga meningkatkan risiko infeksi yang tidak tertangani.

 

Sebagai alternatif, Tes Diagnostik Cepat (RDT) memungkinkan pengujian langsung di lokasi pasien (titik perawatan) dan memberikan hasil dalam beberapa menit. Ini memungkinkan pasien untuk segera mendapatkan pengobatan setelah dinyatakan positif. Namun, meskipun praktis, RDT berbasis antigen (seperti deteksi antigen LPS Chlamydia) memiliki sensitivitas yang lebih rendah dibandingkan dengan kultur atau PCR. Sebagai contoh, sebuah penelitian di Belanda menunjukkan bahwa RDT hanya mendeteksi sekitar 11-27% kasus pada swab vagina yang dikumpulkan sendiri, jauh lebih rendah dibandingkan dengan PCR [11].

 

RDT berbasis antigen ini umumnya tidak disarankan untuk pengujian Chlamydia pada pasien tanpa gejala atau yang bergejala ringan karena akurasinya yang rendah. Namun, ada RDT molekuler, seperti assay Xpert, yang menggunakan teknik amplifikasi asam nukleat dan memiliki akurasi tinggi, hampir setara dengan NAAT standar. RDT molekuler ini memungkinkan pengujian di titik perawatan dalam waktu sekitar 90 menit dan memberikan hasil yang akurat untuk diagnosis Chlamydia dan gonore [3].

 

Selain itu, ada juga teknologi lain seperti Io POC-test yang menggunakan PCR dalam sistem mikrofluidik, menghasilkan hasil dalam waktu sekitar 30 menit. Meskipun RDT molekuler ini menawarkan potensi untuk mempercepat pengobatan, mereka harus memenuhi standar kualitas diagnostik yang biasanya dipenuhi oleh laboratorium bersertifikat, dan penerapannya di lokasi perawatan memerlukan fasilitas yang memadai.

 

8.  Pemeriksaan Serologi untuk Infeksi Chlamydia

 

Pemeriksaan antibodi (serologi) terhadap Chlamydia tidak efektif untuk mendiagnosis infeksi pada saluran genital bawah karena antibodi biasanya baru terdeteksi beberapa minggu setelah infeksi dan kadarnya cenderung rendah [10]. Selain itu, banyak tes serologi tidak dapat membedakan antara spesies Chlamydia yang berbeda. Namun, serologi bermanfaat untuk mendiagnosis infeksi kronis dan invasif, seperti penyakit radang panggul (PID), limfogranuloma venereum (LGV), dan sindrom reaktif artritis (SARA), terutama ketika bakteri tidak terdeteksi pada swab atau urin.

 

Tes serologi positif dapat menunjukkan adanya infeksi, tetapi tidak selalu menjadi bukti pasti, karena reaktivitas antibodi tidak selalu berhubungan langsung dengan infeksi aktif. Sebaliknya, hasil serologi negatif bisa membantu menyingkirkan kemungkinan infeksi Chlamydia.

 

Salah satu tes yang sering digunakan untuk mendeteksi antibodi terhadap Chlamydia adalah Tes Mikroimunofluoresensi (MIF) [6,10]. Tes ini telah digunakan untuk mendiagnosis pneumonia pada bayi yang disebabkan oleh C. trachomatis. Namun, tes ini membutuhkan banyak waktu dan tenaga serta pembacaan yang bersifat subjektif, sehingga saat ini tes lain seperti Enzim Immunoassays (EIA) dan Immunoblots lebih sering digunakan [6].

 

Salah satu tantangan dalam pemeriksaan serologi adalah reaktivitas silang antara spesies Chlamydia yang patogen dan spesies lainnya yang tidak menyebabkan penyakit. Beberapa tes berbasis antigen LPS tidak dapat membedakan antara spesies yang berbeda. Untuk meningkatkan akurasi, tes baru menggunakan protein spesifik dari C. trachomatis telah dikembangkan, yang dapat membedakan antibodi terhadap berbagai spesies Chlamydia.

 

Penelitian terbaru menunjukkan bahwa proteome array, yang mengandung banyak protein dari genom C. trachomatis, dapat mengidentifikasi antibodi yang lebih spesifik [12]. Hal ini menjanjikan untuk membantu membedakan infeksi akut dan kronis, serta untuk mengidentifikasi penanda antibodi yang dapat digunakan untuk memantau tahap-tahap infeksi Chlamydia.

 

9.  Kesimpulan

 

Chlamydia trachomatis adalah bakteri yang menginfeksi sel tubuh manusia, terutama sel epitel dan fibroblas. Infeksi ini dapat bersifat ringan atau bahkan tanpa gejala, membuat deteksi menjadi lebih sulit. Oleh karena itu, untuk mendeteksi bakteri ini secara akurat, diperlukan tes dengan sensitivitas tinggi. Di antara berbagai metode, uji amplifikasi asam nukleat (NAAT) terbukti paling sensitif dan memiliki tingkat akurasi tinggi yang setara dengan kultur, menjadikannya metode pilihan utama untuk deteksi infeksi C. trachomatis.

 

Ada berbagai jenis NAAT yang dapat digunakan di laboratorium, dan pilihan metode tergantung pada jumlah sampel, otomatisasi, dan biaya. Meski begitu, kinerja tes harus selalu dievaluasi sesuai dengan standar kualitas laboratorium. Namun, karena NAAT dilakukan di laboratorium pusat, hasilnya sering memerlukan waktu, yang bisa mengakibatkan keterlambatan dalam pemberian pengobatan kepada pasien.

 

Untuk mengatasi masalah ini, telah dikembangkan tes diagnostik cepat yang dapat memberikan hasil dalam waktu singkat dan bisa dilakukan langsung di tempat perawatan pasien. Meskipun tes cepat yang mendeteksi antigen Chlamydia memiliki sensitivitas yang lebih rendah, tes cepat berbasis NAAT terbaru menunjukkan kinerja yang jauh lebih baik dan setara dengan NAAT standar. Sistem ini yang sepenuhnya otomatis dapat mempercepat pengujian infeksi C. trachomatis di lokasi perawatan, membantu pemberian pengobatan lebih cepat bagi pasien.

 

DAFTAR PUSTAKA

 

1.Dudareva Vizule, S.; Haar, K.; Sailer, A.; Flores, J.A.; Silva-Santisteban, A.; Galea, J.T.; Coates, T.J.; Klausner, J.D.; Caceres, C.F. Prevalence of pharyngeal and rectal Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae infections among men who have sex with men in Germany. Sex. Transm. Infect. 2014, 90, 46–51.

2. European Centre for Disease Prevention and Control. Sexually Transmitted Infections in Europe 2013; European Centre for Disease Prevention and Control: Stockholm, Sweden, 2015.

3.Gaydos, C.A.; van der Pol, B.; Jett-Gohenn, M.; Barnes, M.; Quinn, N.; Clark, C.; Daniel, G.E.; Dixon, P.B.; Hook, E.W., III; CT/NG Study Group. Performance of the Cephaid CT/NG Xpert rapid test for detection of Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae. J. Clin. Microbiol. 2013, 51, 1666–1672.

4.Hybiske, K.; Stephens, R.S. Mechanisms of host cell exit by the intracellular bacterium Chlamydia. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2007, 104, 11430–11435.

5.Lanjouw, E.; Ouburg, S.; de Vries, H.J.; Stary, A.; Radcliffe, K.; Unemo, M. 2015 European guideline on the management of Chlamydia trachomatis infections. Int. J. STD AIDS 2016, 27, 333–348.

6.Morre, S.A.; Munk, C.; Persson, K.; Krüger-Kjaer, S.; van Dijk, R.; Meijer, C.J.; van den Brule, A.J. ComParison of three commercially available peptide-based immunoglobulin G (IgG) and IgA assays to microimmunofluorescence assay for detection of Chlamydia trachomatis antibodies. J. Clin. Microbiol. 2002, 40, 584–587.

7.Papp, J.R.; Schachter, J.; Gaydos, C.A.; van der Pol, B. Recommendations for the laboratory-based detection of Chlamydia trachomatis and Neisseria gonorrhoeae—2014. MMWR Recomm. Rep. 2014, 63, 1–19.

8.Pudjiatmoko dan Romadona. Mengenali Gejala Klinis Infeksi C. trachomatis dan Uji diagnosisnya. Buletin Penyakit Zoonosa. 2023, 39, 3-10.

9.Pudjiatmoko. Pengendalian Peyakit Zoonotik di Bunga Rampai: Edukasi Penyakit Hewan Menular Strategis dan Zoonosis. 2024, 204-211. Nas Media Indonesia, Klaten.

10.Thomas Meyer. 2016. Diagnostic Procedures to Detect Chlamydia trachomatis Infections. Microorganisms 2016, 4(3), 25.

11.Van Dommelen, L.; van Tiel, F.H.; Ouburg, S.; Brouwers, E.E.; Terporten, P.H.; Savelkoul, P.H.; Morré, S.A.; Bruggeman, C.A.; Hoebe, C.J. Alarmingly poor performance in Chlamydia trachomatis point-of-care testing. Sex. Transm. Infect. 2010, 86, 355–359.

12.Wang, J.; Zhang, Y.; Lu, C.; Lei, L.; Yu, P.; Zhong, G. A genome-wide profiling of the humoral immune response to Chlamydia trachomatis infection reveals vaccine candidate antigens expressed in humans. J. Immunol. 2010, 185, 1670–1680.

 

SUMBER:

Vetnesia Ed. 69, November 2024, hal. 39-47

#Chlamydia 

#DiagnosisIMS 

#KesehatanReproduksi 

#TesPCR 

#EdukasiMedis